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    siRNA沉默Ran基因?qū)Y(jié)腸癌細(xì)胞株凋亡和Caspase-3、PARP表達(dá)的影響*

    2017-04-06 08:39:11孫麗娜孫利慧盧瑗瑗
    胃腸病學(xué) 2017年3期
    關(guān)鍵詞:單克隆細(xì)胞株結(jié)腸癌

    汪 鑫 耿 蕾 孫麗娜 孫利慧 盧瑗瑗 王 新

    第四軍醫(yī)大學(xué)西京消化病醫(yī)院 腫瘤生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(710032)

    ·論 著·

    siRNA沉默Ran基因?qū)Y(jié)腸癌細(xì)胞株凋亡和Caspase-3、PARP表達(dá)的影響*

    汪 鑫 耿 蕾 孫麗娜 孫利慧 盧瑗瑗 王 新

    第四軍醫(yī)大學(xué)西京消化病醫(yī)院 腫瘤生物學(xué)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(710032)

    背景:結(jié)腸癌是常見的消化系統(tǒng)惡性腫瘤之一。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)結(jié)腸癌特異性抗原類硫氧還蛋白-2(Txl-2)的亞型之一Txl-2b可與Ras相關(guān)核蛋白(Ran)相互作用,但Ran在結(jié)腸癌發(fā)病過程中的作用和機(jī)制鮮有報(bào)道。目的:以RNA干擾技術(shù)靶向沉默結(jié)腸癌細(xì)胞株Ran基因,觀察該方法對(duì)細(xì)胞凋亡和半胱天冬酶-3(caspase-3)、多聚二磷酸腺苷核糖聚合酶(PARP)表達(dá)的影響。方法:設(shè)置si-1、si-2、si-3以及陰性對(duì)照(NC)組,分別將終濃度為20、40、60 nmol/L的Ran小干擾RNA(siRNA)-1、siRNA-2、siRNA-3以及NC siRNA轉(zhuǎn)染結(jié)腸癌細(xì)胞株HCT116、DLD-1。采用蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)siRNA干擾效率以及caspase-3、PARP表達(dá)的變化;采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。結(jié)果:20 nmol/L siRNA-1、siRNA-2抑制Ran表達(dá)的效果最佳。si-1組HCT116、DLD-1細(xì)胞的早期凋亡率較NC組顯著增加(19.37%±7.57%對(duì)4.83%±1.72%;16.53%±3.38%對(duì)6.27%±3.13%;P均<0.05)。si-1組、si-2組HCT116、DLD-1細(xì)胞的晚期凋亡率較NC組顯著增加(15.97%±3.31%、16.33%±5.40%對(duì) 6.40%±1.05%;22.93%±1.57%、11.50%±0.70%對(duì)6.20%±0.98%;P均<0.05)。si-1組、si-2組DLD-1細(xì)胞與NC組相比,被切割的caspase-3(活性形式)和被切割的PARP(非活性形式)表達(dá)水平顯著升高。結(jié)論:沉默Ran基因能明顯促進(jìn)結(jié)腸癌細(xì)胞凋亡,其機(jī)制與調(diào)控caspase-3、PARP表達(dá)有關(guān)。

    結(jié)腸腫瘤; Ras相關(guān)核蛋白; RNA,小分子干擾; 細(xì)胞凋亡; 半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶3; 聚ADP核糖聚合酶類

