• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      自然殺傷細胞對肝星狀細胞的調控及其在肝纖維化中的作用

      2017-03-07 06:44:51李天陽涂正坤蘇立山
      臨床肝膽病雜志 2017年3期
      關鍵詞:星狀膠原肝細胞

      李天陽, 涂正坤, 蘇立山

      (吉林大學第一醫(yī)院轉化醫(yī)學研究院, 長春 130021)

      自然殺傷細胞對肝星狀細胞的調控及其在肝纖維化中的作用

      李天陽, 涂正坤, 蘇立山

      (吉林大學第一醫(yī)院轉化醫(yī)學研究院, 長春 130021)

      肝星狀細胞(HSC)的激活與肝纖維化進展有至關重要的聯系。作為固有免疫的重要組分, 自然殺傷細胞(NK細胞)在肝內的富集程度更高,在機體防御病毒感染和腫瘤中發(fā)揮關鍵作用,而且其抗肝纖維化的功能也得到證實。NK細胞可以通過直接殺傷早期激活或衰老的HSC,或通過分泌IFNγ抑制肝纖維化??偨Y了最近幾年的相關研究進展,以NK細胞和HSC的功能與表型為基礎,介紹了NK細胞調控HSC的分子免疫學機制及其潛在的抗肝纖維化作用。

      肝硬化; 殺傷細胞, 天然; 肝星狀細胞; 綜述

      至今為止肝纖維化是缺少有效治療手段的世界范圍健康難題[1]。多種原因會導致肝損傷,例如病毒感染(HBV、HCV)、藥物毒物(酒精為主)、代謝(非酒精性脂肪性肝病)以及自身免疫等。如果肝損傷持續(xù)存在,瘢痕組織會逐漸取代正常肝組織,這種慢性發(fā)展引起的病理性結果就是肝纖維化。肝纖維化最終發(fā)展為肝硬化,進而引發(fā)肝衰竭,目前除肝移植外尚缺少有效的治療手段[2]。

      肝纖維化過程伴隨著細胞外基質(ECM)的堆積,而肝星狀細胞(HSC)是肝臟產生ECM的最主要細胞,其激活直接影響肝纖維化病理過程[3]。自然殺傷細胞(NK細胞)作為一種固有淋巴細胞,通過其自然殺傷功能和分泌功能,在機體對抗病毒感染和免疫監(jiān)視中發(fā)揮關鍵作用。本文總結了近幾年NK細胞與HSC關系的相關報道,詳細討論NK細胞對HSC的調控,及其在肝纖維化中扮演的角色。

      1 肝星狀細胞(HSC)

      在正常人肝臟中,HSC大約占肝內細胞總量的5%~8%,通常分布于肝竇內皮細胞與肝細胞之間。正常生理條件下,HSC參與肝臟的發(fā)育與重生、類維生素A代謝,以及肝臟的免疫調節(jié)。

      激活后的HSC會分化為肌成纖維細胞,表達α-平滑肌動蛋白。此外,激活的HSC合成I型膠原(包括α1和α2兩條鏈),表達基質金屬蛋白酶(MMP,特別是MMP-2)、TGFβ1、金屬蛋白酶組織抑制因子TIMP)1等[4]。激活后的HSC會在肝竇間隙中向周圍分泌ECM來逐漸填補肝細胞凋亡產生的空隙[5]。另一方面,激活后的HSC同時參與膠原的降解。MMP是一類鈣依賴性的特異性降解膠原及非膠原ECM成分的蛋白酶,在ECM的降解中發(fā)揮非常重要的作用。而HSC是MMP-2、MMP-9、MMP-13的重要來源[6]。但是,在表達MMP的同時,激活的HSC表達TIMP-1。TIMP-1通過抑制MMP的活性和HSC的凋亡發(fā)揮促纖維化作用[7]。

