蔣思峽,邱樹毅,鄒江鵬,陳琳琳,羅小葉,王曉丹,4*
(1.貴州大學(xué)貴州省發(fā)酵工程與生物制藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽550025;2.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽550025;3.貴州國臺酒業(yè)有限公司,貴州仁懷564501;4.貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽550025)
傳統(tǒng)醬香大曲與機(jī)械化醬香大曲中酵母菌的初步研究
蔣思峽1,2,邱樹毅1,2,鄒江鵬3,陳琳琳1,2,羅小葉1,2,王曉丹1,2,4*
(1.貴州大學(xué)貴州省發(fā)酵工程與生物制藥重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽550025;2.貴州大學(xué)釀酒與食品工程學(xué)院,貴州貴陽550025;3.貴州國臺酒業(yè)有限公司,貴州仁懷564501;4.貴州大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,貴州貴陽550025)
采用可培養(yǎng)方法從傳統(tǒng)醬香大曲和機(jī)械化醬香大曲中分離篩選酵母,并對這些酵母的數(shù)量、種類及功能差異進(jìn)行分析比較。結(jié)果表明,機(jī)械化醬香大曲中酵母數(shù)量為傳統(tǒng)醬香大曲的1.44倍;傳統(tǒng)醬香大曲中酵母種類為機(jī)械化醬香大曲的2倍;相同條件下兩者中產(chǎn)酒性能最高的酵母產(chǎn)酒精度在20℃時(shí)均為10.2%vol,機(jī)械化醬香大曲中篩選得到的酵母菌株平均產(chǎn)酒性能為傳統(tǒng)醬香大曲的1.04倍;從產(chǎn)香上看,兩種大曲中的產(chǎn)香酵母均能產(chǎn)生醇、酸、酯、酮類揮發(fā)性物質(zhì)。
醬香型;傳統(tǒng)大曲;機(jī)械大曲;酵母;功能
醬香型白酒屬于大曲酒,大曲具有糖化、發(fā)酵、生香等作用,原料經(jīng)自然界的微生物接種、繁殖,在高溫堆積及入窖貯存的過程中與環(huán)境中的微生物發(fā)生復(fù)雜的生化反應(yīng),為醬香型白酒獨(dú)特風(fēng)味形成提供基礎(chǔ)[1]。
醬香型大曲傳統(tǒng)制曲是將水和母曲加入粉碎的小麥中攪拌,轉(zhuǎn)入木盒,工人站在曲盒中踩曲,制成曲塊。這種方法勞動強(qiáng)度大,效率低,因人的體質(zhì)量和技術(shù)有差異,做成的曲塊也會有差異[2]。20世紀(jì)80年代以來,茅臺、瀘州老窖、四特酒、會稽山紹興酒業(yè)等酒企用一些簡單的機(jī)械設(shè)備來節(jié)約人力[3-7],機(jī)械化制曲具有節(jié)省人力、效率高、均一性好、節(jié)約生產(chǎn)場地等優(yōu)點(diǎn)。目前醬香型大曲的生產(chǎn)還基本采用傳統(tǒng)制曲。2013年貴州國臺酒莊有限公司開始研發(fā)機(jī)械化成套制曲設(shè)備,并投入生產(chǎn)使用,降低勞動力強(qiáng)度50%以上,從根本上改善了人工操作憑經(jīng)驗(yàn)、靠感覺的不確定性,確保了曲塊質(zhì)量的穩(wěn)定性和食品安全性。
酵母作為大曲微生物區(qū)系中最重要的類群之一,其種類和數(shù)量的差異,影響著酒質(zhì)和出酒率[8]。酵母在白酒釀造過程中除了表現(xiàn)出很強(qiáng)的酒精生成能力,還可以產(chǎn)生酯類、醇類、酮類、烯類、酚類等揮發(fā)性化合物[9]。對于傳統(tǒng)大曲和機(jī)械大曲的質(zhì)量,主要集中在曲塊外觀、理化指標(biāo)、微生物數(shù)量等方面的比較研究上,對兩者微生物類群結(jié)構(gòu)及功能研究還尚未見報(bào)道[5-7]。因此對傳統(tǒng)大曲和機(jī)械大曲中的酵母進(jìn)行比較研究具有重要意義。
本研究對醬香型傳統(tǒng)大曲和機(jī)械大曲中的酵母采用可培養(yǎng)方法進(jìn)行分離篩選,對酵母的數(shù)量、種類及功能差異進(jìn)行分析比較,探討酵母類群結(jié)構(gòu),為提高機(jī)械化制曲的大曲品質(zhì)提供理論支持。
1.1 材料與試劑
1.1.1 大曲樣品來源
GT01:貴州國臺酒莊有限公司生產(chǎn)車間儲存6個(gè)月大曲,采用自主研發(fā)的機(jī)械化制曲方式生產(chǎn)。
