謝夢曉,劉霞,邵啟祥
(江蘇大學醫(yī)學院,江蘇鎮(zhèn)江 212013)
長鏈非編碼RNAs在自身免疫病中的研究進展*
謝夢曉,劉霞,邵啟祥
(江蘇大學醫(yī)學院,江蘇鎮(zhèn)江 212013)
長鏈非編碼RNAs(long non-coding RNAs,lncRNAs)是一類片段超過200個核苷酸且不具備編碼蛋白質(zhì)能力的RNA轉(zhuǎn)錄本。lncRNAs作為一種表觀遺傳學修飾,通過影響染色質(zhì)重塑、基因轉(zhuǎn)錄、蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運和運輸?shù)劝l(fā)揮其生物學活性。大量基礎(chǔ)及臨床研究表明,在動物或人體內(nèi)許多表達水平異常的lncRNAs可能參與自身免疫病的發(fā)生、發(fā)展。結(jié)合近年來的相關(guān)報道,該文主要針對不同類型自身免疫病中異常改變的lncRNAs做一綜述,并著重討論lncRNAs的作用機制及其在自身免疫病發(fā)生、發(fā)展中的調(diào)控作用。
長鏈非編碼RNAs;自身免疫??;表觀遺傳學
遺傳中心法則認為,遺傳信息主要儲存于編碼蛋白質(zhì)的基因中,基因編碼的終產(chǎn)物蛋白質(zhì)則負責行使遺傳信息的功能,而mRNA作為RNA分子的主體,僅僅是介導(dǎo)DNA最終形成蛋白質(zhì)過的媒介物[1]。隨著基因組學、測序技術(shù)和生物信息學的興起,科學家們發(fā)現(xiàn)在許多情況下,細胞和組織的基因并未發(fā)生改變,但是生物學行為發(fā)生了明顯的變化。進一步研究發(fā)現(xiàn)基因存在各類修飾行為,于是表觀遺傳學的概念被提出,其中一些過去被認為是“噪聲RNA”的非編碼RNAs(non-coding RNAs,ncRNAs)被發(fā)現(xiàn)是表觀遺傳學調(diào)控機制中的關(guān)鍵分子,在各種生命活動中發(fā)揮重要的作用[2-5]。根據(jù)轉(zhuǎn)錄本長度的大小,ncRNAs可分為長約20~30個核苷酸的微小RNA(microRNA,miRNA)和大于200個核苷酸的長鏈非編碼RNAs(long non-coding RNAs,lncRNAs)[6-7]。在生物合成過程中,部分lncRNAs與mRNA類似,也需要經(jīng)歷轉(zhuǎn)錄、加帽、剪切、多聚腺苷酸化等,最終形成成熟的轉(zhuǎn)錄本,定位在細胞核或細胞質(zhì)中[8-9]。最初認為lncRNAs作為一種ncRNAs不具備編碼蛋白質(zhì)的功能,但有研究表明,小部分lncRNAs也具有編碼小分子蛋白質(zhì)的功能[9-10]。因此,lncRNAs的出現(xiàn)無疑是對“RNA作為遺傳中心法則的媒介物”這一傳統(tǒng)認識的挑戰(zhàn),也啟發(fā)生命科學和醫(yī)學研究人員對生命的生物學行為的調(diào)控有了新的認識與思考。然而,這種認知僅僅處于起步階段。
lncRNAs可根據(jù)其在基因組中的相對于鄰近蛋白質(zhì)編碼mRNA的位置,分為以下5種類型:(1)正義lncRNAs(sense lncRNAs),即轉(zhuǎn)錄方向與鄰近蛋白質(zhì)編碼基因相同,并與該鏈上至少一個外顯子區(qū)域相重疊的lncRNAs;(2)反義lncRNAs(antisense lncRNAs),即轉(zhuǎn)錄方向與鄰近蛋白質(zhì)編碼基因互補鏈相同,并與該鏈上至少一個外顯子區(qū)域相重疊的lncRNAs;(3)內(nèi)含子lncRNAs(intronic lncRNAs),即在蛋白質(zhì)編碼基因的內(nèi)含子區(qū)域轉(zhuǎn)錄,并且與基因無任何重疊的lncRNAs;(4)雙向lncRNAs(bidirectional lncRNAs),即從蛋白質(zhì)編碼基因互補鏈啟動子區(qū)域轉(zhuǎn)錄形成的lncRNAs;(5)基因間lncRNAs(intergenic lncRNAs,lincRNA),即位于兩個獨立轉(zhuǎn)錄單元之間的lncRNAs[11]。隨著基因芯片、二代測序等技術(shù)的飛速發(fā)展,將會有更多的lncRNAs被發(fā)現(xiàn)、鑒定和歸類。
