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    角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基條件下構(gòu)建組織工程皮膚

    2016-11-06 09:09:12林建紅汪宇盧彬劉志江蕾微王今朝張偉李世軍陸洪光
    中華皮膚科雜志 2016年2期
    關(guān)鍵詞:角質(zhì)真皮表皮

    林建紅 汪宇 盧彬 劉志 江蕾微 王今朝 張偉 李世軍 陸洪光

    550004貴陽,貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院皮膚科(第一作者現(xiàn)在湖南省邵陽市第一人民醫(yī)院皮膚科,422000)

    角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基條件下構(gòu)建組織工程皮膚

    林建紅 汪宇 盧彬 劉志 江蕾微 王今朝 張偉 李世軍 陸洪光

    550004貴陽,貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院皮膚科(第一作者現(xiàn)在湖南省邵陽市第一人民醫(yī)院皮膚科,422000)

    目的 探討在角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基條件下,用人成纖維細(xì)胞、角質(zhì)形成細(xì)胞和黑素細(xì)胞接種于人去表皮真皮構(gòu)建組織工程皮膚。方法 胰酶和膠原酶消化處理健康小兒包皮,獲得表皮和真皮細(xì)胞懸液。分別將角質(zhì)形成細(xì)胞、黑素細(xì)胞傳至第3代,成纖維細(xì)胞傳至第5代,調(diào)整細(xì)胞密度為2.5×105/ml。制備人去表皮真皮(含部分基底膜成分),先將成纖維細(xì)胞懸液種于6孔板板底,24 h后將人去表皮真皮放入6孔板,角質(zhì)形成細(xì)胞、黑素細(xì)胞懸液接種于人去表皮真皮表面(成纖維細(xì)胞、角質(zhì)形成細(xì)胞、黑素細(xì)胞比例為1∶4∶1。實(shí)驗(yàn)組用角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基培養(yǎng),對(duì)照組用含10%FBS的DMEM、K-SFM、M254,3種培養(yǎng)液比例為1∶1∶1的混合培養(yǎng)基培養(yǎng),人去表皮真皮作為空白對(duì)照。液下培養(yǎng)3 d后,空氣液面培養(yǎng)相結(jié)合的方式進(jìn)行培養(yǎng),每 3 天換液 1 次,2 周后取培養(yǎng)的組織工程皮膚分別行 HE 染色,Melan-A、S-100、HMB45、CKpan、P63、K5、K6、K14、Ki67、Vimentin、CollagenⅣ、Laminin免疫組化染色及PAS染色并取正常皮膚做陽性對(duì)照。結(jié)果 經(jīng)過14 d的氣液培養(yǎng),實(shí)驗(yàn)組出現(xiàn)完整的新生表皮結(jié)構(gòu),CKpan、P63、K5、K6、K14、Ki67、Melan-A、S-100、HMB45、CollagenⅣ、Laminin免疫組化染色陽性;對(duì)照組出現(xiàn)完整的新生表皮結(jié)構(gòu),可見角質(zhì)層,CKpan、P63、K5/6、K14、Ki67、Laminin免疫組化染色陽性。結(jié)論 角質(zhì)形成細(xì)胞、黑素細(xì)胞及成纖維細(xì)胞與人去表皮真皮在角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基條件下,體外可構(gòu)建組織工程皮膚。

    皮膚;組織工程;培養(yǎng)基,無血清;成纖維細(xì)胞;黑素細(xì)胞;角蛋白細(xì)胞

    體外構(gòu)建組織工程皮膚因其能較好地模擬皮膚的生理功能甚至用于疾病的治療而引起廣泛關(guān)注,相繼很多學(xué)者對(duì)此進(jìn)行研究和改進(jìn)[1-2]。大多皮膚模型構(gòu)建均有血清成分的參與,始終存在潛在的風(fēng)險(xiǎn)。本實(shí)驗(yàn)在角質(zhì)形成細(xì)胞無血清培養(yǎng)基(K-SFM)條件下用角質(zhì)形成細(xì)胞(KC)、黑素細(xì)胞(MC)及成纖維細(xì)胞(Fb)共同體外構(gòu)建組織工程皮膚。并通過對(duì)新生表皮進(jìn)行表皮相關(guān)分化蛋白標(biāo)記物進(jìn)行免疫組化,對(duì)新生表皮的分化、增殖功能進(jìn)行分析。