GT02:貴州國臺酒業(yè)集團(tuán)有限公司生產(chǎn)車間儲存6個(gè)月大曲,采用醬香型高溫大曲的傳統(tǒng)制曲工藝生產(chǎn)。
兩種大曲在制酒生產(chǎn)前將大曲曲塊粉碎成曲粉,在曲粉的存放處隨機(jī)20個(gè)點(diǎn)取樣,混合均勻,保證其微生物種類的多樣性和均勻性,樣品4℃冰箱保存。
1.1.2 主要試劑
酵母基因組DNA提取試劑盒:美國Biomiga公司;脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy ribonucleoside triphosphate,dNTP)、TaqDNA聚合酶:北京天根生物技術(shù)有限公司;糖化酶(5000U/g):湖南鴻鷹祥生物工程有限公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純和生化試劑。
1.1.3 培養(yǎng)基
孟加拉紅瓊脂培養(yǎng)基、馬鈴薯瓊脂(potatodextroseagar,PDA)培養(yǎng)基、麥芽汁瓊脂(malt extract agar,MEA)培養(yǎng)基、麥芽汁液體培養(yǎng)基:上海博微生物科技有限公司。
酵母浸出粉胨葡萄糖(yeast extract dextrose medium,YEPD)液體培養(yǎng)基:酵母膏1%,蛋白胨2%,葡萄糖2%。115℃滅菌20 min。
產(chǎn)酒初篩培養(yǎng)基:
上層培養(yǎng)基采用紅四氮唑培養(yǎng)基:紅四氮唑(2,3,5-triph enyltetrazoliumchloride,TTC)0.05g,葡萄糖0.5g,瓊脂1.5g,蒸餾水100mL。(將未加入TTC的培養(yǎng)基滅菌后冷卻至50℃左右,再加入TTC溶液)。
下層培養(yǎng)基采用YEPD固體培養(yǎng)基:酵母膏1%,蛋白胨2%,葡萄糖2%,瓊脂2%。115℃滅菌20 min。
產(chǎn)酒復(fù)篩培養(yǎng)基(葡萄糖發(fā)酵培養(yǎng)基):葡萄糖200g/L,酵母膏10 g/L,(NH4)2SO41 g/L,KH2PO41 g/L,MgSO4·7H2O 1 g/L,115℃滅菌30 min。
產(chǎn)香培養(yǎng)基(高粱-小麥培養(yǎng)基):將小麥全部粉碎,高粱整粒和碎粒比為3∶1(g∶g),高粱和小麥比1∶1(g∶g),混勻,加入60%左右95℃水潤糧5 h,按200 U/g淀粉加入糖化酶,60℃糖化2 h,裝瓶,115℃滅菌20 min[12]。
生理生化實(shí)驗(yàn)培養(yǎng)基,參考《酵母菌的特征與鑒定手冊》等[10-11]。
1.2 儀器與設(shè)備
YS100光學(xué)顯微鏡:日本尼康公司;50/30 μm DVB/ CAR/PDMS萃取頭、手動SPME進(jìn)樣器:美國Supelco公司;HP7890/5975C氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatograph mass spectrometer,GC-MS)聯(lián)用儀:美國Agilent公司;Sorvall ST16R高速冷凍離心機(jī):美國Thermo公司;Flex cycler多功能PCR儀:德國耶拿分析儀器股份公司。
1.3 實(shí)驗(yàn)方法
1.3.1 醬香大曲的理化指標(biāo)測定
參見國標(biāo)QBT4257—2011《釀酒大曲通用分析方法》[13]。
1.3.2 酵母菌的計(jì)數(shù)及分離篩選
分別稱取10 g樣品至加有玻璃珠的90 mL無菌生理鹽水的三角瓶中,160 r/min振蕩30 min,分別按10-1、10-2、10-3、10-4、10-5的梯度稀釋,各梯度取1 mL菌液在孟加拉紅瓊脂培養(yǎng)基上進(jìn)行和傾注培養(yǎng)和平板涂布,每個(gè)梯度3個(gè)平行,28℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)2 d,選擇菌落數(shù)在30~300個(gè)之間的傾注平板進(jìn)行計(jì)數(shù)。挑取涂布平板上典型酵母菌落在PDA培養(yǎng)基平板上劃線純化,將純化后的菌種編號,接種于MEA培養(yǎng)基試管斜面28℃培養(yǎng)3 d后4℃保藏。
1.3.3 酵母菌的單菌落形態(tài)、細(xì)胞形態(tài)鑒定以及生理生化鑒定
參照《酵母菌的特征與鑒定手冊》進(jìn)行[10]。
