趙鳳菊,關(guān) 淼,李井春,楊本勇,趙曉彤
(遼寧省動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,遼寧沈陽 110164)
產(chǎn)氣莢膜梭菌毒素基因分型PCR檢測方法的建立及初步應(yīng)用
趙鳳菊,關(guān) 淼,李井春,楊本勇,趙曉彤
(遼寧省動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心,遼寧沈陽 110164)
建立一種快速鑒別診斷不同型產(chǎn)氣莢膜梭菌的PCR檢測方法,為動(dòng)物產(chǎn)氣莢膜梭菌病的快速診斷及流行病學(xué)調(diào)查提供有效的技術(shù)手段??朔鹘y(tǒng)鑒定方法耗時(shí)長、費(fèi)用高的缺點(diǎn),提高了檢測效率。通過對(duì)產(chǎn)氣莢膜梭菌α毒素、β毒素、ε毒素和ι毒素基因序列分析,利用Premier5.0軟件設(shè)計(jì)并合成了5對(duì)特異性引物,建立了針對(duì)5種不同型產(chǎn)氣莢膜梭菌的PCR鑒別診斷方法。通過反復(fù)試驗(yàn)確定了最佳退火溫度為53℃。通過靈敏度試驗(yàn)表明,PCR檢測方法最低能檢測到的DNA濃度α毒素為308 pg/μL,β毒素、ε毒素為30.8 pg/μL,ι毒素A為0.122 pg/μL,ι毒素B為0.05 pg/μL。通過特異性試驗(yàn)表明,本方法具有較高的特異性。同時(shí),通過對(duì)本方法檢測出的陽性樣品16 S rRNA序列分析發(fā)現(xiàn),與GenBank中的其他產(chǎn)氣莢膜梭菌的16 S rRNA序列同源性均在98%以上。表明建立的檢測方法靈敏度高、特異性強(qiáng),可以應(yīng)用于動(dòng)物產(chǎn)氣莢膜梭菌病的實(shí)驗(yàn)室診斷。
產(chǎn)氣莢膜梭菌;毒素基因;聚合酶鏈反應(yīng);鑒別診斷
產(chǎn)氣莢膜梭菌(Clostridiumperfringens)是一種能夠形成芽胞的革蘭陽性厭氧菌,是人類、家畜和野生動(dòng)物共患的一種病原菌[1]。本菌在環(huán)境中廣泛分布,主要通過毒素導(dǎo)致機(jī)體發(fā)病。不僅可以導(dǎo)致各種動(dòng)物壞死性腸炎、腸毒血癥,還可以引起人類食物中毒、壞死性小腸結(jié)腸炎和氣性壞疽[2]。這些疾病大多數(shù)發(fā)病迅速,治療困難,常常致命。因此,必須依靠預(yù)防措施控制,包括疫苗接種[3]。產(chǎn)氣莢膜梭菌細(xì)菌分離培養(yǎng)、生化鑒定及家兔腸袢腸毒素檢測試驗(yàn)等傳統(tǒng)診斷方法不僅耗時(shí)長,同時(shí)因需要用家兔作為實(shí)驗(yàn)動(dòng)物進(jìn)行腸毒素檢測而增加檢測成本。因此,有必要建立一種快速、敏感、特異的分型診斷方法。目前,產(chǎn)氣莢膜梭菌毒素至少已發(fā)現(xiàn)19種,其中α、β、ε和ι為主要致死毒素,根據(jù)這4種主要毒素可將產(chǎn)氣莢膜梭菌分為A(α)、B(α、β、ε)、C(α、β)、D(α、ε)、E(α、ι)5個(gè)類型[4-5]。不同型的產(chǎn)氣莢膜梭菌不僅可以導(dǎo)致不同的疾病,同時(shí)具有發(fā)病急、死亡快、病死率高的特點(diǎn),病死率高達(dá)40%~100%[6]。
本研究以α毒素、β毒素、ε毒素、ι毒素為檢測對(duì)象,建立該菌毒素基因的PCR鑒別診斷方法,為產(chǎn)氣莢膜梭菌病的分型診斷提供技術(shù)支撐。對(duì)于本病的診斷、預(yù)防、治療及流行病學(xué)調(diào)查具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。
1.1 材料
1.1.1 樣 品 羊梭菌病多聯(lián)干粉滅活疫苗,哈藥集團(tuán)生物疫苗有限公司產(chǎn)品;ι毒素陽性質(zhì)粒;Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗,新疆天康畜牧生物技術(shù)股份有限公司產(chǎn)品;大腸埃希菌ATCC25922,杭州市天和微生物試劑有限公司產(chǎn)品;金黃色葡萄球菌、沙門菌、奇異變形桿菌、豬鏈球菌、巴氏桿菌,由遼寧省動(dòng)物疫病預(yù)防控制中心保存。
136份臨床樣品為病死動(dòng)物的腸內(nèi)容物及患病動(dòng)物的新鮮糞便。
1.1.2 主要試劑 DNAzol○RReagent提取試劑,Invitrogen公司產(chǎn)品;ExTaqDNA聚合酶、10×Ex-Taqbuffer、2.5 mmol/L dNTPs、DNA Marker DL 2 000、溴化乙錠,寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品。
1.1.3 引 物 根據(jù)產(chǎn)氣莢膜梭菌產(chǎn)生的4種主要毒素,即α、β、ε和ι毒素基因序列設(shè)計(jì),引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,參考序列GenBank收錄號(hào)為JN793988、HQ179547、JX010451、X73562.1,引物序列見表1。
