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    RUVBL2基因knock—down對Rad51和γ—H2AXfoci的影響

    2017-03-27 09:04:32韓瀠儀
    科技資訊 2017年2期

    韓瀠儀

    摘 要:用脂質(zhì)體轉染的方法將特定的RUVBL2 siRNA序列轉染到真核細胞,并鑒定其在人肺纖維細胞(MRC5 SV)中的表達,以確保RUVBL2基因的knock-down效果。用Rad51和γ-H2AX的特異性抗體進行免疫熒光染色,應用熒光顯微鏡觀察計數(shù)Rad51和γ-H2AX foci的數(shù)量。Western blot法證實了siRNA以及轉染的效率,確定了RUVBL2基因的存在有利于誘導DNA雙鏈斷裂(DSB)條件下Rad51和γ-H2AX被招募到DNA損傷位點。

    關鍵詞:RUVBL2 siRNA RAD51 γ-H2AX foci

    中圖分類號:R113 文獻標識碼:A 文章編號:1672-3791(2017)01(b)-0200-03

    在細胞生命活動過程中,基因組DNA常會受到內(nèi)源和外源因子的攻擊而發(fā)生不同類型的損傷。其中,對細胞最具傷害性的損傷是DNA雙鏈斷裂(double-strand break, DSB)。大分子蛋白復合體INO80就直接參與了DSB修復過程[1]。RUVBL蛋白是INO80復合體的一類重要亞基。RUVBL1(RuvB-like 1)和RUVBL2(RuvB-like 2)同屬于ATPases(AAA+ ATPase)家族成員,是細菌DNA 解旋酶RuvB蛋白在哺乳動物中的同源蛋白[2]。

    同源重組是DSB修復的一種重要修復方式,RAD51是一種重要的重組蛋白,主要尋找同源DNA的模板并且?guī)椭趽p傷DNA與未損傷DNA修復模板之間產(chǎn)生聯(lián)系[3]。在酵母中,INO80復合體在染色體修飾和染色體重組過程中會將RAD51蛋白招募到DNA損傷位點[4],而在哺乳動物細胞里INO80復合體也會在染色體修飾和染色體重組過程中將RAD51招募到了DNA損傷位點[5]。哺乳動物INO80復合體通過DNA末端切除的作用介導了DSB的修復[6]。RUVBL蛋白的缺失會影響RAD51被招募到DNA雙鏈斷裂位點,從而影響到后續(xù)進行的DNA末端切除修復[7]。小鼠和人體細胞內(nèi),在含有RUVBL蛋白的TIP60復合體缺失或者活性降低的情況下,RAD51被招募至DNA雙鏈斷裂損傷位點的進程也會被削弱[8]。也就是說RUVBL蛋白在DNA損傷修復過程,尤其是末端切除修復中有著不可替代的作用。細胞在電離輻射等因素作用下直接誘導形成的DSB可誘導H2AX磷酸化成γ-H2AX,γ-H2AX是DNA 雙鏈斷裂的一個標志[9]。細胞在受到DNA損傷后,尤其是DNA雙鏈斷裂后,在斷裂位點會出現(xiàn)由γ-H2AX形成的焦點。γ-H2AX對于其他蛋白募集到焦點起著非常關鍵的作用[10]。INO80復合體通過與γ-H2AX相互作用而使得INO80被招募到DNA雙鏈斷裂處[11]。在人類細胞中,RUVBL就參與了與γ-H2AX的相互作用[12]。由此可以推測RUVBL蛋白在哺乳動物細胞DNA損傷修復的過程中有著重要的作用。

