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      采收前后梨棗果實轉(zhuǎn)紅與果皮活性氧代謝比較

      2016-11-30 00:52:23王海云
      淮陰工學(xué)院學(xué)報 2016年5期
      關(guān)鍵詞:梨棗變度棗果

      王海云

      (馬鞍山師范高等??茖W(xué)校 食品工程系,安徽 馬鞍山 243000)

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      采收前后梨棗果實轉(zhuǎn)紅與果皮活性氧代謝比較

      王海云

      (馬鞍山師范高等??茖W(xué)校 食品工程系,安徽 馬鞍山 243000)

      棗;轉(zhuǎn)紅;褐變;活性氧代謝

      0 引言

      色澤是影響果實外觀品質(zhì)的重要指標(biāo)之一,著色程度與其風(fēng)味品質(zhì)有很大相關(guān)性。果實中影響著色的物質(zhì)包括葉綠素、類胡蘿卜素、花色苷、類黃酮等。果皮的顏色除了與色素類物質(zhì)含量相關(guān)外,還受到酚類等次生物質(zhì)的影響。多酚氧化酶存在于果蔬中,果實采后貯藏過程中它催化酚類物質(zhì)發(fā)生氧化,導(dǎo)致組織褐變,直接影響果實的色澤。

      王如福[1]發(fā)現(xiàn)棗果除了在樹上會正常轉(zhuǎn)紅外,采后也可以轉(zhuǎn)紅,但是采后轉(zhuǎn)紅棗果與樹上正常著色棗果相比顏色暗淡且無光澤,認為采后棗果果皮的轉(zhuǎn)紅可能是一種褐變。李紅衛(wèi)[2]研究發(fā)現(xiàn)棗果轉(zhuǎn)紅率與果皮總酚含量顯著相關(guān),推測酚類物質(zhì)參與了果皮轉(zhuǎn)紅。王蕊[3]和李玲[4]通過研究采后棗果果皮和樹上棗果果皮色素含量和酚類物質(zhì)含量的變化,發(fā)現(xiàn)樹上棗果果皮的著色是葉綠素、類胡蘿卜素的降解與花青素、黃酮類化合物的合成兩方面綜合作用的結(jié)果,而棗果采后轉(zhuǎn)紅是一種褐變。但棗果果皮褐變是由于什么原因引起的,目前尚不清楚.有研究發(fā)現(xiàn)果實采后果皮及果肉褐變與果實發(fā)生生理失調(diào)有關(guān)[5]。前人試驗研究發(fā)現(xiàn)活性氧代謝失調(diào)對果實褐變有很大的影響,活性氧代謝的平衡對樹上棗果的正常轉(zhuǎn)紅是否有影響?有什么影響?有待證明。本研究以梨棗為試材,通過采摘前后棗果轉(zhuǎn)紅過程中活性氧代謝以及與褐變有關(guān)的生理生化指標(biāo)的分析,探討活性氧代謝對棗果轉(zhuǎn)紅的影響。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      以梨棗為試材,采摘于太谷縣南沙河村果園,自樹體東、南、西、北4個方向,高度基本一致的果樹上,挑選大小均勻、無病蟲害、無機械損傷、帶果梗的果實為試材,人工采摘后立即放入冰壺,帶回實驗室,用于測定棗果在樹上自然著色過程中的各項指標(biāo)。從棗果全綠時開始測定,直到全紅。按照棗果著色面積分白熟、圈紅、1/4紅、1/3紅、1/2紅、2/3紅、3/4紅、全紅八個階段,測定其果皮總酚含量、褐變度及活性氧代謝相關(guān)指標(biāo)。

      1.2 實驗設(shè)備與儀器

      WFJ2100型可見分光光度計(尤尼柯(上海)儀器有限公司生產(chǎn)),BS210S電子天平(北京賽多利斯天平有限公司),TGL-20M高速臺式冷凍離心機(長沙湘儀離心機儀器有限公司生產(chǎn)),HH-8數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州華普達教學(xué)儀器有限公司生產(chǎn))以及研缽、容量瓶、吸量管和試管等。