與siRNAs、miRNAs等小分子ncRNAs通過堿基互補配對介導(dǎo)沉默基因的效應(yīng)不同,lncRNAs可與DNA、RNA或蛋白質(zhì)形成復(fù)合物,因此,基因組lncRNAs對鄰近或遠端基因的調(diào)控機制更加復(fù)雜[11-12]。目前,有關(guān)lncRNAs調(diào)控基因的作用方式,主要有以下4種途徑:(1)lncRNAs可作為“誘餌分子”,通過與基因的啟動子序列競爭結(jié)合某些轉(zhuǎn)錄因子,抑制基因的轉(zhuǎn)錄[11, 13-14];(2)lncRNAs可作為“接頭分子”招募兩種或兩種以上蛋白質(zhì),并與之形成復(fù)合物,通過不同的組蛋白甲基化修飾介導(dǎo)基因的沉默[11, 15-16];(3)與機制2類似,lncRNAs可與某些蛋白質(zhì)結(jié)合,并作為“引導(dǎo)鏈”促使這些蛋白質(zhì)特異性地富集在一些基因上,這種“引導(dǎo)鏈”的調(diào)控方式往往具有基因選擇性[11, 17];(4)lncRNAs還可作為“增強子RNAs”,通過結(jié)合一些蛋白質(zhì)因子作用于基因遠端的增強子區(qū)域,促進這些基因選擇性地在某些組織或細胞中轉(zhuǎn)錄水平升高[11, 18]。值得注意的是,lncRNAs對于基因的調(diào)控往往同時依賴多種機制的發(fā)揮。
在lncRNAs研究早期,大量基礎(chǔ)與臨床研究表明其一級、二級結(jié)構(gòu)改變或表達水平異常會引起神經(jīng)退行性疾病及惡性腫瘤的發(fā)生[19]。隨著全基因組關(guān)聯(lián)研究(genome-wide association studies,GWAS)的廣泛開展,許多與自身免疫病易感性有關(guān)的基因變異體被發(fā)現(xiàn),約有90%的風險基因位于非編碼區(qū)域,而其中10%的基因可轉(zhuǎn)錄生成lncRNAs[20],提示lncRNAs表達水平或功能異??赡軈⑴c自身免疫病的發(fā)生或發(fā)展。
2.1 lncRNAs與系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE) SLE是一類全身性自身免疫病,該病的典型特征為大量自身抗體的產(chǎn)生?;颊吖逃忻庖吲c獲得性免疫功能異常紊亂是導(dǎo)致SLE發(fā)生的重要原因[21]。GWAS結(jié)果表明,位于人類1號染色體長臂2區(qū)5帶(1q25)基因座的lncRNAGas5轉(zhuǎn)錄本是一個SLE的易感基因[13, 22-23]。Gas5可作為“誘餌分子”與糖皮質(zhì)激素反應(yīng)元件(glucocorticoid response element,GRE)競爭性地結(jié)合糖皮質(zhì)激素受體(glucocorticoid receptor,GR),從而阻斷GR下游信號的轉(zhuǎn)導(dǎo)[13]。血清中高表達Gas5的SLE患者可能對糖皮素激素治療具有更強的抵抗性,因此,Gas5有可能成為難治性SLE的重要診斷標志。此外,通過對9例SLE患者及8例健康志愿者外周血純化分離的單核細胞進行RNA測序,Shi等[24]發(fā)現(xiàn)lncRNAHIVEP2的表達水平在SLE患者體內(nèi)顯著上調(diào),但其在SLE發(fā)病過程中的具體作用還有待于進一步研究。最新的一項研究表明,lncRNANFAT1的表達水平在SLE患者外周血來源的單核細胞中顯著升高。通過體外實驗,Zhang等[25]發(fā)現(xiàn)在人急性單核細胞白血病THP-1細胞系中,LPS可通過激活p38/MAPK通路上調(diào)NFAT1的表達水平。反之,在LPS刺激的THP-1細胞系中,通過沉默NFAT1的表達可抑制p38/MAPK通路,從而顯著下調(diào)IL-6、CXCL-10等細胞因子的分泌水平。而已有的研究表明,NFAT-1的表達水平與SLE疾病的活動指數(shù)呈正相關(guān)。由此可見,上調(diào)的lncRNANFAT1可能是導(dǎo)致SLE患者外周血單核細胞中大量炎癥因子聚集的一個重要因素,并有可能成為SLE活動期的標志。