1.1.4 主要儀器 高速臺(tái)式冷凍離心機(jī)、冰箱、PCR儀、電泳儀、凝膠成像系統(tǒng)、微波爐、分析天平等。
表1 產(chǎn)氣莢膜梭菌PCR引物的設(shè)計(jì)
1.2 方 法
1.2.1 臨床樣品的處理 將腸內(nèi)容物、糞便按1∶10倍體積加入無菌生理鹽水,充分?jǐn)嚢瑁覝胤胖?0 min,12 000 r/min離心20 min,取上清液提取DNA。
1.2.2 DNA模板的制備 吸取200 μL樣品至1.5 mL Eppendorf管中,加入800 μL DNAzol提取試劑,混勻后4 ℃、12 000 r/min離心10 min。吸取900 μL上清,置于另一1.5 mL Eppendorf管中,加入500 μL無水乙醇,混勻后4 ℃、12 000 r/min離心5 min。棄上清,無菌水配制的750 mL/L乙醇洗滌2次,干燥后用40 μL無菌水溶解沉淀,置-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 PCR反應(yīng)體系及反應(yīng)條件 采用25μL反應(yīng)體系,反應(yīng)體系為:滅菌蒸餾水 17.375 μL,10×PCR buffer 2.5 μL,2.5 mmol/L dNTPs 2 μL,ExTaqDNA聚合酶 0.125 μL,上、下游特異性PCR引物(20 μmol/L) 各0.5 μL,模板 2 μL。
反應(yīng)條件為:94℃ 5 min;94℃ 45 s,53℃ 45 s,72℃ 45 s, 35個(gè)循環(huán);72℃ 10 min。
1.2.4 特異性試驗(yàn) 利用優(yōu)化后的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件對(duì)Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗、大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、沙門菌、奇異變形桿菌、豬鏈球菌、巴氏桿菌進(jìn)行檢測, 并設(shè)立無模板陰性對(duì)照。
1.2.5 敏感性試驗(yàn) 利用優(yōu)化后的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件,將產(chǎn)氣莢膜梭菌的DNA進(jìn)行10倍倍比稀釋至10-5,然后進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以檢測該方法的敏感性。
1.2.6 臨床應(yīng)用 用本試驗(yàn)建立的產(chǎn)氣莢膜梭菌毒素基因分型PCR檢測方法對(duì)136份臨床腹瀉樣品進(jìn)行檢測,同時(shí)設(shè)立陽性病料對(duì)照、無模板陰性對(duì)照。并選取15份產(chǎn)氣莢膜梭菌陽性樣品,擴(kuò)增其16 S rRNA序列,送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行序列測定,并與NCBI基因庫進(jìn)行序列同源性比較。
2.1 產(chǎn)氣莢膜梭菌PCR擴(kuò)增結(jié)果
以產(chǎn)氣莢膜梭菌的DNA為模板,利用本試驗(yàn)建立的方法進(jìn)行PCR檢測。結(jié)果顯示,PCR可擴(kuò)增出α毒素、β毒素、ε毒素和ι毒素基因的目的條帶,無模板陰性對(duì)照無目的條帶(圖1)。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.α毒素; 2. β毒素; 3. ε毒素; 4. ι毒素A; 5. ι毒素B;N.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 2 000;1.Alpha toxin;2.Beta toxin;3.Epsilon toxin;4.Iota toxin A;5.Iota toxin B;N.Negative control
圖1 目的基因的PCR擴(kuò)增
Fig.1 Amplification of the target genes by PCR
2.2 特異性試驗(yàn)結(jié)果
利用優(yōu)化后的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件對(duì)Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗、大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、沙門菌、奇異變形桿菌、豬鏈球菌、巴氏桿菌進(jìn)行檢測。結(jié)果發(fā)現(xiàn),僅產(chǎn)氣莢膜梭菌的DNA模板能擴(kuò)增出目的條帶,而對(duì)其他被檢細(xì)菌均無目的條帶(圖2~圖6)。
2.3 敏感性試驗(yàn)結(jié)果