    結(jié)腸癌是常見的消化系統(tǒng)惡性腫瘤之一,發(fā)病機(jī)制尚未完全明確。本課題組前期研究[1]采用分離自結(jié)腸癌轉(zhuǎn)移淋巴結(jié)的癌細(xì)胞免疫BALB/c小鼠,以淋巴細(xì)胞雜交瘤技術(shù)制備了一組抗結(jié)腸癌單克隆抗體,命名為結(jié)腸癌單克隆抗體(monoclonal antibodies, MCs)系列。其中,MC3所識(shí)別的抗原MC3-Ag在結(jié)腸癌組織中的陽(yáng)性率達(dá)90%以上[2],且表達(dá)水平與結(jié)腸癌TNM分期、腫瘤轉(zhuǎn)移密切相關(guān)[3]。其后本課題組進(jìn)一步采用蛋白質(zhì)組學(xué)研究方法鑒定并驗(yàn)證了MC3-Ag為硫氧還蛋白家族新成員類硫氧還蛋白-2(thioredoxin like-2, Txl-2)[4]。Txl-2b是 Txl-2的一種亞型[5],酵母雙雜交和免疫共沉淀實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,Txl-2b可與Ras相關(guān)核蛋白(Ras-related nuclear protein, Ran)相互作用[6]。Ran為Ras超家族成員,是細(xì)胞中含量最豐富的小G蛋白,相對(duì)分子質(zhì)量為25 kDa(1 Da=0.992 1 u)。Ran具有兩種形式,即GDP狀態(tài)下的非活性形式和GTP狀態(tài)下的活性形式[7]。Ran在生物體基本生理過程中發(fā)揮重要作用,如在分裂間期調(diào)節(jié)大分子物質(zhì)的核質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)[8]、在分裂前期促進(jìn)紡錘體形成、在分裂末期參與核膜再組裝[9]等。近年研究指出,Ran在諸多惡性腫瘤中呈高表達(dá),包括結(jié)直腸癌[10]、胰腺癌[11]、胃癌[12]、乳腺癌[13]、卵巢癌[14]、神經(jīng)母細(xì)胞瘤[15]、非小細(xì)胞肺癌[16]等,且與腫瘤的惡性表型和不良預(yù)后密切相關(guān),可促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖[11]、侵襲和轉(zhuǎn)移[17],抑制腫瘤細(xì)胞凋亡[13]等。然而,目前尚無研究證實(shí)Ran是否影響結(jié)腸癌細(xì)胞凋亡。本研究通過合成Ran特異性小干擾RNA(siRNA)抑制結(jié)腸癌細(xì)胞Ran表達(dá),旨在探討Ran對(duì)結(jié)腸癌細(xì)胞凋亡的影響。

    材料與方法

    一、細(xì)胞株和主要試劑

    結(jié)腸癌細(xì)胞株HCT116、DLD-1(ATCC細(xì)胞庫(kù))。DMEM培養(yǎng)基、0.25% EDTA-胰蛋白酶、胎牛血清、Opti-MEMTM無血清培養(yǎng)基(Gibco公司);DharmaFECTTM1轉(zhuǎn)染試劑(GE Healthcare公司);siRNA寡核苷酸(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司);RIPA細(xì)胞裂解液(碧云天生物技術(shù)研究所);BCA蛋白定量試劑盒(Thermo公司);Ran單克隆抗體、Annexin V-FITC/PI細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(BD Biosciences公司);半胱天冬酶-3(caspase-3)、多聚二磷酸腺苷核糖聚合酶(PARP)、GAPDH單克隆抗體(Cell Signaling Technology公司);β-actin單克隆抗體(Sigma公司);山羊抗鼠、抗兔HRP標(biāo)記IgG抗體(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)。

    二、方法

    1. 細(xì)胞培養(yǎng):HCT116、DLD-1細(xì)胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素雙抗的DMEM培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

    2. siRNA轉(zhuǎn)染:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期HCT116、DLD-1細(xì)胞接種至6孔板,以含10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素雙抗的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)。第2 d待細(xì)胞貼壁且密度達(dá)到30%時(shí),每孔更換為1 600 μL Opti-MEMTM無血清培養(yǎng)基。設(shè)置si-1、si-2、si-3以及陰性對(duì)照(NC)組,分別將終濃度為20、40、60 nmol/L的三種不同序列片段的Ran siRNA(siRNA-1、siRNA-2、siRNA-3)以及NC siRNA(表1)與200 μL Opti-MEMTM無血清培養(yǎng)基混合。將5 μL DharmaFECTTM1轉(zhuǎn)染試劑與200 μL Opti-MEMTM無血清培養(yǎng)基混合,室溫孵育5 min。將稀釋后的siRNA與稀釋后的DharmaFECTTM1轉(zhuǎn)染試劑混合,室溫孵育20 min。每孔加入400 μL siRNA與DharmaFECTTM1轉(zhuǎn)染試劑混合液混勻,24 h后更換為完全培養(yǎng)基,72 h后收集細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    表1 3種Ran siRNA和NC siRNA序列信息

    3. 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)siRNA干擾效率:收集細(xì)胞,提取總蛋白行蛋白定量,變性,行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,非特異封閉,加入Ran單克隆抗體(滴度 1∶2 000)4 ℃孵育過夜,洗膜后加入二抗(滴度 1∶4 000),室溫孵育,ECL顯影,灰度分析,篩選最佳siRNA干擾序列。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

    4. 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡:將篩選出的siRNA序列按優(yōu)化濃度再次轉(zhuǎn)染HCT116、DLD-1細(xì)胞(實(shí)驗(yàn)步驟同前),72 h后離心消化,PBS清洗2遍,采用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況,操作步驟參照試劑盒說明書。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。

    5. 蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)caspase-3、PARP表達(dá)變化:將篩選出的siRNA序列按優(yōu)化濃度再次轉(zhuǎn)染DLD-1細(xì)胞(實(shí)驗(yàn)步驟同前),72 h后離心消化,收集細(xì)胞提取總蛋白,以蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)caspase-3、PARP表達(dá)(實(shí)驗(yàn)步驟同前)。