      1.3 測定指標(biāo)及方法

      1.3.1 褐變度大小的測定

      采用改進的Lee等[6]的測定方法,稱取果皮2g,加入95%的乙醇10mL研磨成勻漿,在4000rpm/min下離心20min,取上清液在420nm波長下的紫外分光光度計上測定其OD值。

      1.3.2 總酚含量的測定

      參照朱廣廉等[7]的方法并略做修改,取果皮2g,加入4mL無水乙醇和2mL三氯乙酸(10%),研磨成勻漿后用10%三氯乙酸定容到20mL,冰箱4℃靜置24h后,12000×g離心15min得上清液。取上清液2mL加入3mL FoLin試劑、3mL蒸餾水,混勻后加入2mL堿液(10%Na2CO3+2%NaOH),50℃保溫15min,冰浴冷卻5min,于580nm波長下測定其OD值,以沒食子酸為基準(zhǔn)物質(zhì)作標(biāo)準(zhǔn)曲線,單位為mg/gFW。

      1.3.3 多酚氧化酶(PPO)活性的測定

      參照朱廣廉等[7]的方法并略做修改,取2.5g果皮,加入7.5mL,pH6.8的0.05M的磷酸緩沖液(內(nèi)含5%W/V的PVP),研磨成勻漿,于4℃下提取30min,后在0~4℃、10000×g條件下離心30min,收集上清液并用于酶活測定,酶活以每分鐘內(nèi)OD420變化0.01為1個活性單位U,活力單位以U/gFW.min表示。

      1.3.4 超氧陰離子生成速率的測定

      超氧陰離子提取液的制備:準(zhǔn)確稱取2g果皮,加入8mL 0.05M(PH=7.8)磷酸緩液,加入少量石英砂,冰浴下研磨成勻漿,將勻漿液全部轉(zhuǎn)入離心管,10000r/min,冷凍離心15分鐘,上清液即提取液。

      1.3.5 超氧化物歧化酶(SOD)活性的測定

      參照李合生方法[8](NBT光還原法),單位以抑制NBT光化還原的50%為一個酶活性單位來表示。

      1.3.6 H2O2含量的測定

      稱取果皮2g,加入6mL冷丙酮,研磨后在4℃下12000 r/min離心10 min。取上清液。參照Mukheriec和Choudhuri[9]們的方法測定H2O2的含量。

      1.3.7 過氧化氫酶(CAT)活性的測定

      參照韓雅珊[10]的碘量法測定,反應(yīng)溫度為30℃.酶活單位以H2O2mg·min-1·g-1FW表示。

      圖1 樹上梨棗和采后梨棗果皮褐變度的變化

      1.3.8 丙二醛含量的測定

      參照李合生[8]方法測定,單位為μmol/gFW。

      1.4 數(shù)據(jù)處理及統(tǒng)計分析

      采用Excel和SPSS.V 13.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進行分析。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 棗果果皮褐變度、酚類物質(zhì)及相關(guān)酶活性的變化

      2.1.1 棗果褐變度的變化

      如圖1所示,樹上梨棗隨果皮著色面積的增大,褐變度變化幅度很小。采后梨棗果皮褐變度整體呈現(xiàn)上升的趨勢,1/4紅到1/3紅時褐變度迅速增大,全紅時達到最大值1.4。方差分析表明,采摘前后梨棗果皮褐變度差異顯著(P<0.05)。

      2.1.2 棗果果皮酚類物質(zhì)的變化

      圖2 樹上梨棗和采后梨棗果皮中總酚含量變化

      如圖2所示,樹上梨棗果皮總酚含量的變化整體呈上升趨勢,到3/4紅達到最大值為5mg/gFW。采收后梨棗果皮總酚含量白熟期至圈紅階段略為升高,1/4紅時達到最大值為3.7mg/gFW,之后急劇下降,到全紅時,果皮總酚含量僅為1.1mg/gFW。方差分析表明,從1/3紅開始樹上梨棗和采收后梨棗的果皮總酚含量差異顯著(P<0.05)。相關(guān)性分析顯示采后棗果果皮總酚含量與褐變度呈顯著負相關(guān)(r=-0.786),表明酚類物質(zhì)參與了褐變過程。