將產(chǎn)氣莢膜梭菌的DNA進(jìn)行10倍倍比稀釋至10-5,進(jìn)行PCR檢測。電泳結(jié)果顯示,α毒素最低可以檢測到濃度為308 pg/μL,β毒素、ε毒素最低可以檢測到濃度為30.8 pg/μL,ι毒素A最低可以檢測到濃度為0.122 pg/μL,ι毒素B最低可以檢測到濃度為0.05 pg/μL(圖7~圖11)。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.產(chǎn)氣莢膜梭菌;2.Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗;3.大腸埃希菌;4.金黃色葡萄球菌;5.沙門菌;6.奇異變形桿菌;7.豬鏈球菌;8.巴氏桿菌
M.DNA Marker DL 2 000;1.Clostridiumperfringen;2.B.anthracis;3.E.coli;4.S.aureus;5.Salmonella;6.Proteusmirabilis;7.Stre-ptococcussuis;8.Pasteurella
圖2 α毒素PCR特異性試驗(yàn)
Fig.2 The specificity test of PCR for alpha toxin
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.產(chǎn)氣莢膜梭菌;2.Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗;3.大腸埃希菌;4.金黃色葡萄球菌;5.沙門菌;6.奇異變形桿菌;7.豬鏈球菌;8.巴氏桿菌
M.DNA Marker DL 2 000;1.Clostridiumperfringen;2.B.anthracis;3.E.coli;4.S.aureus;5.Salmonella;6.Proteusmirabilis;7.Stre-ptococcussuis;8.Pasteurella
圖3 β毒素PCR特異性試驗(yàn)
Fig.3 The specificity test of PCR for beta toxin
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.產(chǎn)氣莢膜梭菌;2.Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗;3.大腸埃希菌;4.金黃色葡萄球菌;5.沙門菌;6.奇異變形桿菌;7.豬鏈球菌;8.巴氏桿菌
M.DNA Marker DL 2 000;1.Clostridiumperfringen;2.B.anthracis;3.E.coli;4.S.aureus;5.Salmonella;6.Proteusmirabilis;7.Stre-ptococcussuis;8.Pasteurella
圖4 ε毒素PCR特異性試驗(yàn)
Fig.4 The specificity test of PCR for epsilon toxin
2.4 臨床樣品檢測結(jié)果
通過應(yīng)用建立的產(chǎn)氣莢膜梭菌毒素基因分型PCR檢測方法對(duì)臨床腹瀉樣品的檢測發(fā)現(xiàn),35份樣品僅檢測出α毒素,為A型產(chǎn)氣莢膜梭菌;2份樣品僅檢測出α毒素和β毒素,為C型產(chǎn)氣莢膜梭菌;樣品陽性率為27.21%(37/136)。同時(shí),選取15份產(chǎn)氣莢膜梭菌陽性樣品,擴(kuò)增其16 S rRNA序列,送生物公司進(jìn)行序列測定,應(yīng)用在線軟件進(jìn)行Blast,結(jié)果發(fā)現(xiàn),測定序列與GenBank中的其他產(chǎn)氣莢膜梭菌的16 S rRNA序列同源性均在98%以上。表明該方法能夠很好的用于臨床樣品產(chǎn)氣莢膜梭菌的分型檢測。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.產(chǎn)氣莢膜梭菌;2.Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗;3.大腸埃希菌;4.金黃色葡萄球菌;5.沙門菌;6.奇異變形桿菌;7.豬鏈球菌;8.巴氏桿菌
M.DNA Marker DL 2 000;1.Clostridiumperfringen;2.B.anthracis;3.E.coli;4.S.aureus;5.Salmonella;6.Proteusmirabilis;7.Stre-ptococcussuis;8.Pasteurella
圖5 ι毒素A PCR特異性試驗(yàn)
Fig.5 The specificity test of PCR for iota toxin A
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.產(chǎn)氣莢膜梭菌;2.Ⅱ號(hào)炭疽芽胞苗;3.大腸埃希菌;4.金黃色葡萄球菌;5.沙門菌;6.奇異變形桿菌;7.豬鏈球菌;8.巴氏桿菌
M.DNA Marker DL 2 000;1.Clostridiumperfringen;2.B.anthracis;3.E.coli;4.S.aureus;5.Salmonella;6.Proteusmirabilis;7.Stre-ptococcussuis;8.Pasteurella