2.2 lncRNAs與類風濕關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis,RA) 作為另一種典型的全身性自身免疫病,RA的典型特征為關(guān)節(jié)滑膜等組織中發(fā)生慢性炎癥及組織損傷[26]。其中在滑膜腔中,微環(huán)境的改變可釋放TNF-α、IL-1β、IL-6、MCP-1及MIP-1等炎癥因子并招募T細胞、B細胞、中性粒細胞、巨噬細胞以及成纖維樣滑膜細胞等聚集至關(guān)節(jié)局部,通過釋放大量的蛋白酶引起關(guān)節(jié)局部的損傷[27-30]。Jinsoo等[31]通過對RA患者的外周血單個核細胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)及血清分離的外泌體(exosome)進行微陣列芯片分析,發(fā)現(xiàn)包括Hotair、LUST、anti-NOS2A、MEG9、SNHG4、TUG1和NEAT1在內(nèi)的lncRNAs表達水平上調(diào),而Malat1、SNHG1、mascRNA、PRas、PRINS和HOXA3as則有所下調(diào)。此外,Transwell趨化實驗和免疫印跡技術(shù)結(jié)果表明,Hotair可以增強巨噬細胞遷移的活性并上調(diào)金屬基質(zhì)蛋白酶MMP-2、MMP-13的活性。因此,在RA活動期,上調(diào)的Hotair很可能通過激活巨噬細胞,從而分泌金屬基質(zhì)蛋白酶,促進關(guān)節(jié)局部炎癥發(fā)生以及組織損傷。因此Hotair很有可能與RA的活動期相關(guān),并可能成為其血清診斷和治療評價的標志物。另一項基于單核苷酸多態(tài)性分析(single nucleotide polymorphisms,SNP)的研究提示,TRAF1-C5RNA可作為RA疾病風險相關(guān)的候選基因座[32]。TRAF1-C5RNA屬于基因間lncRNA,經(jīng)LPS刺激后可誘導(dǎo)位于TRAF1-C5RNA基因座的C5T1lncRNA發(fā)生轉(zhuǎn)錄,同時,其在滑膜成纖維細胞中的表達水平與補體C5的表達水平呈正相關(guān)。該研究結(jié)果表明,C5T1lncRNA可能通過調(diào)控RA相關(guān)基因C5的表達促進RA的發(fā)生、發(fā)展[33]。近期,Zhang等[34]通過對RA患者膝關(guān)節(jié)中成纖維樣滑膜細胞進行微陣列芯片分析以及實時定量PCR驗證,發(fā)現(xiàn)lncRNAENST00000483588的表達水平顯著上調(diào),而ENST00000438399、uc004afb.1和ENST00000452247的表達水平則顯著下調(diào)。同時,相關(guān)性分析結(jié)果表明,上調(diào)的lncRNAENST00000483588與C反應(yīng)蛋白含量呈正相關(guān)。因此,lncRNAENST00000483588的表達上調(diào)可能與RA的疾病活動指數(shù)有關(guān)。
2.3 lncRNAs與銀屑病 銀屑病是一類由機體免疫功能失調(diào)引起的慢性皮膚病,該病好發(fā)于皮膚及關(guān)節(jié)等部位,并常伴有基底膜角質(zhì)細胞異常增生和分化[35]。2005年,Sonkoly等[36]就鑒定出了與銀屑病患病易感性有關(guān)的lncRNAPRINS,但未發(fā)現(xiàn)其直接參與銀屑病的證據(jù)。然而,在后續(xù)的研究中,Szegedi等[37]卻發(fā)現(xiàn)與正常志愿者的角質(zhì)細胞相比,抗凋亡蛋白GIP3在銀屑病患者的角質(zhì)細胞中表達上調(diào)400倍,并且該基因受PRINS調(diào)控,從而揭示了在銀屑病患者的角質(zhì)細胞中,上調(diào)的lncRNAPRINS可能通過調(diào)控GIP3的活性,從而抵抗角質(zhì)細胞的凋亡,參與銀屑病的發(fā)生發(fā)展。另一個與銀屑病有關(guān)的lncRNA是PSORS1C3。基于流行病學的數(shù)據(jù)調(diào)查結(jié)果表明,PSORS1C3與瑞典人銀屑病的易感性密切相關(guān)[38]。因此,目前認為PSORS1C3也是一個與銀屑病患病有關(guān)的風險基因。