    資料與方法

    一、資料

    1.主要試劑:K-SFM、EGF、BPE、M254、HMGS和高糖型DMEM培養(yǎng)基購自美國Gibico生物公司。Ⅳ型膠原酶購自北京索萊寶科技有限公司公司,胎牛血清購自美國Hyclone公司,谷氨酰胺和0.25%胰蛋白酶-0.01%EDTA購自美國Sigma公司。兔抗人CKpan多克隆抗體、兔抗人S100多克隆抗體、鼠抗人HMB45單克隆抗體、鼠抗人Melan-A單克隆抗體、鼠抗人P63單克隆抗體、鼠抗人Ki67單克隆抗體、即用型CK14鼠抗人單克隆抗體、即用型CK14鼠抗人單克隆抗體、4%甲醛固定液、檸檬酸磷酸鹽修復(fù)液、即用型兔抗人蛋白基因產(chǎn)物9.5免疫組化多克隆抗體、即用型MaxVisionTM試劑及DAB顯色液均由福州邁新生物技術(shù)有限公司生產(chǎn)。

    2.主要儀器:CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱3100型購自美國Thermo公司,CK40-F200型倒置顯微鏡購自日本Olympus公司,超凈工作臺(tái)購自蘇州凈化設(shè)備公司。自制組織培養(yǎng)支撐架[3]常規(guī)消毒滅菌處理后備用。

    3.標(biāo)本采集:貴州醫(yī)科大學(xué)院附屬醫(yī)院小兒外科6~12歲患兒包皮環(huán)切術(shù)后的正常包皮組織。實(shí)驗(yàn)經(jīng)本院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),患者家屬均簽署知情同意書。

    二、方法

    1.KC、MC及Fb的分離培養(yǎng):將包皮用無菌生理氯化鈉溶液和聚維酮碘各沖洗2次,然后用含有雙抗(含100U/ml青霉素和100 μg/ml鏈霉素)的PBS液沖洗包皮5次,將包皮剪成0.5 cm×1 cm的細(xì)長條,Dispase酶4℃消化16~18 h。18 h后將表皮與真皮分離,表皮用0.25%胰酶0.01%EDTA室溫消化2~3 min,用10%FBS的DMEM終止消化,低速離心(224×g),用M-254重懸,計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度為2×106/ml,分別接種于一次性培養(yǎng)瓶中。真皮組織用0.2%Ⅳ型膠原酶37℃消化2~3 h,用含10%FBS的DMEM重懸,調(diào)整細(xì)胞密度為2×106/ml,接種于一次性培養(yǎng)瓶中。置于孵箱(5%CO2、37℃)中培養(yǎng),24h后首次換液,每3天換液1次。15~20d后傳代,取第3代KC、MC及第5代Fb進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

    2.細(xì)胞貼附情況觀察:分別將KC、MC及Fb制成1×105/ml的細(xì)胞懸液,每3天換液1次,并在倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞貼附情況。

    3.細(xì)胞爬片及抗 CKpan、L-Dopa及 Vimentin染色均由福州邁新生物技術(shù)開發(fā)有限公司完成。

    4.去表皮真皮制備:標(biāo)本來源于貴州醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院急診骨外科32歲男性截肢大腿處壞死組織周圍正常皮膚。將皮下脂肪組織層剪除,制成1cm×1 cm皮片,在56℃PBS恒溫水浴箱中浸泡30 min,用眼科鑷分離真表皮,將真皮置于1.5 ml微量離心管中,迅速置入液氮中6~8 min,取出后室溫放置30 min,如此重復(fù)10個(gè)循環(huán),-20℃冰箱中保存?zhèn)溆茫?],置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    5.KC、MC及Fb與去表皮真皮體外構(gòu)建組織工程皮膚:取第5代密度為2.5×105/ml的Fb各8 μl分別接種于含相應(yīng)培養(yǎng)基3 ml的兩個(gè)6孔板中,其中一個(gè)用含等比例的10%DMEM、完全M-254、完全K-SFM培養(yǎng),另外一個(gè)單獨(dú)用完全K-SFM。將6孔板置于溫箱(5%CO2、37℃)環(huán)境中孵育備用。24 h后,將經(jīng)預(yù)處理的去表皮真皮,基底膜面向上置于板底含成纖維細(xì)胞的6孔板中,用移液器將第3代密度為 2.5×105/ml MC、KC細(xì)胞懸液各 8 μl、32 μl接種于去表皮真皮上,將6孔板置于溫箱(5%CO2、37℃)環(huán)境中孵育,以促使 MC、KC緊密地貼附于去表皮真皮。4 h后,實(shí)驗(yàn)組加入單一無血清的完全K-SFM培養(yǎng)基,對(duì)照組加入等比例的10%FBS的DMEM培養(yǎng)基、完全M-254培養(yǎng)基以及無血清的完全K-SFM培養(yǎng)基共3 ml,使之浸沒去表皮真皮,置于溫箱(5%CO2、37℃)中培養(yǎng),每 2、3天換液1次。上述兩組分別用不添加任何細(xì)胞的去表皮真皮作為陰性對(duì)照。