    三、統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    結(jié) 果

    一、Ran siRNA對(duì)HCT116、DLD-1細(xì)胞Ran表達(dá)的抑制效率

    siRNA轉(zhuǎn)染HCT116、DLD-1細(xì)胞后,20、40、60 nmol/L si-1、si-2、si-3組的Ran蛋白表達(dá)水平均顯著低于NC組(P<0.05 ),其中以20 nmol/L si-1、si-2組的抑制效果最佳,抑制率均>50%,顯著高于其他濃度組以及si-3組(P均<0.01)(圖1、圖2)。故選擇20 nmol/L siRNA-1、siRNA-2進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    二、Ran siRNA對(duì)HCT116、DLD-1細(xì)胞凋亡的影響

    NC組、si-1組、si-2組HCT116細(xì)胞早期凋亡率分 別為4.83%±1.72%、19.37%±7.57%和 21.10%±13.46%,si-1組早期凋亡率較NC組顯著增加(P<0.05);三組晚期凋亡率分別為6.40%±1.05%、15.97%±3.31%和16.33%±5.40%,si-1組、si-2組晚期凋亡率均較NC組顯著增加(P<0.05)(圖3)。

    NC組、si-1組、si-2組DLD-1細(xì)胞早期凋亡率分別為6.27%±3.13%、16.53%±3.38%和10.57%±0.85%,si-1組早期凋亡率較NC組顯著增加(P<0.05);三組晚期凋亡率分別為6.20%±0.98%、22.93%±1.57%和11.50%±0.70%,si-1組、si-2組晚期凋亡率均較NC組顯著增加(P<0.01)(圖4)。

    三、Ran siRNA對(duì)DLD-1細(xì)胞caspase-3、PARP表達(dá)的影響

    si-1組、si-2組DLD-1細(xì)胞與NC組相比,未被切割的caspase-3(非活性形式,位于35 kDa處)表達(dá)無明顯變化,被切割的caspase-3(活性形式, 位于17 kDa和19 kDa處)表達(dá)水平顯著升高。si-1組、si-2組DLD-1細(xì)胞與NC組相比,未被切割的PARP(活性形式,位于116 kDa處)表達(dá)有所下降,被切割的PARP(非活性形式,位于89 kDa處)表達(dá)水平顯著升高(圖5)。

    *P<0.05, **P<0.01

    *P<0.05, **P<0.01

    *P<0.05, **P<0.01

    *P<0.05, **P<0.01,***P<0.001

    圖5 Ran siRNA對(duì)DLD-1細(xì)胞caspase-3、PARP蛋白表達(dá) 的影響(蛋白質(zhì)印跡法)

    討 論

    細(xì)胞凋亡涉及一系列基因的激活和表達(dá)調(diào)控。Caspases家族是細(xì)胞凋亡過程中的關(guān)鍵元件,其激活和異常表達(dá)均可引起細(xì)胞凋亡。Caspases家族成員按其在凋亡中發(fā)揮的作用可分為啟動(dòng)型、效應(yīng)型和炎癥型三種類型。Caspase-3屬于效應(yīng)型,正常情況下,胞質(zhì)中的caspase-3以無活性的酶原形式存在,當(dāng)細(xì)胞發(fā)生凋亡時(shí),caspase-3被啟動(dòng)型caspases切割成小片段,成為有活性的caspase-3,進(jìn)而剪切細(xì)胞骨架蛋白和核蛋白,如PARP、DNA裂解因子(DNA fragmentation factor, DFF)、核纖層蛋白A(lamin A)等。PARP屬于DNA修復(fù)酶,與DNA修復(fù)、基因完整性有關(guān),是caspase-3最主要的切割底物。細(xì)胞凋亡發(fā)生時(shí),PARP被剪切成小片段,不能發(fā)揮正常功能,導(dǎo)致DNA裂解,細(xì)胞凋亡[18]。本研究結(jié)果表明,以siRNA抑制Ran表達(dá)后,結(jié)腸癌細(xì)胞株HCT116、DLD-1細(xì)胞凋亡明顯增多;進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn),細(xì)胞中被切割的caspase-3和被切割的PARP表達(dá)水平均顯著升高,提示抑制Ran表達(dá)可通過誘導(dǎo)caspase-3活化和PARP失活促進(jìn)結(jié)腸癌細(xì)胞發(fā)生凋亡。