      在病理情況下, HSC可以被多種炎性反應的信號激活,例如:凋亡小體可以直接被HSC吞噬并激活HSC的促纖維發(fā)生基因的表達[8];肝細胞和Kupffer細胞產生的活性氧可以通過還原型輔酶Ⅱ氧化酶激活HSC[9];凋亡肝細胞的DNA也可以被HSC的Toll樣受體(TLR)9識別[10]等。一些細胞因子也參與HSC的激活(例如肝細胞和Kupffer細胞分泌的TGFβ)。此外,近期研究[11]發(fā)現HIV與HCV可以協同激活HSC的膠原與TIMP-1的表達。

      2 NK細胞

      NK細胞是固有免疫系統重要的組分,在對抗病毒感染和腫瘤中發(fā)揮重要作用,具有殺傷和分泌兩種主要功能。NK細胞具有特殊的識別感染細胞和腫瘤細胞的機制:基于其表面的抑制性受體(如殺傷細胞免疫球蛋白樣受體等)和激活性受體(NKG2D、NKp46等),一系列信號決定了NK細胞對靶細胞的黏附、極化和脫顆粒效應[12]。除了自然殺傷功能,NK細胞還可以通過其胞膜上表達的死亡受體配體(Fas ligand,FasL)和TNF相關凋亡誘導配體(TNF related apoptosis-inducing ligand,TRAIL)激活靶細胞上對應受體直接發(fā)揮殺傷功能。

      肝內NK細胞是一類組織特異性的NK細胞。人肝臟內NK細胞約占所有肝淋巴細胞的30%~50%,而外周血中NK細胞的比例只有10%。除了數量上的差別,肝內NK細胞的表型也與外周血中不同:肝內NK細胞大多數是CD56brightCD16-,相對而言成熟程度較低[13];高表達CD11a,與其在肝內和Kupffer細胞的黏附有關[14];高表達TRAIL[15]。功能上,肝內NK細胞具有更強的分泌功能,包括IFNγ、TNFα、粒細胞-巨噬細胞集落刺激因子等;但脫顆粒效應弱于外周血NK細胞[16]。事實上,外周血NK細胞與肝內NK細胞并不是相互孤立的,在生理狀態(tài)下,存在NK細胞在組織與外周血之間的再循環(huán)[17];在肝臟發(fā)生炎癥反應時,外周血NK細胞會在肝臟中累計[18],而來自于外周血的NK細胞也會發(fā)揮抑制肝纖維化的作用[19]。

      肝內NK細胞在肝臟腫瘤和病毒感染中扮演著重要角色。肝內NK細胞可以通過細胞毒性作用抑制肝腫瘤細胞的轉移[20]。而肝內NK細胞的數量以及NK細胞功能相關基因也與原發(fā)性肝癌患者的生存期相關[21]。此外,肝內NK細胞在對抗HBV/HCV感染中也通過細胞毒性和IFNγ發(fā)揮重要作用。NK細胞IFNγ分泌功能受損與HCV清除之間有直接關系[22];HCV感染者體內CD56neg NK細胞的比例升高,而這一亞群的NK細胞殺傷和分泌能力較弱[23]。阻斷抑制性受體NKG2A,可以激活NK細胞,促進HBV的清除[24]。

      3 NK細胞對HSC激活的調控在肝纖維化發(fā)病機制中的作用

      早在2006年就有報道[25-26]小鼠 NK細胞可以通過殺傷HSC抑制肝纖維化。隨后幾年中,關于NK細胞殺傷HSC的報導逐漸增多,在肝纖維化患者中得到驗證,其機制也逐漸清晰[27]。

      3.1 NK細胞通過細胞毒性作用殺傷激活的HSC NK細胞對激活后HSC的殺傷功能最早報導于2006年[25-26]。隨后在各種動物模型、人原代細胞或細胞系中均得到驗證,NK細胞殺傷HSC的機制也慢慢清晰[28]。這些研究證明NK細胞選擇性殺傷早期激活或者晚期激活的HSC,而不會對未激活的HSC產生細胞毒性。