2.4 lncRNAs與克隆恩病(Crohn′s disease,CD) CD是一種由免疫功能失調(diào)引起的慢性炎癥性腸病,常伴有胃腸道外癥狀[39]。Qiao等[40]通過對活動期CD患者的外周血樣本進行檢測,發(fā)現(xiàn)lncRNADQ786243與cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(cAMP response element binding protein,CREB)表達水平顯著升高,且上調(diào)的DQ786243與CRP含量呈正相關(guān),初步提示lncRNADQ786243有可能成為CD疾病活動期的標志。然而,Qiao等在人T淋巴瘤Jurkat細胞系中轉(zhuǎn)染DQ786243,發(fā)現(xiàn)lncRNA可通過調(diào)控CREB的磷酸化水平促進Foxp3蛋白質(zhì)水平的表達,提示lncRNADQ786243有可能發(fā)揮保護效應(yīng)。兩者研究結(jié)果似乎有一定的矛盾,推測DQ786243可能參與疾病的負反饋調(diào)控。
2.5 lncRNAs與其他自身免疫病 除了以上討論的4種常見的自身免疫病外,不同的lncRNAs轉(zhuǎn)錄本,如IFNG-AS1可通過增強TH1細胞的免疫應(yīng)答,參與多發(fā)性硬化癥和干燥綜合征的致病過程[41-42]。SAS-ZFAT在人CD19+B細胞中表達水平較高,而自身免疫性甲狀腺炎患者常伴有SAS-ZFAT啟動子區(qū)域的SNPs,初步提示SAS-ZFAT可能與自身免疫性甲狀腺炎的易感性有關(guān)[43]。此外,具有抗凋亡、促增殖效應(yīng)的PVT1轉(zhuǎn)錄本則被認為是引起I型糖尿病并發(fā)癥終末期腎病的易感基因[44]。
隨著生物信息學及分子生物學等技術(shù)的飛速發(fā)展,科學家通過發(fā)現(xiàn)miRNAs調(diào)控靶基因沉默的規(guī)律,揭示了許多生命現(xiàn)象的本質(zhì),為研究人類重大疾病的發(fā)生機制、診斷、治療提供了寶貴的思路[45]。近年來研究發(fā)現(xiàn)某些miRNAs在特定的疾病狀態(tài)下會異常表達,從而影響下游的靶基因,但是這些現(xiàn)象不能僅通過miRNAs的作用原理完全解釋的。最近有報道lncRNAs可通過海綿體(可與miRNA互補結(jié)合)、競爭性內(nèi)源RNAs(competing endogenous RNAs,ceRNAs)的效應(yīng)沉默某些miRNAs或與初級miRNAs互補配對,影響其加工成熟,發(fā)揮lncRNA-miRNA-mRNA共調(diào)控效應(yīng)。該發(fā)現(xiàn)從一定程度上揭示了miRNAs復(fù)雜的調(diào)控機制[46-47]。
近年來,基于基礎(chǔ)及臨床的大量研究均證實,許多類型的自身免疫病中可見異常表達的lncRNAs。因此,通過利用轉(zhuǎn)錄組學測序等手段對不同類型自身免疫病樣本進行預(yù)測,并輔以體外驗證,篩選出敏感性高、特異性好的診斷標志物,從而為自身免疫病的診斷、治療、復(fù)發(fā)和預(yù)后判斷提供新的依據(jù)。
此外,機體自身免疫應(yīng)答是自身免疫病發(fā)生的基礎(chǔ)。目前,已有部分基礎(chǔ)研究證實,lncRNAs參與免疫細胞的分化、發(fā)育及應(yīng)答的調(diào)節(jié)。例如,lncRNAlnc-DC在傳統(tǒng)的樹突狀細胞(conventional dendritic cells,cDC)中高水平表達,并通過直接結(jié)合細胞質(zhì)中的轉(zhuǎn)錄因子信號傳導(dǎo)轉(zhuǎn)錄活化因子3(signal transducer and activator of transcription 3,STAT3),磷酸化其酪氨酸705殘基,從而促進cDC分化[48]。lncRNARmrp可以介導(dǎo)維甲酸相關(guān)孤兒受體γt(RORγt)與其伴侶蛋白RNA解旋酶DDX5相互作用,激活TH17細胞相關(guān)因子基因的轉(zhuǎn)錄,促進EAE的發(fā)生[49]。然而,在目前的臨床研究中,有關(guān)lncRNAs對自身免疫病調(diào)控機制的研究尚處于起步階段,而其對免疫細胞分化的調(diào)控是否與某些自身免疫病的發(fā)生密切相關(guān)尚不清楚。此外,與miRNAs相比,lncRNAs的保守性較差。許多動物模型的實驗結(jié)果可能無法在人體內(nèi)得以驗證[7]。因此,這需要免疫學家與臨床醫(yī)師展開更為廣泛的合作,以發(fā)現(xiàn)和鑒定更多的lncRNA的功能,研究并闡明其在自身免疫病發(fā)生中的機制,研發(fā)出相應(yīng)的靶向治療藥物,為自身免疫病的臨床診斷、預(yù)防和治療奠定基礎(chǔ)。