1.3.4 酵母菌的分子生物學(xué)鑒定
挑取酵母菌單菌落接種到30mLYEPD液體培養(yǎng)基中,28℃、160 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)24 h,吸取1 mL菌懸液,采用Biomiga公司的酵母DNA基因組試劑盒提取DNA。聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增采用酵母序列通用引物NL1(5′-GGTCCGTATTTCAAGACG-3′)和NL4(5′-GGTCCGTATTTCAAGACGG-3′)。
PCR反應(yīng)體系(25μL體系):primer1和primer2各1μL,DNA模板2μL,ddH2O8.5μL,Mix12.5μL。PCR反應(yīng)程序:94℃預(yù)變性5 min,94℃變性30 s,55℃退火45 s,72℃延伸1 min,35個(gè)循環(huán)反應(yīng),最后72℃繼續(xù)延伸10 min。
引物對合成及PCR產(chǎn)物測序由上海立菲生物技術(shù)有限公司完成,測序結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行同源序列搜索(BLAST search,http://blast.ncb-i.nlm.nih.gov/Blast.cgi),選取同源性較高的菌株的26S rDNA D1/D2區(qū)域序列作為參比對照[14],用MEGA5.05軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[15]。
1.3.5 產(chǎn)酒酵母的一級篩選
酵母菌在YEPD固體培養(yǎng)基上純化,28℃培養(yǎng)2d,然后傾入50℃左右的TTC上層培養(yǎng)基,28℃條件下避光保存2h,觀察菌落顏色變化。選取顏色較深的菌株進(jìn)行產(chǎn)酒實(shí)驗(yàn)[16]。
1.3.6 產(chǎn)酒酵母的二級篩選
將上述顏色較深的酵母,挑取單菌落接入20mLYEPD液體發(fā)酵培養(yǎng)基中,28℃、160 r/min搖床培養(yǎng)28 h,再按體積分?jǐn)?shù)5%接種至140 mL發(fā)酵培養(yǎng)基中,28℃發(fā)酵8 d,記錄CO2總質(zhì)量損失,測定20℃時(shí)酒精度(%vol)及殘?zhí)呛浚╣/100 g)[17]。
1.3.7 酒精含量測定
取100 mL發(fā)酵液和50 mL蒸餾水于裝有數(shù)粒玻璃珠的蒸餾瓶,蒸餾,收集100 mL餾出液,控制蒸餾時(shí)間在30~40 min以內(nèi)。用酒精濃度計(jì)記錄此時(shí)的刻度即酒精濃度,同時(shí)測定溫度,按照酒精溫度與濃度換算表,換算成20℃時(shí)的酒精度(%vol)[18]。
1.3.8 CO2質(zhì)量損失測定
在發(fā)酵前測定三角瓶和發(fā)酵液的總質(zhì)量,發(fā)酵開始后定期測量三角瓶和發(fā)酵液總質(zhì)量。當(dāng)12 h內(nèi)質(zhì)量損失小于0.1 g時(shí)即可認(rèn)為發(fā)酵結(jié)束,此時(shí)的總質(zhì)量損失即可認(rèn)為發(fā)酵過程中CO2的總質(zhì)量損失。
1.3.9 殘?zhí)呛繙y定
參見國標(biāo)GB/T 5009.7—2008《食品中還原糖的測定》中的直接滴定法[19]。
1.3.10 酵母菌株的固態(tài)發(fā)酵[12,19]
挑取活化后的酵母菌株,接入50 mL麥芽汁液體培養(yǎng)基中,28℃、160 r/min搖瓶培養(yǎng)36 h,將菌懸液按質(zhì)量濃度4g/100mL的比例接入盛有50g產(chǎn)香培養(yǎng)基,28℃固態(tài)發(fā)酵7 d,對發(fā)酵后樣品的酯味(10分)、酸味(10分)、酒味(10分)進(jìn)行評定,總分(30分),氣味強(qiáng)度按照數(shù)字1~10逐漸升高,可接受性數(shù)值越高接受性越強(qiáng)[20]。邀請10位專業(yè)人員對樣品的酯、酸、酒味及總體可接受性評分,篩選出感官評定總體可接受性評分較高的菌株樣品。
1.3.11 揮發(fā)性成分分析
采用頂空固相微萃取(headspace solid-phase microextraction,HS-SPME)技術(shù)對菌株固態(tài)發(fā)酵樣品的揮發(fā)性成分進(jìn)行萃取,然后采用氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(GC-MS)技術(shù)對揮發(fā)性成分進(jìn)行分析檢測。