      其中,小鼠和人原代細胞的研究都傾向于NKG2D在NK細胞識別殺傷HSC上發(fā)揮重要的作用[26,29-30]。NKG2D是NK細胞重要的激活性受體,參與自然殺傷功能。小鼠的HSC表達視黃酸早期轉錄因子1(NKG2D的配體),并且在激活后表達升高[26],同樣,人HSC表面高表達MHC Ⅰ類分子相關蛋白A/B和UL16結合蛋白2(均是NKG2D配體)[30]。無論是在小鼠還是人原代細胞的實驗中,使用抗體阻斷NKG2D,均能抑制NK細胞誘導的HSC凋亡[26,29-30]。NKG2D識別激活之后,NK細胞通過脫顆粒效應,包括顆粒酶B,直接殺傷激活的HSC[25,30]。此外,小鼠體內實驗[31]證實,抑制NK細胞的殺傷細胞免疫球蛋白樣受體(識別MHC-I,NK細胞的抑制性受體),NK細胞殺傷HSC的能力增強。

      另一方面,TRAIL和FasL也在NK細胞誘導HSC凋亡的過程中發(fā)揮重要作用[26,30]。激活的HSC高表達TRAIL的受體TRAIL-R2(即death receptor 5,DR5)[30,32-33]。TRAIL結合DR5后,通過募集Fas相關死亡結構域蛋白和caspase-8來組成死亡誘導信號復合體,進而激活下游的caspase-3/-6/-7,誘導細胞凋亡[34]。通過抗體阻斷TRAIL,同樣可以抑制NK細胞誘導的HSC凋亡[26,30,35]。另一方面,HSC表達死亡受體[32],在人原代細胞的體外實驗[30]中,抑制FasL能部分降低HSC的凋亡。

      3.2 NK細胞通過分泌IFNγ抑制HSC的激活 IFNγ是一種抑制肝纖維化的細胞因子,可以通過其受體(IFNGR)下游的STAT1直接抑制HSC的激活和增殖,誘導HSC的凋亡[36],并且能夠抑制TGFβ/Smad3對HSC的激活[37]。而NK細胞是主要的IFNγ分泌細胞之一[38],肝內NK細胞相較于外周血NK細胞,具有更強的IFNγ分泌功能[39]。甚至于,利用包含IFNγ的脂質體,靶向HSC的體內治療方案,在肝纖維化大鼠模型中取得很好的效果[40]。除了直接抑制HSC,IFNγ還可以增強NK細胞對HSC的殺傷功能[26,36],這可能與IFNγ促進NK細胞TRAIL表達有關[41]。

      3.3 其他細胞參與的NK-HSC的調控 除了NK細胞,亦有多種免疫細胞可以通過分泌細胞因子或趨化因子的方式參與對HSC激活的調節(jié)。例如,Kupffer細胞和單核細胞可以通過多種方式調控HSC(如通過活性氧和TGFβ促進HSC激活[42-43]);其分泌的血小板衍生因子也是一種主要的促分裂趨化因子[44]。Th1細胞通過分泌IFNγ抑制HSC的膠原合成[45];Th2細胞通過IL-4和IL-13直接誘導HSC激活,并且可以通過誘導Kupffer細胞分泌血小板衍生因子和TGF-β促進肝纖維化[46]。Treg細胞和Kupffer細胞分泌的IL-10能夠促進激活的HSC衰老[47]。

      除了直接的NK細胞和HSC之間作用的研究外,更復雜的三種細胞之間的作用也有報道。在小鼠的代謝性肝損傷模型[19]中,NKp46+NK細胞通過分泌IFNγ促進M1型巨噬細胞極化,抑制纖維化。此外,HIV/HCV合并感染者的纖維化進程加快,可能與CD4+T淋巴細胞缺失導致的IL-2水平下降,繼而影響NK細胞的殺傷功能有關[48]。Treg可以通過T淋巴細胞抗原4和TGF-ss1/IL-8,降低NK細胞對HSC的殺傷[49]。

      3.4 NK細胞在肝纖維化中的作用 通過動物肝纖維化造模,敲除/抑制/增強NK細胞的方式,觀察小鼠的纖維化進展可以推斷NK細胞發(fā)揮的作用。相較于CD8+T淋巴細胞或NKT細胞,小鼠肝內NK細胞比例的下降明顯會增加小鼠肝內Ⅰ型膠原[50]。抑制小鼠NK細胞的殺傷細胞免疫球蛋白樣受體(抑制性受體),可以明顯降低纖維化造模小鼠的肝組織α-平滑肌動蛋白和mRNA水平[31]。清除小鼠體內的NK細胞,會造成小鼠肝內膠原的堆積[28]。