[1]Lin Y, Elowitz MB. Central dogma goes digital[J]. Mol Cell, 2016, 61(6): 791-792.
[2]Wright MW, Bruford EA. Naming ′junk′: human non-protein coding RNA (ncRNA) gene nomenclature[J]. Hum Genomics, 2011, 5(2): 90-98.
[3]Dart A. Tumour metabolism: When metabolic and epigenetic states converge[J]. Nat Rev Cancer, 2016, 16(12): 757.
[4]Xie C, Yuan J, Li H,etal. NONCODEv4: exploring the world of long non-coding RNA genes[J]. Nucleic Acids Res, 2014, 42(Database issue): D98-103.
[5]Yang JH, Li JH, Jiang S,etal. ChIPBase: a database for decoding the transcriptional regulation of long non-coding RNA and microRNA genes from ChIP-Seq data[J]. Nucleic Acids Res, 2013, 41(Database issue): D177-87.
[6]Lee JT. Epigenetic regulation by long noncoding RNAs[J]. Science, 2012, 338(6113): 1435-1439.
[7]Esteller M. Non-coding RNAs in human disease[J]. Nat Rev Genet, 2011, 12(12): 861-874.
[8]Ponting CP, Oliver PL, Reik W. Evolution and functions of long noncoding RNAs[J]. Cell, 2009, 136(4): 629-641.
[9]Mattick JS, Rinn JL. Discovery and annotation of long noncoding RNAs[J]. Nat Struct Mol Biol, 2015, 22(1): 5-7.
[10]Ingolia NT, Lareau LF, Weissman JS. Ribosome profiling of mouse embryonic stem cells reveals the complexity and dynamics of mammalian proteomes[J]. Cell, 2011, 147(4): 789-802.
[11]Rinn JL, Chang HY. Genome regulation by long noncoding RNAs[J]. Annu Rev Biochem, 2012, 81(1): 45-66.
[12]Li Y, Syed J, Sugiyama H. RNA-DNA Triplex Formation by Long Noncoding RNAs[J]. Cell Chem Biol, 2016, 23(11): 1325-1333.
[13]Kino T, Hurt DE, Ichijo T,etal. Noncoding RNAGas5 is a growth arrest- and starvation-associated repressor of the glucocorticoid receptor[J]. Sci Signal, 2010, 3(107): ra8.