HS-SPME條件:菌株固態(tài)發(fā)酵樣品在60℃下,用50/30 μm DVB/CAR/PDMS Supelco纖維頭,手動SPME進(jìn)樣器,頂空萃取40 min。
GC條件:DB-CP97723A色譜柱,載氣為He(99.999%),載氣流速為1mL/min;程序升溫:起始溫度40℃,保持5min,以5℃/min升溫至200℃,并保持9 min;不分流進(jìn)樣;溶劑延遲時(shí)間:2 min。
MS條件:離子源為電子電離(electronic ionization,EI)源;離子源溫度230℃;四極桿溫度150℃;電子能量70 eV;發(fā)射電流34.6 μA;倍增器電壓1 125 V;接口溫度280℃;質(zhì)量范圍20~450 u。以峰面積定量。
2.1 醬香型大曲理化指標(biāo)對比
兩種醬香型大曲理化指標(biāo)測定結(jié)果見表1。
表1 醬香型大曲理化指標(biāo)對比Table 1 Physical and chemical indexes comparison of sauce-flavorDaqu
由表1可知,采用兩種工藝操作制得的大曲理化指標(biāo)均符合制曲標(biāo)準(zhǔn),GT02的水分、淀粉含量、酸度高于GT01,糖化力小于GT01。大曲的水分和大曲成型力度有關(guān),機(jī)械方法比人工踩曲受力更均勻,壓力更大,使得機(jī)械曲曲料間的間隙較傳統(tǒng)曲小,這些原因可能導(dǎo)致機(jī)械曲的水分低于傳統(tǒng)曲;大曲的酸度差異在于產(chǎn)酸微生物的數(shù)量及功能差異比如醋酸菌、乳酸菌的差異,這些微生物的數(shù)量也與大曲水分相關(guān);淀粉含量和糖化力有關(guān),GT01的糖化力高于GT02,故GT01中剩余淀粉量低于GT02。
2.2 酵母菌的計(jì)數(shù)、分離篩選及鑒定
采用平板稀釋涂布法,從GT01中分離篩選到9株酵母,將這些菌株按FBKL2.0200—FBKL2.0208編號;從GT02中分離篩選到12株酵母,將這些菌株按FBKL2.0209—FBKL 2.0220編號。
通過這些酵母菌株在PDA培養(yǎng)基上的單菌落形態(tài)圖、1 000×光學(xué)顯微鏡下鏡檢圖和細(xì)胞顯微形態(tài),進(jìn)行了形態(tài)學(xué)和生理生化鑒定,菌株鑒定結(jié)果及來源見表2。
表2 酵母菌株形態(tài)學(xué)及生理生化鑒定結(jié)果Table 2 Morphologic,physiological and biochemical identification results of yeast strains
計(jì)數(shù)得到GT01酵母菌數(shù)為(4.71±0.11)×104CFU/g,GT02酵母菌數(shù)為(3.28±0.13)×103CFU/g。傳統(tǒng)認(rèn)為高溫大曲中酵母數(shù)量較少,現(xiàn)在通過聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)-變性梯度電泳技術(shù)對中國白酒微生物群落結(jié)構(gòu)的分析得知,在成品高溫大曲中仍存在大量酵母[21]??赡苁窃诟邷刂魄^程中,多數(shù)酵母死亡,但依然有部分酵母處于存活或休眠狀態(tài),且成品曲出房后儲存在常溫下,可以繼續(xù)網(wǎng)絡(luò)環(huán)境中的酵母,因而導(dǎo)致成品曲粉中酵母數(shù)量較多。酵母的數(shù)量與大曲的水分有關(guān)[7],水分含量高會使產(chǎn)酸微生物數(shù)量增加,這些微生物的生長會在一定程度上抑制酵母的數(shù)量,所以可能導(dǎo)致了GT02中的酵母數(shù)量低于GT01。由表2可知,GT01中酵母的種類少于GT02,由于GT01生產(chǎn)的曲塊全程機(jī)械化生產(chǎn),許多微生物在環(huán)境中還沒有穩(wěn)定,GT02是傳統(tǒng)制曲工藝,在長期的制曲環(huán)境中已經(jīng)經(jīng)過選擇形成穩(wěn)定的菌群,在制曲過程中通過傳統(tǒng)工人操作也會被帶入大曲的大量微生物,所以這些原因可能導(dǎo)致GT01與GT02中酵母種類上的差異。
2.3 酵母菌的分子生物學(xué)鑒定