      盡管在動物模擬的體內環(huán)境中已經證實了NK細胞發(fā)揮的抗纖維化作用,但是由于患者的病因更復雜,NK細胞是否會在特定環(huán)境下促進纖維化,仍值得討論[27,33]。近期有報導[51]指出Nkp44+TNFα+的NK細胞在肝內的數量與HCV感染者的肝損傷和纖維化程度呈正相關。此外,在急性發(fā)作的乙型肝炎患者體內發(fā)現NK細胞高表達TRAIL,并能直接殺傷肝細胞[52]。HBV感染者肝細胞高表達TRAIL受體也已經證實[53]。與CCl4或膽管結扎引起的肝損傷不同,被病毒感染的肝細胞會被NK細胞識別殺傷[53],可能通過NK細胞引起的肝細胞凋亡,誘導HSC的激活[8]進而產生促進纖維化的作用。

      4 靶向NK-HSC治療纖維化及臨床應用和前景

      除了動物模型和體外實驗,臨床上也有不少NK細胞抑制肝纖維化的證據。HCV慢性感染者中,NK細胞的活力與肝纖維化的程度呈負相關[54],纖維化程度更高的患者NK細胞體外誘導HSC凋亡的能力更弱[30]。使用IFNα治療肝纖維化,可以觀察到HSC的增殖與激活被抑制,這一過程中,NK細胞可能發(fā)揮重要作用,因為IFNα可以提高NK細胞的TRAIL表達,從而增強NK細胞殺傷HSC的能力[55]。

      目前為止,尚未有在患者中直接靶向NK細胞的纖維化治療報導。不過,NK細胞直接抑制纖維化的功能比較清楚,并非單核/巨噬細胞或Treg細胞的雙面作用。另外,NK細胞無論是體外擴增回輸[56],還是通過細胞因子的體內激活[57]都已經應用于臨床治療或臨床試驗。另一方面,相較于臨床常用的抑制TGFβ信號通路的策略,NK細胞作為靶點選擇性更高,不會殺傷靜息狀態(tài)的HSC以及其他肝內正常細胞,還可以同時起到抗腫瘤和抗病毒的作用[35]。NK細胞仍有作為肝纖維化治療靶點的潛力。

      由于IFNα、IFNγ、poly I∶C都可以激活NK細胞的TRAIL表達,增強NK細胞的細胞毒性,進而通過NK細胞調控HSC激活[58-59],并且它們抑制肝纖維化的作用比較清楚[26],已經用于抗病毒/抗腫瘤的臨床治療或臨床前研究[57,60],所以IFNα、IFNγ、poly I∶C可能會是靶向NK-HSC的較好選擇。

      5 小結

      總的來說,NK細胞直接抑制HSC主要通過兩方面:(1)通過NKG2D/TRAIL/FasL直接殺傷激活的HSC;(2)NK細胞分泌的IFNγ是一種抗纖維化因子。除了NK-HSC的直接作用,NK細胞與其他免疫系統組分之間的相互調節(jié)也會影響纖維化進展,這也是最近的研究熱點。此外,盡管目前尚未有靶向NK細胞的纖維化臨床治療的報導,但大多數文獻都肯定了NK細胞的抗纖維化作用。

      [1] ATTA HM. Reversibility and heritability of liver fibrosis: implications for research and therapy[J]. World J Gastroenterol, 2015, 21(17): 5138-5148.

      [2] FRIEDMAN SL. Evolving challenges in hepatic fibrosis[J]. Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2010, 7(8): 425-436.

      [3] FRIEDMAN SL, ROLL FJ, BOYLES J, et al. Hepatic lipocytes: the principal collagen-producing cells of normal rat liver[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 1985, 82(24): 8681-8685.