[14]Hung T, Wang Y, Lin MF,etal. Extensive and coordinated transcription of noncoding RNAs within cell-cycle promoters[J]. Nat Genet, 2011, 43(7): 621-629.
[15]Spitale RC, Tsai MC, Chang HY. RNA templating the epigenome: long noncoding RNAs as molecular scaffolds[J]. Epigenetics, 2011, 6(5): 539-543.
[16]Kotake Y, Nakagawa T, Kitagawa K,etal. Long non-coding RNA ANRIL is required for the PRC2 recruitment to and silencing of p15(INK4B) tumor suppressor gene[J]. Oncogene, 2011, 30(16): 1956-1962.
[17]Lai F, Orom UA, Cesaroni M,etal. Activating RNAs associate with Mediator to enhance chromatin architecture and transcription[J]. Nature, 2013, 494(7438): 497-501.
[18]Orom UA, Shiekhattar R. Long noncoding RNAs usher in a new era in the biology of enhancers[J]. Cell, 2013, 154(6): 1190-1193.
[19]Wapinski O, Chang HY. Long noncoding RNAs and human disease[J]. Trends Cell Biol, 2011, 21(6): 354-361.
[20]Hrdlickova B, Kumar V, Kanduri K,etal. Expression profiles of long non-coding RNAs located in autoimmune disease-associated regions reveal immune cell-type specificity[J]. Genome Med, 2014, 6(10): 88.
[21]Sanz I. Systemic lupus erythematosus: Extent and patterns of off-label use of rituximab for SLE[J]. Nat Rev Rheumatol, 2016, 12(12): 700-702.
[22]Suarez-Gestal M, Calaza M, Endreffy E,etal. Replication of recently identified systemic lupus erythematosus genetic associations: a case-control study[J]. Arthritis Res Ther, 2009, 11(3): R69.
[23]Long H, Yin H, Wang L,etal. The critical role of epigenetics in systemic lupus erythematosus and autoimmunity[J]. J Autoimmun, 2016, 74(1): 18-38.
[24]Shi L, Zhang Z, Yu AM,etal. The SLE transcriptome exhibits evidence of chronic endotoxin exposure and has widespread dysregulation of non-coding and coding RNAs[J]. PLoS One, 2014, 9(5): e93846.
[25]Zhang F, Wu L, Qian J,etal. Identification of the long noncoding RNA NEAT1 as a novel inflammatory regulator acting through MAPK pathway in human lupus[J]. J Autoimmun, 2016, 75: 96-104.
[26]McHugh J. Rheumatoid arthritis: Reduced TRAF1 exacerbates inflammation[J]. Nat Rev Rheumatol, 2017, 13(1): 4.
[27]Falkenburg WJ, van Schaardenburg D, Ooijevaar-de Heer P,etal. Anti-hinge antibodies recognize IgG subclass- and protease-restricted neoepitopes[J]. J Immunol, 2017,198(1): 82-93.
[28]Nie H, Zheng Y, Li R,etal. Phosphorylation of FOXP3 controls regulatory T cell function and is inhibited by TNF-alpha in rheumatoid arthritis[J]. Nat Med, 2013, 19(3): 322-328.
[29]Littlewood-Evans A, Sarret S, Apfel V,etal. GPR91 senses extracellular succinate released from inflammatory macrophages and exacerbates rheumatoid arthritis[J]. J Exp Med, 2016, 213(9): 1655-1662.
[30]Joosten LA, Crisan TO, Azam T,etal. Alpha-1-anti-trypsin-Fc fusion protein ameliorates gouty arthritis by reducing release and extracellular processing of IL-1beta and by the induction of endogenous IL-1Ra[J]. Ann Rheum Dis, 2016, 75(6): 1219-1227.
[31]Song J, Kim D, Han J,etal. PBMC and exosome-derived Hotair is a critical regulator and potent marker for rheumatoid arthritis[J]. Clin Exp Med, 2015, 15(1): 121-126.
[32]Knevel R, De Rooy DP, Gregersen PK,etal. Studying associations between variants inTRAF1-C5RNA and TNFAIP3-OLIG3 and the progression of joint destruction in rheumatoid arthritis in multiple cohorts[J]. Ann Rheum Dis, 2012, 71(10): 1753-1755.