測序結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫中搜索,同源性均≥99%,MEGA5.05軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果見圖1。GT01和GT02中酵母種類維恩圖見圖2。
圖1 酵母菌株系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.1 Phylogenetic tree of yeast strains
圖2 GT01和GT02中酵母種類維恩圖Fig.2 Yeast classies Venn diagram in GT01 and GT02
結(jié)合酵母菌的形態(tài)學(xué)、生理生化和分子生物學(xué)鑒定,確定GT01中篩選出來的酵母共有3種:扣囊復(fù)膜酵母(Saccharomycopsis fibuliqura)、釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)、長孢婁德酵母(Lodderomycese longisporus);GT02中篩選出來的酵母共有6種:扣囊復(fù)膜酵母(Saccharomycopsisfibuliqura)、釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)長孢婁德酵母(Lodderomyces elongisporus)、伯頓畢赤酵母(Hyphopichia burtonii)、粉狀畢赤酵母(Pichia farinosa)、庫德里阿茲威氏畢赤酵母(Pichia kudriavzeviil)。
扣囊復(fù)膜酵母(S.fibuliqura)大量存在于酸性潮濕的環(huán)境,為大曲上霉主要微生物,和釀酒酵母(S.cerevisiae)一樣在白酒成品曲中廣泛存在,具有較好的產(chǎn)酒和產(chǎn)香能力[22-23]。畢赤酵母屬(Pichiasp.)也屬于大曲中的常見酵母屬[24],從醬香白酒酒醅中篩選出來的庫德里阿茲威氏畢赤酵母(P.kudriavzeviil)具有高產(chǎn)乙酸苯乙酯的能力,對白酒有增香作用[25],這種酵母對葡萄糖、酒精度、pH值具有較高耐受性,也用來作為果酒發(fā)酵專用菌種[26];粉狀畢赤酵母(P.farinosa)具有高產(chǎn)甘油的能力[27]。伯頓畢赤酵母(H.burtonii)可能在大曲中對白酒香味的形成有影響[28]。從濃香型白酒酒窖中篩選出的長孢婁德酵母(L.elongisporus)具有高產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的能力,在葡萄酒釀造過程中與其余酵母混菌發(fā)酵時(shí)能夠明顯提高葡萄酒的香氣感官品質(zhì)[29],粉狀畢赤酵母(P.farinosa)和長孢婁德酵母(L.longisporus)這兩種酵母的功能雖然目前在醬香型白酒釀造過程中還未見報(bào)道,但是它們產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物和胞外酶等在一定程度上能提高白酒風(fēng)味的復(fù)雜性[30],隨著人們對白酒釀造微生物認(rèn)識的不斷深入,這類酵母在醬香型白酒釀造中的具體功能將逐漸被揭示。
2.4 酵母菌的產(chǎn)酒功能
表3 TTC培養(yǎng)基上的顯色反應(yīng)結(jié)果Table 3 Chromogenic reaction results in TTC medium
TTC是一種無色顯色劑,能和酵母細(xì)胞中的還原性脫氫物質(zhì)發(fā)生顯色反應(yīng),因此可以根據(jù)酵母菌株在TTC培養(yǎng)基上的顯色程度,初步判定酵母呼吸酶活力的大小,即酵母產(chǎn)酒精能力的大小[31]。呼吸酶活力較強(qiáng)的菌株顯色較深,即顯色較深的酵母菌株產(chǎn)酒精能力較強(qiáng)[32]。酵母菌株在TTC培養(yǎng)基上顯色反應(yīng)結(jié)果如表3所示。
通過顯色反應(yīng),選擇表3中顏色為玫紅色、深玫紅、深紅色的17株酵母菌株進(jìn)行產(chǎn)酒復(fù)篩實(shí)驗(yàn),以市售安琪酵母菌株為對照組進(jìn)行實(shí)驗(yàn),以發(fā)酵8d后的CO2質(zhì)量損失,20℃時(shí)的酒精度和殘?zhí)呛繛閰⒖贾笜?biāo),對這些酵母的產(chǎn)酒性能進(jìn)行進(jìn)一步的比較,結(jié)果見圖3。