      [4] RIPPE RA, BRENNER DA. From quiescence to activation: Gene regulation in hepatic stellate cells[J]. Gastroenterology, 2004, 127(4): 1260-1262.

      [5] ELPEK GO. Cellular and molecular mechanisms in the pathogenesis of liver fibrosis: an update[J]. World J Gastroenterol, 2014, 20(23): 7260-7276.

      [6] DUARTE S, BABER J, FUJII T, et al. Matrix metalloproteinases in liver injury, repair and fibrosis[J]. Matrix Biol, 2015, 44-46: 147-156.

      [7] IREDALE JP. Models of liver fibrosis: exploring the dynamic nature of inflammation and repair in a solid organ[J]. J Clin Invest, 2007, 117(3): 539-548.

      [8] CANBAY A, FRIEDMAN S, GORES GJ. Apoptosis: the nexus of liver injury and fibrosis[J]. Hepatology, 2004, 39(2): 273-278.

      [9] BRUNATI AM, PAGANO MA, BINDOLI A, et al. Thiol redox systems and protein kinases in hepatic stellate cell regulatory processes[J]. Free Radic Res, 2010, 44(4): 363-378.

      [10] WATANABE A, HASHMI A, GOMES DA, et al. Apoptotic hepatocyte DNA inhibits hepatic stellate cell chemotaxis via toll-like receptor 9[J]. Hepatology, 2007, 46(5): 1509-1518.

      [11] SALLOUM S, HOLMES JA, JINDAL R, et al. Exposure to human immunodeficiency virus/hepatitis C virus in hepatic and stellate cell lines reveals cooperative profibrotic transcriptional activation between viruses and cell types[J]. Hepatology, 2016, 64(6): 1951-1968.

      [12] BRYCESON YT, MARCH ME, LJUNGGREN HG, et al. Activation, coactivation, and costimulation of resting human natural killer cells[J]. Immunol Rev, 2006, 214: 73-91.

      [13] MOROSO V, METSELAAR HJ, MANCHAM S, et al. Liver grafts contain a unique subset of natural killer cells that are transferred into the recipient after liver transplantation[J]. Liver Transpl, 2010, 16(7): 895-908.

      [14] LUO D, VANDERKERKEN K, BOUWENS L, et al. The role of adhesion molecules in the recruitment of hepatic natural killer cells (pit cells) in rat liver[J]. Hepatology, 1996, 24(6): 1475-1480.

      [15] TAKEDA K, CRETNEY E, HAYAKAWA Y, et al. TRAIL identifies immature natural killer cells in newborn mice and adult mouse liver[J]. Blood, 2005, 105(5): 2082-2089.

      [16] SOJKA DK, PLOUGASTEL-DOUGLAS B, YANG L, et al. Tissue-resident natural killer (NK) cells are cell lineages distinct from thymic and conventional splenic NK cells[J]. Elife, 2014, 3: e01659.

      [17] SHARMA R, DAS A. Organ-specific phenotypic and functional features of NK cells in humans[J]. Immunol Res, 2014, 58(1): 125-131.

      [18] PENG H, SUN R, TANG L, et al. CD62L is critical for maturation and accumulation of murine hepatic NK cells in response to viral infection[J]. J Immunol, 2013, 190(8): 4255-4262.

      [19] TOSELLO-TRAMPONT AC, KRUEGER P, NARAYANAN S, et al. NKp46(+) natural killer cells attenuate metabolism-induced hepatic fibrosis by regulating macrophage activation in mice[J]. Hepatology, 2016, 63(3): 799-812.

      [20] SUBLESKI JJ, WILTROUT RH, WEISS JM. Application of tissue-specific NK and NKT cell activity for tumor immunotherapy[J]. J Autoimmun, 2009, 33(3-4): 275-281.

      [21] SUN C, SUN HY, XIAO WH, et al. Natural killer cell dysfunction in hepatocellular carcinoma and NK cell-based immunotherapy[J]. Acta Pharmacol Sin, 2015, 36(10): 1191-1199.

      [22] SUN C, SUN H, ZHANG C, et al. NK cell receptor imbalance and NK cell dysfunction in HBV infection and hepatocellular carcinoma[J]. Cell Mol Immunol, 2015, 12(3): 292-302.