圖6 ι毒素B PCR特異性試驗(yàn)
Fig.6 The specificity test of PCR for iota toxin B
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
M.DNA Marker DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
圖7 α毒素PCR敏感性試驗(yàn)
Fig.7 The sensitivity result of PCR for alpha toxin
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
M.DNA Marker DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
圖8 β毒素PCR敏感性試驗(yàn)
Fig.8 The sensitivity result of PCR for beta toxin
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
M.DNA Marker DL 2 000;1.30800 pg/μL;2.3080 pg/μL;3.308 pg/μL;4.30.8 pg/μL;5.3.08 pg/μL;6.0.308 pg/μL
圖9 ε毒素PCR敏感性試驗(yàn)
Fig.9 The sensitivity result of PCR for epsilon toxin
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.1220 pg/μL;2.122 pg/μL;3.12.2 pg/μL;4.1.22 pg/μL;5.0.122 pg/μL;6.0.0122 pg/μL
M.DNA Marker DL 2 000;1.1220 pg/μL;2.122 pg/μL;3.12.2 pg/μL;4.1.22 pg/μL;5.0.122 pg/μL;6.0.0122 pg/μL
圖10 ι毒素A PCR敏感性試驗(yàn)
Fig.10 The sensitivity result of PCR for iota toxin A
隨著分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展,動(dòng)物疫病的檢測越來越簡便、快捷,準(zhǔn)確性越來越高,為動(dòng)物疫病防控提供了有力的技術(shù)支持,從而有效的控制住動(dòng)物疫病的蔓延及可能為人類健康帶來的威脅。PCR是目前動(dòng)物疫病診斷中應(yīng)用最為廣泛的重要技術(shù)手段之一,PCR已經(jīng)被成功運(yùn)用于各種細(xì)菌病的病原鑒定。不僅降低了病原尤其是人畜共患病病原對(duì)人類、動(dòng)物及環(huán)境可能造成的威脅,同時(shí)有效的提高了檢測效率,為動(dòng)物疫病防控爭取到寶貴時(shí)間。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 2 000;1.500 pg/μL;2.50 pg/μL;3.5 pg/μL;4.0.5 pg/μL;5.0.05 pg/μL;6.0.005 pg/μL
M.DNA Marker DL 2 000;1.500 pg/μL;2.50 pg/μL;3.5 pg/μL;4.0.5 pg/μL;5.0.05 pg/μL;6.0.005 pg/μL
圖11 ι毒素B PCR敏感性試驗(yàn)
Fig.11 The sensitivity result of PCR for iota toxin B
產(chǎn)氣莢膜梭菌攜帶超過17種基因編碼的外毒素,但通常根據(jù)攜帶的一種或多種毒素基因(α毒素、β毒素、ε毒素或ι毒素)將產(chǎn)氣莢膜梭菌分為A、B、C、D、E 5型[7]。產(chǎn)氣莢膜梭菌傳統(tǒng)的分型方法具有試驗(yàn)周期長、檢測成本較高、操作復(fù)雜的缺點(diǎn),而PCR的應(yīng)用克服了傳統(tǒng)分型方法的缺點(diǎn)。
本試驗(yàn)建立的檢測方法具有良好的靈敏性與較強(qiáng)的特異性。16 S rRNA基因序列代表一種原核生物,通過比較變動(dòng)序列可以從種屬、種類甚至亞種水平進(jìn)行分類[8]。本研究經(jīng)過對(duì)大量臨床樣品的檢測及對(duì)部分陽性樣品16 S rRNA 序列的同源性分析發(fā)現(xiàn),本試驗(yàn)建立的檢測方法可以快速、準(zhǔn)確的運(yùn)用于產(chǎn)氣莢膜梭菌病的臨床診斷。
[1] Garcia J P,Beingesser J,Fisher D J,et al.The effect ofClostridiumperfringenstype C strain CN3685 and its isogenic beta toxin null mutant in goats[J].Vet Microbiol,2012,157(3-4):412-419.