圖3 不同菌株的CO2質(zhì)量損失、20℃時(shí)酒精度及殘?zhí)呛糠治鯢ig.3 Analysis of CO2weightloss,alcohol content at 20℃and residual sugar content of different strains
從圖3可以看出,GT01中篩選出來的產(chǎn)酒精度最高的酵母菌株為FBKL2.0207,發(fā)酵8 d后,發(fā)酵液殘?zhí)呛繛椋?.10±0.6)g/100 g,CO2質(zhì)量損失為(13.06±0.02)g,20℃時(shí)酒精度為(10.2±0.1)%vol;GT02中篩選出來的產(chǎn)酒精度最高的酵母菌株為FBKL2.0217,發(fā)酵8 d后,發(fā)酵液殘?zhí)呛繛椋?.10±0.4)g/100 g,CO2質(zhì)量損失為(12.68±0.01)g,20℃時(shí)酒精度為(10.2±0.4)%vol;這兩株酵母都為釀酒酵母(S.cerevisiae)。對照組市售安琪酵母菌株,發(fā)酵8 d后,發(fā)酵液殘?zhí)呛繛椋?.7±0.3)g/100 g,CO2質(zhì)量損失為(12.87±0.09)g,20℃時(shí)酒精度為10.2%vol;與對照組相比,兩者中的其余菌株產(chǎn)酒性能均較弱。通過計(jì)算GT01和GT02中進(jìn)行產(chǎn)酒復(fù)篩實(shí)驗(yàn)的菌株在20℃時(shí)產(chǎn)酒精度平均值,發(fā)現(xiàn)GT01中篩選出的菌株的平均產(chǎn)酒性能為GT02的1.04倍。兩者中產(chǎn)酒精度最強(qiáng)的菌株在相同條件下產(chǎn)酒精度基本一致??傮w來看GT01中酵母菌株的產(chǎn)酒精度較強(qiáng)。
2.5 酵母菌的產(chǎn)香功能
酵母菌株經(jīng)固態(tài)發(fā)酵后的產(chǎn)物,以酯味(10分)、酸味(10分)、酒味(10分)、總分(30分)為評定指標(biāo),邀請10位專業(yè)人員進(jìn)行感官評定,感官評定結(jié)果見表4。
表4 菌株固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物感官評定結(jié)果Table 4 Sensory evaluation results of product from strains with solid state fermentation
根據(jù)表4的感官評定結(jié)果,可以看出大曲中篩選出來的不同種屬的酵母產(chǎn)香能力各異,同種屬酵母間產(chǎn)香功能差異不大。選擇感官評定總體評分≥15分的菌株作為產(chǎn)香優(yōu)勢菌株,將它們的固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物經(jīng)HS-SPME后進(jìn)行GC-MS分析檢測,對總離子流圖中的各峰經(jīng)質(zhì)譜計(jì)算機(jī)數(shù)據(jù)系統(tǒng)檢索及核對Nist2005和Wiley275標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)譜圖,確定揮發(fā)性化學(xué)成分,用峰面積歸一化法測定了各化學(xué)成分的相對百分含量,篩選出來的優(yōu)勢菌株FBKL2.0207、FBKL2.0211、FBKL2.0217固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物揮發(fā)性成分的相對含量結(jié)果如圖4所示。
由圖4可知,在菌株FBKL2.0207固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物揮發(fā)性香氣成分中檢測到醇類物質(zhì)5種,相對含量總和為37.356%;酯類物質(zhì)6種,相對含量總和為17.453%;酮類物質(zhì)1種,相對百分含量為0.603%;酸類物質(zhì)2種,相對含量總和為13.167%;烯類物質(zhì)1種,相對含量為1.101%。其中帶有水果香氣的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為17.526%,帶甜味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為16.645%,帶有芳香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)的相對含量為1.101%,帶有奶油香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)的相對含量為0.603%,帶酸味的揮發(fā)性物質(zhì)的相對含量為11.261%,帶有愉快的玫瑰香氣的物質(zhì)相對含量為17.788%。