      [23] BJORKSTROM NK, LJUNGGREN HG, SANDBERG JK. CD56 negative NK cells: origin, function, and role in chronic viral disease[J]. Trends Immunol, 2010, 31(11): 401-406.

      [24] LI F, WEI H, WEI H, et al. Blocking the natural killer cell inhibitory receptor NKG2A increases activity of human natural killer cells and clears hepatitis B virus infection in mice[J]. Gastroenterology, 2013, 144(2): 392-401.

      [25] MELHEM A, MUHANNA N, BISHARA A, et al. Anti-fibrotic activity of NK cells in experimental liver injury through killing of activated HSC[J]. J Hepatol, 2006, 45(1): 60-71.

      [26] RADAEVA S, SUN R, JARUGA B, et al. Natural killer cells ameliorate liver fibrosis by killing activated stellate cells in NKG2D-dependent and tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand-dependent manners[J]. Gastroenterology, 2006, 130(2): 435-452.

      [27] FASBENDER F, WIDERA A, HENGSTLER JG, et al. Natural killer cells and liver fibrosis[J]. Front Immunol, 2016, 7: 19.

      [28] ONG S, LIGONS DL, BARIN JG, et al. Natural killer cells limit cardiac inflammation and fibrosis by halting eosinophil infiltration[J]. Am J Pathol, 2015, 185(3): 847-861.

      [29] MITRA A, SATELLI A, YAN J, et al. IL-30 (IL27p28) attenuates liver fibrosis through inducing NKG2D-rae1 interaction between NKT and activated hepatic stellate cells in mice[J]. Hepatology, 2014, 60(6): 2027-2039.

      [30] GLASSNER A, EISENHARDT M, KRAMER B, et al. NK cells from HCV-infected patients effectively induce apoptosis of activated primary human hepatic stellate cells in a TRAIL-, FasL- and NKG2D-dependent manner[J]. Lab Invest, 2012, 92(7): 967-977.

      [31] MUHANNA N, ABU TAIR L, DORON S, et al. Amelioration of hepatic fibrosis by NK cell activation[J]. Gut, 2011, 60(1): 90-98.

      [32] FRIEDMAN SL. Hepatic stellate cells: protean, multifunctional, and enigmatic cells of the liver[J]. Physiol Rev, 2008, 88(1): 125-172.

      [33] MEHAL W, IMAEDA A. Cell death and fibrogenesis[J]. Semin Liver Dis, 2010, 30(3): 226-231.

      [34] FENG X, YAN J, WANG Y, et al. The proteasome inhibitor bortezomib disrupts tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) expression and natural killer (NK) cell killing of TRAIL receptor-positive multiple myeloma cells[J]. Mol Immunol, 2010, 47(14): 2388-2396.

      [35] GAO B, RADAEVA S, JEONG WI. Activation of natural killer cells inhibits liver fibrosis: a novel strategy to treat liver fibrosis[J]. Expert Rev Gastroenterol Hepatol, 2007, 1(1): 173-180.

      [36] JEONG WI, PARK O, RADAEVA S, et al. STAT1 inhibits liver fibrosis in mice by inhibiting stellate cell proliferation and stimulating NK cell cytotoxicity[J]. Hepatology, 2006, 44(6): 1441-1451.

      [37] ULLOA L, DOODY J, MASSAGUE J. Inhibition of transforming growth factor-beta/SMAD signalling by the interferon-gamma/STAT pathway[J]. Nature, 1999, 397(6721): 710-713.

      [38] VIVIER E, TOMASELLO E, BARATIN M, et al. Functions of natural killer cells[J]. Nat Immunol, 2008, 9(5): 503-510.

      [39] PENG H, WISSE E, TIAN Z. Liver natural killer cells: subsets and roles in liver immunity[J]. Cell Mol Immunol, 2016, 13(3): 328-336.

      [40] LI Q, YAN Z, LI F, et al. Corrigendum: the improving effects on hepatic fibrosis of interferon-γ liposomes targeted to hepatic stellate cells[J]. Nanotechnology, 2014, 25(7): 079501.