    RUVBL1作為INO80的亞基之一,在DSB修復過程中起到了重要的作用,主要體現(xiàn)在誘導H2AX磷酸化變成γ-H2AX,然后將Rad51修復蛋白招募至DSB位點[13]。由于RUVBL2和RUVBL1的同源性,我們猜測RUVBL2和RUVBL1也有相似的作用。為了探究RUVBL2是否也參與了DSB的修復,在人類細胞里用siRNA的方法降低RUVBL2蛋白表達,X射線處理誘導DSB的形成,探索在此種情況下Rad51和γ-H2AXfoci的形成是否會受到RUVBL2蛋白表達的影響。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    人胚肺成纖維細胞MRC5 SV細胞系為本實驗室保存,脂質(zhì)體Lipofectamine 2000購自Invitrogen公司,DMEM培養(yǎng)基購自Nissui公司,新生胎牛血清購自Biological Industries公司,兔抗RUVBL2(EPR4146)抗體購自Abcam 公司,HRP 標記山羊抗兔IgG(474-1516)購自KPL公司,β-Tubulin抗體(T8328)購自 Sigma公司,HRP標記抗鼠IgG (sc-2005)購自Santa Cruz Biotechnology公司,ECL 發(fā)光試劑盒購自Promega公司,DAPI細胞核熒光染劑購自WAKO公司,RAD51抗體(70-002)購自Bio Academia公司,γ-H2AX 抗體(05-636)購自MILLIPORE公司,鼠抗(Alexa Fluor 546)購自Invitrogen公司,兔抗(Alexa Fluor 488)購自Invitrogen公司,熒光封閉劑購自DAKO公司。

    1.2 方法

    1.2.1 細胞培養(yǎng)

    人肺纖維細胞MRC5-SV細胞系用于進行RUVBL2 knock-down的實驗。細胞系培養(yǎng)于DMEM培養(yǎng)基,內(nèi)含有10% 胎牛血清,L-谷氨酰胺(584μg/mL)和卡那霉素(20 μg/mL)。細胞放置37°C,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2.2 siRNA

    MRC5-SV細胞培養(yǎng)于直徑為10 cm的培養(yǎng)皿中,當細胞密度達到約50%左右,用Lipofectamine 2000(Invitrogen)轉染試劑將RUVBL2 siRNA (2~30 nM) 轉入細胞。1 d以后將細胞分裝成4盤,3d以后收集細胞檢測蛋白。siRNA序列為5-gctccacgcagtacatgaaggagta-3。

    1.2.3 Western blot分析

    細胞培養(yǎng)5 d后收集細胞,低溫RIPA 緩沖液(25 mM Tris-HCl (pH 7.6),150 mM,NaCl,1% NP-40,1% sodium deoxycholate和0.1% SDS) 重懸細胞,補充1 mM PMSF 放置10min, 渦旋震蕩2次,2 s/次,4°C,22,000 ×g離心20 min,取上清。蛋白濃度的測定用BCA protein assay kit (Pierce)。蛋白樣品上樣至7.5%SDS聚丙烯酰氨凝膠電泳,轉膜儀Trans-Blot Turbotransfer system (BIO-RAD)的作用下蛋白被轉移至PDVF 膜。TBST(20 mM Tris-HCl(pH 7.6),150 mM NaCl和0.1% Tween 20)清洗PDVF膜。 用含有1% BSA 的TBST封閉PDVF膜,封閉后用TBST清洗。加入RUVBL2抗體(1:5000稀釋),4 ℃ 過夜; 次日用TBST洗3次,10 min/次;加入HRP 標記的山羊抗兔二抗(KPL 474-1516, 1:5000稀釋),37 ℃,1 h; TBST 洗3 次,10 min/次。β-Tubulin作為對照蛋白,加入β-Tubulin抗體(1:5000稀釋),4 ℃過夜;次日用TBST洗3次,10 min/次; 加入HRP 標記的抗鼠二抗(1:2000稀釋)。用ECL顯色,ChemiDoc XRS+ system(BIO-RAD)化學發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)中檢測雜交信號。目標條帶密度將由Precision Plus Protein WesternC Standard(BIO-RAD)進行計算。