圖4 產(chǎn)香優(yōu)勢菌株揮發(fā)性成分相對含量Table 4 Relative content of volatile components of aroma-producing superiority strains
在菌株FBKL2.0211固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物揮發(fā)性香氣成分中檢測到醇類物質(zhì)6種,相對含量總和為18.252%;酮類物質(zhì)3種,相對含量總和為58.479%;酸類物質(zhì)2種,相對含量總和為2.306%。其中帶有水果香氣的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為5.943%,具有芳香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)的相對含量為0.1%,帶有草藥香味揮發(fā)性物質(zhì)的相對含量為0.7%,帶有青草香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為0.232%,帶有蠟香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為11.322%,帶有奶油香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為56.654%,帶酸味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為0.534%,帶有愉快的玫瑰香氣的揮發(fā)性物質(zhì)含量為4.086%。
在菌株FBKL2.0217固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)物揮發(fā)性香氣成分中檢測到醇類物質(zhì)4種,相對含量總和為38.821%;酯類物質(zhì)3種,相對含量總和為17.092%;酮類物質(zhì)2種,相對含量總和為1.416%;酸類物質(zhì)1種,相對含量為0.802%。其中帶有水果香氣的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為17.797%,帶甜味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為1.751%,帶有草藥香味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為1.051%,帶有奶油香氣味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為1.264%,帶酸味的揮發(fā)性物質(zhì)相對含量為0.802%,帶有愉快的玫瑰香氣的揮發(fā)性物質(zhì)含量為37.119%。
綜上,兩種大曲中的產(chǎn)香酵母均能產(chǎn)生醇、酸、酯、酮類揮發(fā)性物質(zhì)。揮發(fā)性化合物在白酒風(fēng)味中扮演著重要的角色,這些揮發(fā)性化合物一些來自原料老熟過程,但主要為酵母在發(fā)酵過程中代謝產(chǎn)生[33]。醬香型白酒的風(fēng)味與揮發(fā)性成分所占比例密切相關(guān),這些成分之間相互協(xié)調(diào)的比例,才使醬香型白酒具有了獨(dú)特的風(fēng)味。
GT01中酵母菌的數(shù)量為GT02的1.44倍,GT02中的酵母種類為GT01的2倍;兩個(gè)大曲中同時(shí)存在的酵母屬有復(fù)膜孢酵母屬(Saccharomycopsissp.)、婁德酵母菌屬(Lod deromycessp.)、酵母屬(Saccharomycessp.)。兩種大曲中數(shù)量最多的酵母均是扣囊復(fù)膜酵母(S.fibuligera)。GT01和GT02中產(chǎn)酒精度最高的兩株菌均為釀酒酵母(S.cerevisiae),且在相同條件下兩株菌的產(chǎn)酒精度相同。從產(chǎn)酒精度平均值水平上看,GT01中篩選出來的酵母菌株的產(chǎn)酒功能為GT02的1.04倍。從產(chǎn)香上看,兩種大曲中的產(chǎn)香酵母均能產(chǎn)生醇、酸、酯、酮類揮發(fā)性物質(zhì)。通過對GT01和GT02中酵母菌的初步研究,可以看出兩者各有優(yōu)劣,科學(xué)技術(shù)的發(fā)展創(chuàng)新,可使機(jī)械大曲逐步改良優(yōu)化使其性能更接近于傳統(tǒng)大曲,同時(shí)結(jié)合機(jī)械化生產(chǎn)節(jié)省人力物力,降低成本的優(yōu)點(diǎn),未來大規(guī)模的機(jī)械化生產(chǎn)在保證大曲質(zhì)量的前提下,還能提高企業(yè)生產(chǎn)效率和經(jīng)濟(jì)效益。