      [41] TU Z, HAMALAINEN-LAANAYA HK, CRISPE IN, et al. Synergy between TLR3 and IL-18 promotes IFN-gamma dependent TRAIL expression in human liver NK cells[J]. Cell Immunol, 2011, 271(2): 286-291.

      [42] GRESSNER AM, WEISKIRCHEN R, BREITKOPF K, et al. Roles of TGF-beta in hepatic fibrosis[J]. Front Biosci, 2002, 7: d793-d807.

      [43] NIETO N. Oxidative-stress and IL-6 mediate the fibrogenic effects of [corrected] Kupffer cells on stellate cells[J]. Hepatology, 2006, 44(6): 1487-1501.

      [44] FRIEDMAN SL, ARTHUR MJ. Activation of cultured rat hepatic lipocytes by Kupffer cell conditioned medium. Direct enhancement of matrix synthesis and stimulation of cell proliferation via induction of platelet-derived growth factor receptors[J]. J Clin Invest, 1989, 84(6): 1780-1785.

      [45] ROCKEY DC, MAHER JJ, JARNAGIN WR, et al. Inhibition of rat hepatic lipocyte activation in culture by interferon-gamma[J]. Hepatology, 1992, 16(3): 776-784.

      [46] BARRON L, WYNN TA. Fibrosis is regulated by Th2 and Th17 responses and by dynamic interactions between fibroblasts and macrophages[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2011, 300(5): g723-g728.

      [47] MENTINK-KANE MM, CHEEVER AW, WILSON MS, et al. Accelerated and progressive and lethal liver fibrosis in mice that lack interleukin (IL)-10, IL-12p40, and IL-13Ralpha2[J]. Gastroenterology, 2011, 141(6): 2200-2209.

      [48] GLASSNER A, EISENHARDT M, KOKORDELIS P, et al. Impaired CD4(+) T cell stimulation of NK cell anti-fibrotic activity may contribute to accelerated liver fibrosis progression in HIV/HCV patients[J]. J Hepatol, 2013, 59(3): 427-433.

      [49] LANGHANS B, ALWAN AW, KRAMER B, et al. Regulatory CD4+T cells modulate the interaction between NK cells and hepatic stellate cells by acting on either cell type[J]. J Hepatol, 2015, 62(2): 398-404.

      [50] JIAO J, OOKA K, FEY H, et al. Interleukin-15 receptor alpha on hepatic stellate cells regulates hepatic fibrogenesis in mice[J]. J Hepatol, 2016, 65(2): 344-353.

      [51] NEL I, LUCAR O, PETITDEMANGE C, et al. Accumulation of intrahepatic TNF-alpha-producing NKp44+NK cells correlates with liver fibrosis and viral load in chronic HCV infection[J]. Medicine (Baltimore), 2016, 95(19): e3678.

      [52] WAN Z, XIE G, WU Y, et al. Cytokines elevated in patients with HBV-related acute-on-chronic liver failure promote NK cell mediated cytotoxicity through TRAIL[J]. Dig Liver Dis, 2016, 48(5): 528-535.

      [53] DUNN C, BRUNETTO M, REYNOLDS G, et al. Cytokines induced during chronic hepatitis B virus infection promote a pathway for NK cell-mediated liver damage[J]. J Exp Med, 2007, 204(3): 667-680.

      [54] MORISHIMA C, PASCHAL DM, WANG CC, et al. Decreased NK cell frequency in chronic hepatitis C does not affect ex vivo cytolytic killing[J]. Hepatology, 2006, 43(3): 573-580.

      [55] INAGAKI Y, NEMOTO T, KUSHIDA M, et al. Interferon alfa down-regulates collagen gene transcription and suppresses experimental hepatic fibrosis in mice[J]. Hepatology, 2003, 38(4): 890-899.

      [56] BECKER PS, SUCK G, NOWAKOWSKA P, et al. Selection and expansion of natural killer cells for NK cell-based immunotherapy[J]. Cancer Immunol Immunother, 2016, 65(4): 477-484.