    6.組織工程皮膚HE染色及Melan-A、S-100、HMB45、CKpan、P63、CK14、CK5/6、Ki67、Vimentin、CollagenⅣ、Laminin免疫組化染色,正常人乳房皮膚作為陽性對(duì)照,HE及免疫組化染色均由福州邁新生物技術(shù)開發(fā)有限公司完成。

    結(jié) 果

    1.細(xì)胞貼附情況:第3代MC培養(yǎng)7 d后,輪廓清楚、折光性好,形態(tài)多樣,主要呈樹突狀,見圖1。第3代KC培養(yǎng)5 d后呈典型上皮細(xì)胞鋪路石樣,見圖2。第5代FBs培養(yǎng)5 d后,生長排列多呈放射狀、編織狀或漩渦狀走行,見圖3。

    2.KC、MC及Fb爬片免疫組化檢測:KC行CKpan免疫組化染色示胞質(zhì)呈棕黃色陽性著色,見圖4A。MC行L-Dopa染色,L-Dopa染色示細(xì)胞呈黑色,見圖4B。Fb行vimentin免疫組化染色示胞質(zhì)呈棕黃色陽性著色,見圖4C。

    3.培養(yǎng)2周后HE染色:實(shí)驗(yàn)組組織工程皮膚表皮結(jié)構(gòu)清晰,排列整齊,未見顆粒層、透明層,部分細(xì)胞胞質(zhì)空泡化,見圖5A,5B。對(duì)照組組織工程皮膚表皮結(jié)構(gòu)清晰,層次分明,角質(zhì)層角化不完全,見圖5D,5E。各組空白對(duì)照去表皮真皮無細(xì)胞生長,見圖5C,5F。正常皮膚表皮結(jié)構(gòu)清晰,層次分明,見圖 5G,5H。

    4.Melan-A、S-100、HMB45、CKpan、P63、CK14、CK5/6、Ki67、Vimentin、CollagenⅣ、Laminin 染色:組織工程皮膚及正常皮膚可見表皮細(xì)胞胞質(zhì)CKpan免疫組化染色表皮細(xì)胞均呈陽性反應(yīng),胞質(zhì)呈棕黃色,見圖6A~6C。組織工程皮膚及正常皮膚P63免疫組化,可見表皮基底層、棘層部分細(xì)胞呈陽性反應(yīng),細(xì)胞核呈棕黃色,見圖7A~7C。CK14免疫組化,可見實(shí)驗(yàn)組、正常組基底層、棘層細(xì)胞胞質(zhì)呈棕紅色,對(duì)照組表皮全層細(xì)胞胞質(zhì)陽性。CK5/6免疫組化顯示實(shí)驗(yàn)組、正常皮膚表皮胞質(zhì)呈棕黃色陽性反應(yīng)。組織工程皮膚及正常皮膚Ki67免疫組化,可見表皮基底層、棘層部分細(xì)胞呈陽性反應(yīng),細(xì)胞核呈棕紅色,見圖8A~8C。Mel-A、S-100、HMB-45染色,實(shí)驗(yàn)組可見表皮基底層部分細(xì)胞呈陽性反應(yīng),細(xì)胞質(zhì)呈棕黃色。對(duì)照組陰性。正常皮膚Mel-A、S-100、HMB-45陽性對(duì)照,可見表皮基底層部分細(xì)胞呈陽性反應(yīng),細(xì)胞質(zhì)呈棕黃色。

    圖1 培養(yǎng)7 d,第3代黑素細(xì)胞輪廓清楚、折光性好,形態(tài)多樣,主要呈樹突狀(倒置顯微鏡×100)

    圖2 培養(yǎng)5 d,第3代角質(zhì)形成細(xì)胞呈典型上皮細(xì)胞鋪路石樣(倒置顯微鏡×400)

    圖3 培養(yǎng)5 d,第5代成纖維細(xì)胞呈放射狀、編織狀或漩渦狀走行(倒置顯微鏡×100)

    圖4 4A:第3代角質(zhì)形成細(xì)胞胞質(zhì)呈棕黃色陽性著色(CKpan免疫組化×200);4B:第3代黑素細(xì)胞呈樹突狀,細(xì)胞呈黑色(L-Dopa染色×400);4C:第5代成纖維細(xì)胞胞質(zhì)呈棕黃色陽性著色(Vimentin免疫組化×200)