      2.1.3 棗果果皮PPO活性的變化

      如圖3所示,樹上梨棗果皮的PPO活性在果實著色過程中逐漸增加,但變化幅度較小,棗果全紅時果皮PPO活性最大為2.9U/min.gFW。梨棗在采后轉(zhuǎn)紅過程中,果皮的PPO活性整體呈上升趨勢,至全紅時PPO活性達到最大,最大值為5.9U/min.gFW。方差分析表明,從1/2紅樹上和采后梨棗果皮PPO活性差異極顯著(P<0.01)。相關(guān)性分析,采后棗果果皮PPO活性與褐變度呈顯著正相關(guān)(r=0.976),表明棗果果皮PPO活性與褐變密切相關(guān)。

      圖3 樹上梨棗和采后梨棗果皮PPO活性的變化

      2.2 棗果果皮活性氧代謝相關(guān)物質(zhì)的變化

      圖4 樹上梨棗和采后梨棗果皮中超氧陰離子含量變化

      2.2.2 棗果果皮H2O2含量的變化

      如圖5所示,樹上梨棗從白熟期到全紅的過程中果皮H2O2含量變化較為平緩,而采后梨棗果皮H2O2含量變化整體呈上升的趨勢,圈紅到1/4紅過程中H2O2含量迅速上升,全紅時達到最大值5.1μmol/g,為全綠時的3.2倍。相關(guān)性分析,采后棗果果皮H2O2含量與褐變度呈極顯著正相關(guān)(r梨棗=0.986),可見H2O2含量的變化與采后棗果果皮褐變有關(guān)。

      圖5 樹上梨棗和采后梨棗果皮中H2O2含量變化

      2.2.3 棗果果皮SOD活性的變化

      細胞內(nèi)過剩的活性氧和自由基會引發(fā)或加劇膜脂過氧化作用。由于細胞內(nèi)存在酶促和非酶促兩類防御系統(tǒng),植物衰老過程中清除體內(nèi)過量的活性氧,維持機體的動態(tài)平衡。SOD就是酶促防御系統(tǒng)中的重要保護酶。

      2.2.4 棗果果皮CAT活性的變化

      如圖7所示,隨著樹上梨棗著色面積的增大,果皮白熟期到圈紅時CAT活性迅速增加,圈紅到全紅過程中果皮CAT活性變化趨勢較為平緩,但整體呈上升趨勢。采收后的梨棗前期小幅度上升,圈紅到1/4紅迅速下降,之后呈緩慢下降的趨勢,全紅時活性最低,為全綠時的20.3%。經(jīng)相關(guān)性分析,采后棗果果皮CAT活性與H2O2含量呈極顯著負相關(guān)(r梨棗=-0.958),表明采后棗果轉(zhuǎn)紅過程中果皮CAT對H2O2的清除能力降低。

      圖7 樹上梨棗和采后梨棗果皮中CAT活性變化

      圖8 樹上梨棗和采后梨棗果皮中MDA含量的變化

      2.2.5 棗果果皮MDA含量的變化

      MDA是膜脂的過氧化產(chǎn)物,它的積累可作為膜傷害和植物衰老的標(biāo)志[12]。

      如圖8所示,樹上梨棗果皮MDA含量前期變化均較平緩,1/4紅到3/4紅呈下降趨勢,3/4紅到全紅呈上升趨勢,但整體變化較為平緩。采后梨棗果皮MDA含量白熟期到1/3紅與樹上梨棗變化趨勢相同,1/3紅到1/2紅時迅速上升到達到0.43 mmol/gFW,后期呈緩慢上升趨勢,全紅時達到最大值為0.57 mmol/gFW,白熟期時MDA含量僅為全紅時的35%,表明采后棗果果皮轉(zhuǎn)紅過程中,加快了果實的膜脂過氧化進程,MDA迅速積累。

      相關(guān)性分析表明,采后棗果果皮MDA含量與褐變度呈顯著正相關(guān)(r梨棗=0.714),說明采后棗果隨著果皮紅色面積的增大,膜的完整性和穩(wěn)定性受到了損害。