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Preliminary studies on yeasts from sauce-flavorDaqumade by traditional and mechanical methods
JIANG Sixia1,2,QIU Shuyi1,2,ZOU Jiangpeng3,CHEN Linlin1,2,LUO Xiaoye1,2,WANG Xiaodan1,2,4*
(1.Guizhou Provincial Key Laboratory of Fermentation Engineering and Biological Pharmacy,Guizhou University,Guiyang 550025,China; 2.School of Liquor and Food Engineering,Guizhou University,Guiyang 550025,China;3.Guizhou Guotai Distillery Co.,Ltd.,Renhuai 564501,China;4.College of Life Sciences,Guizhou University,Guiyang 550025,China)
The yeasts were screened and isolated from sauce-flavorDaqumade by traditional and mechanical methods.The quantity,species and functional differences of yeasts were analyzed and compared.Results showed that the quantity of yeasts in mechanical-madeDaquwas 1.44 times than that in traditional-madeDaqu;but the yeasts species in traditional-madeDaquwas 2 times than that in the mechanical-madeDaqu.In the same condition,the alcohol content of the highest performance yeast by both methods at 20℃were 10.2%vol,the alcohol production capacity of yeasts screened from mechanical-madeDaquwas 1.04 times than that from traditional-madeDaquin average.In aroma-producing aspect,bothDaqucan produce alcohols,acids,esters and ketones.
sauce-flavor;traditional-madeDaqu;mechanical-madeDaqu;yeast;function
TS261.1
0254-5071(2017)03-0059-07
10.11882/j.issn.0254-5071.2017.03.013
2016-10-17
貴州省科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(黔科合支撐[2016]2340);貴州省工業(yè)攻關(guān)項(xiàng)目(黔科合GZ字[2014]3012);貴州省重大專項(xiàng)項(xiàng)目(黔科合重大專項(xiàng)字[2015]6012)
蔣思峽(1993-),女,碩士研究生,研究方向?yàn)槲⑸锱c發(fā)酵技術(shù)。
*通訊作者:王曉丹(1980-),女,高級實(shí)驗(yàn)師,博士,研究方向?yàn)閼?yīng)用生物技術(shù)。