    1.2.4 foci免疫熒光染色

    細胞需要培養(yǎng)于蓋玻片上:用鑷子將高溫滅菌后的蓋玻片(MATSUNAMI S2112 microslide glass)放進直徑為10 cm的培養(yǎng)皿中,每片蓋玻片承載500 uL的細胞懸液(細胞懸液的濃度約為5×105個細胞/mL)。細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)30 min,細胞于蓋玻片附著穩(wěn)定后,加入10 mL培養(yǎng)基,培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。24 h后,真空泵吸除細胞培養(yǎng)基,10 mPBS清洗兩次。將蓋玻片浸泡于冰甲醇里,冰箱放置20 min,取出蓋玻片,移除殘留甲醇后,在冰丙酮里浸泡7 s后迅速取出干燥。加入300 uL封閉液封閉蓋玻片,室溫反應20 min。加入150 uL γ-H2AX/ RAD51抗體(10%BSA 15μL,γ-H2AX 1:150,RAD51 1:400稀釋于PBS),4 ℃過夜;次日用PBS 洗3次,10 min/次;加入二抗150 uL(10%BSA 15μL,抗鼠二抗1:500,抗兔二抗1:1000稀釋于PBS),37 ℃,1 h;PBS 洗3次,10 min/次。將蓋玻片放入有0.05% tween20%PBS 的罐子里避光放置5 min。取出蓋玻片吸干PBS。將100 uL細胞核染液(DAKO:DAPI=1:500)均勻夾在固定有細胞的蓋玻片上。將蓋玻片放置在載玻片上,用指甲油封住邊緣處。最后用熒光顯微鏡(Olympus FluoView)進行觀察。

    2 結果與分析

    2.1 siRNA效果檢測

    siRNA序列作用于RUVBL2 mRNA。siRNA被轉染進入MRC5-SV細胞, 用Western blot分析法分析了轉染3 d后siRNA對RUVBL2 knock-down的效果。最適knock-down濃度為10 nM siRUVBL2,如圖1所示。

    2.2 RUVBL2knock-down對γ-H2AX的影響

    如圖2所示,沒有抑制RUVBL2蛋白表達時,經(jīng)X射線照射誘導了DSB形成后,γ-H2AX的foci數(shù)量很多,但是抑制了RUVBL2蛋白的表達,再經(jīng)X射線處理,γ-H2AX foci數(shù)量明顯要比RUVBL2表達沒有被抑制時的γ-H2AX的foci數(shù)量要少,這說明RUVBL2有可能參與;了DSB誘導γ-H2AX的形成。

    2.3 RUVBL2的knock-down對RAD51 foci的影響

    沒有抑制RUVBL2蛋白表達時,經(jīng)X射線照射誘導了DSB的形成,RAD51的foci數(shù)量很多,但是抑制了RUVBL2蛋白的表達,再經(jīng)X射線處理,RAD51 foci數(shù)量明顯要比沒有被knock-down的細胞RAD51的foci數(shù)量要少(圖3),這說明siRUVBL2影響了RAD51被招募到細胞核,間接說明RUVBL2參與了將RAD51招募到DSB損傷位點處的作用。

    3 結論

    從熒光免疫的實驗來看,我們可以說RAD51和γ-H2AX的foci是受到了RUVBL2 knock-down的影響。對于對照處理細胞來說,10Gy X射線處理過的細胞里RAD51和γ-H2AX的foci數(shù)量明顯要比沒有被射線照射的細胞多。由此我們可以初步得出以下結論:RUVBL2參與了招募RAD51至損傷位點的進程,一旦RUVBL2缺失,將會阻礙DNA損傷觸發(fā)細胞周期中的信號傳導等一系列級聯(lián)反應,阻礙RAD51被招募到DNA損傷位點。

    因此,這個結果揭示了抑制RUVBL2的表達會影響DSB誘發(fā)的RAD51分配失調(diào)進而阻礙DNA損傷修復應答的進程。

    參考文獻

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