      3 結(jié)論與討論

      本試驗研究發(fā)現(xiàn),樹上正常轉(zhuǎn)紅的棗果果皮褐變度變化不大,且酚類物質(zhì)含量及PPO活性均呈上升趨勢,這表明樹上棗果果皮著色并不是酚類物質(zhì)褐變引起的,與王蕊[3]研究的結(jié)果一致。至于果皮酚類物質(zhì)和PPO活性為什么均呈上升趨勢,這有可能是由于正常成熟的棗果,膜系統(tǒng)保持完整性,酚酶區(qū)域化沒有被破壞,酚類物質(zhì)沒有發(fā)生氧化反應(yīng),但具體原因有待進一步研究。

      在正常情況下,植物體內(nèi)的活性氧處于產(chǎn)生與清除的動態(tài)平衡狀態(tài),使活性氧維持在較低水平。如果活性氧不能及時清除而積累,從而促進膜過氧化作用而破壞膜結(jié)構(gòu),膜脂過氧化產(chǎn)物MDA就會積累,而MDA的含量則成為果實抗氧化水平的指標(biāo)。

      本試驗研究發(fā)現(xiàn),棗果在樹上生長發(fā)育期間,隨著果實成熟度的增加及棗果著色面積的增大,果皮SOD和CAT活性均呈上升趨勢,且經(jīng)相關(guān)性分析,果皮SOD活性與超氧陰離子產(chǎn)生速率呈顯著負相關(guān),相關(guān)系數(shù)為-0.814,棗果果皮中H2O2含量變化與CAT活性變化呈負相關(guān),表明抗氧化酶對活性氧的清除能力增加,標(biāo)志著果皮自我防御功能的加強和完善,且棗果果皮褐變度變化不大,表明棗果樹上著色褐變不起主要作用。

      [1] 王如福.鮮棗耐貯性的影響因素及調(diào)控機理研究[D].北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2002.

      [2] 李紅衛(wèi).冬棗采后衰老調(diào)控及乙醇積累機理的研究[D].北京:中國農(nóng)業(yè)大學(xué),2003.

      [3] 王蕊.棗果轉(zhuǎn)紅過程中色素和酚類物質(zhì)的變化[D].晉中:山西農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.

      [4] 李玲.棗著色機理的研究[D].晉中:山西農(nóng)業(yè)大學(xué),2008.

      [5] ZHOU H, FAN XC. Changes of Ca2+ATPase activity and oxygen free radicals in mierosome membranes of post—harvest peach fruit[J]. Acta Bot Boreal Occident Sin, 2007(6):1161-1166.

      [6] Lee CY, Kagan V, Jaworski AW, et al. Enzymatic browning in relation to phenolic compounds and polyphenoloxidase activity among various peach cultivars[J]. J. Agril Food Chem, 1990(8): 99-101.

      [7] 朱廣廉,鐘海文,張愛琴. 植物生理實驗[M].北京:北京大學(xué)出版社,1990.

      [8] 李合生. 植物生理生化實驗原理和技術(shù)[M].北京:高等教育出版社,1998.

      [9] Mukerlec SP, Choudhuri MA. Implications of water stressindueed changes in the levels of endogenous ascorbie acid and hydrogen peroxide in vigna seedlings[J]. Physiologia Plantarum,1983(5):166-170.

      [10] 韓雅珊.食品化學(xué)實驗指導(dǎo)[M].北京:北京農(nóng)業(yè)大學(xué)出版社,1992.

      [11] 譚興杰,周永成. 荔枝果皮多酚氧化酶酶促褐變的研究[J].植物生理學(xué)報,1987(20): 197-203.

      [12] 胡曉丹,盧黎明,謝筆鈞. 蓮藕酶促褐變的研究[J]. 江蘇食品與發(fā)酵,1999(2):1-4.

      (責(zé)任編輯:孫文彬)

      Comparison of Turn Red and Peel Jujube Active Oxygen Metabolism and its Relation of Pear-jujube Fruit in and out of the Tree

      WANG Hai-yun

      (Department of Food Engineering, Maanshan Teacher's College, Maanshan Anhu 243000, China)

      jujube; turn red; browning; active oxygen metabolism

      2016-05-17

      安徽省級質(zhì)量工程(2015gxk095)

      王海云(1984-),女,山東聊城人,助教,碩士,主要從事農(nóng)產(chǎn)品加工及貯藏、果酒發(fā)酵等方面的研究。

      TF225.4

      A

      1009-7961(2016)05-0045-05

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