[2] Low LY,Harrison P F,Lin Y H,et al.RNA-seq analysis of virR and revR mutants ofClostridiumperfringens[J].BMC Genomics,2016,17(1):391.
[3] Goossens E,Verherstraeten S,Valgaeren B R,et al.Toxin-neutralizing antibodies protect againstClostridiumperfringens-induced necrosis in an intestinal loop model for bovine necrohemorrhagic enteritis[J]. BMC Vet Res,2016,12(1):101.
[4] 李偉杰,于建慧,魏財(cái)文,等.產(chǎn)氣莢膜梭菌毒素型菌落多重PCR方法的建立及應(yīng)用[J].西北農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2016,25(6):823-827.
[5] Radhika B,Kumar N V,Sreenivasulu D.Detection ofClostridiumperfringensalpha toxin gene in lambs by loop mediated isothermal amplification[J].Vet World,2016,9(1):60-64.
[6] 劉澤文,袁芳艷,田永祥,等.仔豬大腸桿菌和C型產(chǎn)氣莢膜梭菌對(duì)試驗(yàn)動(dòng)物的毒力研究[A]//中國畜牧獸醫(yī)學(xué)會(huì)動(dòng)物傳染病學(xué)分會(huì)第十六次學(xué)術(shù)研討會(huì)論文集,山東濟(jì)南,2015.
[7] Linden J R,Ma Y,Zhao B,et al.Clostridiumperfringensepsi lon toxin causes selective death of mature oligodendrocytes and central nervous system demyelination[J].MBio,2015,6(3):e02513.
[8] 黃名錢.豬源大腸桿菌四環(huán)素耐藥基因檢測及大腸桿菌抑制劑篩選[D].江西南昌:江西農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.
Establishment and Application of PCR Method for Toxin Gene Typing in Clostridium perfringens
ZHAO Feng-ju,GUAN Miao,LI Jing-chun,YANG Ben-yong,ZHAO Xiao-tong
(PreventionandControlCenterofLiaoningProvinceAnimalEpidemicDisease,Shenyang,Liaoning,110164,China)
This study established a rapid diagnostic PCR method forClostridiumperfringens,provided an effective technical means for the rapid diagnosis and epidemiological investigation of animalClostridiumperfringensinfection in order to overcome the long time and high cost disadvantages in traditional identification methods,improve the detection efficiency.Based on the analysis of alpha toxin,beta toxin,epsilon toxin and iota toxin gene sequences forClostridiumperfringens,five pairs of specific primers were designed and synthesized by Premier5.0 software,the PCR method of differential diagnosis forClostridiumperfringenstypes was established.The optimum annealing temperature was 53 ℃ by repeated experiments.The sensitivity test showed that the PCR can detect the lowest concentrations of DNA of the alpha toxin for 308 pg/L,beta toxin,epsilon toxin for 30.8 pg/L,iota toxin A for 0.122 pg/L,iota toxin B for 0.05 pg/L.The specificity test showed that the method has higher specificity.At the same time,through 16 S rRNA sequence analysis of the positive samples,and compared with GenBank in otherClostridiumperfringens16 S rRNA sequence,the homologies were above 98%.Thus,the established detection method has high sensitivity,strong specificity,and can be used in laboratory diagnosis ofClostridiumperfringensinfections in animals.
Clostridiumperfringens; toxin gene; PCR; differential diagnosis
2016-08-06
遼寧省農(nóng)業(yè)攻關(guān)及產(chǎn)業(yè)化項(xiàng)目(2015202013)
趙鳳菊(1978-),女,河北廊坊人,碩士,高級(jí)獸醫(yī)師,主要從事人畜共患病防控技術(shù)研究。
SS859.87
A
1007-5038(2017)03-0059-05