[33]Messemaker TC, Frank-Bertoncelj M, Marques RB,etal. A novel long non-coding RNA in the rheumatoid arthritis risk locusTRAF1-C5RNA influences C5 mRNA levels[J]. Genes Immun, 2016, 17(2): 85-92.
[34]Zhang Y, Xu YZ, Sun N,etal. Long noncoding RNA expression profile in fibroblast-like synoviocytes from patients with rheumatoid arthritis[J]. Arthritis Res Ther, 2016, 18(1): 227.
[35]Greb JE, Goldminz AM, Elder JT,etal. Psoriasis[J]. Nat Rev Dis Primers, 2016, 2: 16082.
[36]Sonkoly E, Bata-Csorgo Z, Pivarcsi A,etal. Identification and characterization of a novel, psoriasis susceptibility-related noncoding RNA gene, PRINS[J]. J Biol Chem, 2005, 280(25): 24159-24167.
[37]Szegedi K, Sonkoly E, Nagy N,etal. The anti-apoptotic protein G1P3 is overexpressed in psoriasis and regulated by the non-coding RNA, PRINS[J]. Exp Dermatol, 2010, 19(3): 269-278.
[38]Holm SJ, Sánchez F, Carlén LM,etal. HLA-Cw*0602 associates more strongly to psoriasis in the Swedish population than variants of the novel 6p21.3 genePSORS1C3[J]. Acta Derm Venereol, 2005, 85(1): 2-8.
[39]Feagan BG, Sandborn WJ, Gasink C,etal. Ustekinumab as induction and maintenance therapy for Crohn′s disease[J]. N Engl J Med, 2016, 375(20): 1946-1960.
[40]Qiao YQ, Huang ML, Xu AT,etal. LncRNA DQ786243 affects Treg related CREB and Foxp3 expression in Crohn′s disease[J]. J Biomed Sci, 2013, 20: 87.
[41]Wang J, Peng H, Tian J,etal. Upregulation of long noncoding RNA TMEVPG1 enhances T helper type 1 cell response in patients with Sj?gren syndrome[J]. Immunol Res, 2016, 64(2): 489-496.
[42]Collier SP, Henderson MA, Tossberg JT,etal. Regulation of the Th1 genomic locus from Ifng through Tmevpg1 by T-bet[J]. J Immunol, 2014, 193(8): 3959-3965.
[43]Shirasawa S, Harada H, Furugaki K,etal. SNPs in the promoter of a B cell-specific antisense transcript, SAS-ZFAT, determine susceptibility to autoimmune thyroid disease[J]. Hum Mol Genet, 2004, 13(19): 2221-2231.
[44]Millis MP, Bowen D, Kingsley C,etal. Variants in the plasmacytoma variant translocation gene (PVT1) are associated with end-stage renal disease attributed to type 1 diabetes[J]. Diabetes, 2007, 56(12): 3027-3032.
[45]Djuranovic S, Nahvi A, Green R. miRNA-mediated gene silencing by translational repression followed by mRNA deadenylation and decay[J]. Science, 2012, 336(6078): 237-240.
[46]Tay Y, Rinn J, Pandolfi PP. The multilayered complexity of ceRNA crosstalk and competition[J]. Nature, 2014, 505(7483): 344-352.
[47]Liz J, Portela A, Soler M,etal. Regulation of pri-miRNA processing by a long noncoding RNA transcribed from an ultraconserved region[J]. Mol Cell, 2014, 55(1): 138-147.
[48]Wang P, Xue Y, Han Y,etal. The STAT3-binding long noncoding RNAlnc-DC controls human dendritic cell differentiation[J]. Science, 2014, 344(6181): 310-313.
[49]Huang W, Thomas B, Flynn RA,etal. DDX5 and its associated lncRNARmrpmodulate TH17 cell effector functions[J]. Nature, 2015, 528(7583): 517-522.
(本文編輯:劉群)
10.13602/j.cnki.jcls.2017.01.02
國家自然科學基金(31400773,81671541)。
謝夢曉,1991年生,男,碩士研究生,研究方向:非編碼RNA對自身免疫性疾病的調(diào)節(jié)。
邵啟祥,教授,博士研究生導(dǎo)師,E-mail:shao_qx@163.com。
R446.6
A
2016-11-21)