    目前關(guān)于下調(diào)Ran引起細(xì)胞凋亡的機(jī)制尚未明確,相關(guān)研究數(shù)量有限。Yuen等[13]的研究發(fā)現(xiàn),快速生長(zhǎng)的腫瘤細(xì)胞在Ran下調(diào)后更易發(fā)生凋亡,可能與PI3K/Akt/mTORC1、Ras/MEK/ERK通路激活有關(guān)。Ran下調(diào)可影響細(xì)胞的核質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)過程,導(dǎo)致轉(zhuǎn)錄因子核質(zhì)定位異常,進(jìn)而影響特定基因的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),最終導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞惡性表型發(fā)生。Schnepp等[15]的研究表明,LIN28B可作為Ran mRNA的結(jié)合蛋白促進(jìn)Ran轉(zhuǎn)錄和翻譯,進(jìn)而引起腫瘤細(xì)胞功能改變。此外,Guvenc等[19]的研究發(fā)現(xiàn),Ran對(duì)細(xì)胞凋亡的調(diào)控機(jī)制與存活素(survivin)表達(dá)下調(diào)有關(guān),survivin 表達(dá)下調(diào)可導(dǎo)致凋亡抑制蛋白表達(dá)下調(diào),促進(jìn)caspase-3激活,從而引起細(xì)胞凋亡。

    綜上所述,本研究結(jié)果顯示,沉默Ran基因可通過誘導(dǎo)caspase-3活化和PARP失活促進(jìn)結(jié)腸癌細(xì)胞發(fā)生凋亡。這一發(fā)現(xiàn)為臨床治療結(jié)腸癌提供了新思路,但下調(diào)Ran引起腫瘤細(xì)胞凋亡的調(diào)控機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。

    1 樊代明,張學(xué)庸,陳希陶,等. 結(jié)腸癌單克隆抗體MC3、5、7、10的制備及其相應(yīng)抗原免疫組化定位的研究[J]. 細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志, 1986 (3): 19-24.

    2 樊代明,張學(xué)庸,陳希陶,等. 抗結(jié)腸癌細(xì)胞單克隆抗體的制備及相應(yīng)抗原免疫組化鑒定[J]. 第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào), 1988, 9 (2): 74-77.

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    (2016-11-08收稿;2016-12-14修回)

    Effect of Silencing Ran Gene by siRNA on Apoptosis and Expressions of Caspase-3 and PARP in Colon Cancer Cell Lines

    WANGXin,GENGLei,SUNLina,SUNLihui,LUYuanyuan,WANGXin.

    XijingHospitalofDigestiveDiseases&StateKeyLaboratoryofCancerBiology,theFourthMilitaryMedicalUniversity,Xian(710032)

    Background: Colon cancer is one of the common malignant tumors of digestive system. In our previous study, it has been demonstrated that colon cancer specific antigen thioredoxin like-2b (Txl-2b) can interact with Ras-related nuclear protein (Ran). However, there are few reports about the role and mechanism of Ran in tumorigenesis of colon cancer. Aims: To investigate the effect of Ran-targeting RNA interference on apoptosis and expressions of caspase-3 and poly(ADP-ribose) polymerase (PARP) in colon cancer cell lines.Methods: 20, 40 and 60 nmol/L siRNA-1 (si-1 group), siRNA-2 (si-2 group), siRNA-3 (si-3 group) targeting to Ran gene and normal control siRNA (NC group) were transfected into colon cancer cell line HCT116 and DLD-1, respectively. The interference efficiency of siRNAs and expressions of caspase-3 and PARP were detected by Western blotting. Cell apoptosis was determined by flow cytometry. Results: 20 nmol/L siRNA-1 and siRNA-2 had the best effect on inhibiting expression of Ran. Early apoptosis rates of HCT116 and DLD-1 cells in si-1 group were significantly higher than those in NC group (19.37%±7.57%vs. 4.83%±1.72%; 16.53%±3.38%vs. 6.27%±3.13%;Pall <0.05). Late apoptosis rates of HCT116 and DLD-1 cells in si-1 and si-2 groups were significantly higher than those in NC group (15.97%±3.31%, 16.33%±5.40%vs. 6.40%±1.05%; 22.93%±1.57%, 11.50%±0.70%vs. 6.20%±0.98%;Pall <0.05). Compared with NC group, expressions of cleaved caspase-3 (active form) and cleaved PARP (inactive form) were significantly increased in DLD-1 cells of si-1 and si-2 groups. Conclusions: Silencing Ran gene can significantly promote the apoptosis of colon cancer cells, and its mechanism is related to the regulation of caspase-3 and PARP expression.

    Colonic Neoplasms; Ras-Related Nuclear Protein; RNA, Small Interfering; Apoptosis; Caspase 3; Poly(ADP-ribose) Polymerases

    10.3969/j.issn.1008-7125.2017.03.003

    國(guó)家自然科學(xué)基金(81272650、81472701、81572929)

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