      [57] GLAVAN TM, PAVELIC J. The exploitation of Toll-like receptor 3 signaling in cancer therapy[J]. Curr Pharm Des, 2014, 20(42): 6555-6564.

      [58] RELJIC R. IFN-gamma therapy of tuberculosis and related infections[J]. J Interferon Cytokine Res, 2007, 27(5): 353-364.

      [59] GIRART MV, FUERTES MB, DOMAICA CI, et al. Engagement of TLR3, TLR7, and NKG2D regulate IFN-gamma secretion but not NKG2D-mediated cytotoxicity by human NK cells stimulated with suboptimal doses of IL-12[J]. J Immunol, 2007, 179(6): 3472-3479.

      [60] BRACCI L, PROIETTI E, BELARDELLI F. IFN-alpha and novel strategies of combination therapy for cancer[J]. Ann N Y Acad Sci, 2007, 1112: 256-268.

      引證本文:LI TY, TU ZK, SU LS. Regulatory effect of natural killer cells on hepatic stellate cells and their role in liver fibrosis[J]. J Clin Hepatol, 2017, 33(3): 558-562. (in Chinese)

      李天陽, 涂正坤, 蘇立山. 自然殺傷細胞對肝星狀細胞的調控及其在肝纖維化中的作用[J]. 臨床肝膽病雜志, 2017, 33(3): 558-562.

      (本文編輯:王亞南)

      Regulatory effect of natural killer cells on hepatic stellate cells and their role in liver fibrosis

      LITianyang,TUZhengkun,SULishan.

      (ResearchInstituteofTranslationalMedicine,TheFirstHospitalofJilinUniversity,Changchun130021,China)

      Hepatic stellate cell (HSC) activation is closely associated with the progression of liver fibrosis. As an important component of the innate immune system, natural killer (NK) cells are enriched in the liver and play a key role in host defense against viral infection and tumor, and their anti-fibrotic effect has also been confirmed. NK cells can reduce liver fibrosis by killing early-activated or senescent HSCs or secreting interferon-γ. This article summarizes related research advances in recent years, and introduces the molecular immunological mechanism of NK cells in regulating HSCs and their potential anti-fibrotic effect based on the function and phenotype of NK cells and HSCs.

      liver cirrhosis; killer cells, natural; hepatic stellate cells; review

      10.3969/j.issn.1001-5256.2017.03.036

      2016-12-15;

      2017-01-18。

      國家自然科學基金(81373143,81571535)

      李天陽(1992-),男,主要從事自然殺傷細胞與肝星狀細胞的相關研究。

      涂正坤,電子信箱: tuzhengkun@hotmail.com;蘇立山,電子信箱: 3158383517@qq.com。

      R575.2

      A

      1001-5256(2017)03-0558-05

      猜你喜歡
      星狀膠原肝細胞
      外泌體miRNA在肝細胞癌中的研究進展
      缺氧誘導因子-1α對肝星狀細胞影響的研究進展
      The Six Swans (II)By Grimm Brothers
      肝細胞程序性壞死的研究進展
      膠原無紡布在止血方面的應用
      超聲引導星狀神經節(jié)阻滯治療原發(fā)性痛經
      肝細胞癌診斷中CT灌注成像的應用探析
      紅藍光聯合膠原貼治療面部尋常痤瘡療效觀察
      SIAh2與Sprouty2在肝細胞癌中的表達及臨床意義
      星狀神經節(jié)阻滯治療急性面神經炎的臨床分析
      东至县| 凤翔县| 黄山市| 芮城县| 古交市| 九龙县| 准格尔旗| 富顺县| 阿拉善右旗| 都江堰市| 都安| 通许县| 丹阳市| 文昌市| 阿图什市| 景德镇市| 乡城县| 东港市| 惠来县| 惠水县| 西安市| 富蕴县| 原平市| 南漳县| 沈丘县| 常宁市| 安化县| 炎陵县| 华坪县| 略阳县| 大关县| 安仁县| 青岛市| 靖宇县| 连南| 都匀市| 深水埗区| 玉田县| 西宁市| 开平市| 广德县|