    討 論

    盡管有研究將培養(yǎng)的KC組織工程皮膚用于疾病的治療[5-6],實(shí)際上在體外進(jìn)行擴(kuò)增或構(gòu)建人工皮膚時(shí),添加了血清的成分促進(jìn)其分化與增殖,而血清中所含生長因子和生長激素的含量變化大,且成分極為復(fù)雜,不利于組織工程皮膚生長及安全性的調(diào)控[7]。本實(shí)驗(yàn)使用的K-SFM,成分包含表皮生長因子和牛腦垂體提取物,有促進(jìn)角質(zhì)形成細(xì)胞的增值、分化[8]和遷移[9]。其中不含血清成分,并且已證明可用于角質(zhì)形成細(xì)胞的體外擴(kuò)增培養(yǎng)[10-11]。利用無血清培養(yǎng)基體外構(gòu)建組織工程皮膚除了獲得臨床治療上的優(yōu)勢外,還可為進(jìn)一步研究KC、MC及Fb旁分泌之間的關(guān)系提供了研究基礎(chǔ)。除此之外,在體外構(gòu)建組織工程皮膚,細(xì)胞支架及基質(zhì)(即真皮替代物)在體外構(gòu)建組織工程皮膚過程中對(duì)誘導(dǎo)細(xì)胞發(fā)育成完整的表皮結(jié)構(gòu)起到重要的作用。我們選用的去表皮真皮支架是經(jīng)過一系列處理后將去表皮的真皮組織細(xì)胞殺死,去表皮真皮表面及真皮內(nèi)殘留的附屬器導(dǎo)管內(nèi)存在豐富的粘多糖,保留部分基底膜及膠原蛋白成分,完整地保持了真皮膠原纖維和彈性纖維的結(jié)構(gòu)[4]。可能為誘導(dǎo)表皮生長發(fā)育提供了微環(huán)境,不僅有利于種子細(xì)胞的黏附、發(fā)育和分化,而且其生物相容性好。

    圖5 第14天,實(shí)驗(yàn)組組織工程皮膚表皮結(jié)構(gòu)清晰,排列整齊,未見顆粒層、透明層,部分細(xì)胞胞質(zhì)空泡化(5A:HE×100;5B:HE×400);5C:實(shí)驗(yàn)組去表皮的真皮空白對(duì)照,無表皮生長(HE×200)。第14天對(duì)照組組織工程皮膚表皮結(jié)構(gòu)清晰,層次分明,角質(zhì)層角化不完全。(5D:HE×40;5E:HE×200);5F:對(duì)照組去表皮的真皮空白對(duì)照,無表皮生長(HE×200)。正常皮膚組織表皮結(jié)構(gòu)清晰,層次分明(5G:HE×40;5H:HE × 200)

    圖6 實(shí)驗(yàn)組組織工程皮膚(6A)、對(duì)照組組織工程皮膚(6B)、正常皮膚組織(6C)CKpan免疫組化染色,胞質(zhì)呈棕黃色(免疫組化×200)

    KC與Fb之間有完整的作用通路:一方面,KC分泌IL-1促進(jìn)Fb分泌IL-6、IL-8、角質(zhì)形成細(xì)胞生長因子、粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子等,這些因子可促進(jìn)KC的分化與增殖。另一方面,KC分泌甲狀旁腺素相關(guān)肽,增加Fb分泌角質(zhì)形成細(xì)胞生長因子,角質(zhì)形成細(xì)胞生長因子反過來作用于KC促進(jìn)其分化與增殖[12]。前期[10]研究提示,F(xiàn)b 不能通過去表皮真皮表面往真皮層生長或者進(jìn)入真皮層的細(xì)胞較少,所以,我們將Fb種于培養(yǎng)板底,通過細(xì)胞分泌的相關(guān)因子來相互影響重建皮膚組織表皮細(xì)胞的生長。

    通過對(duì)K-SFM培養(yǎng)基培養(yǎng)的KC、MC及Fb體外構(gòu)建的組織工程皮膚新生細(xì)胞相關(guān)標(biāo)記蛋白進(jìn)行免疫組化分析。結(jié)果表明,在K-SFM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)下,KC、MC及Fb體外構(gòu)建的新生表皮具有類似于正常皮膚的分化、增殖功能以及黑素細(xì)胞的存在使色素修復(fù)成為可能,這些均為臨床應(yīng)用提供了基礎(chǔ)。

    圖7 實(shí)驗(yàn)組組織工程皮膚(7A)、對(duì)照組組織工程皮膚(7B)、正常皮膚組織(7C)表皮基底層、部分棘層細(xì)胞P63表達(dá),細(xì)胞核呈棕黃色(免疫組化×200)

    圖8 實(shí)驗(yàn)組組織工程皮膚(8A)、對(duì)照組組織工程皮膚(8B)、正常皮膚組織(8C)表皮基底層、部分棘層細(xì)胞Ki67表達(dá),細(xì)胞核呈棕紅色(免疫組化×400)

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    Reconstruction of tissue-engineered skin using keratinocyte serum-free medium

    Lin Jianhong,Wang Yu,Lu Bin,Liu Zhi,Jiang Leiwei,Wang Jinzhao,Zhang Wei,Li Shijun,Lu Hongguang
    Department of Dermatology,Affiliated Hospital of Guizhou Medical University,Guiyang 550004,China(the current affiliation of the first author was Department of Dermatology,First People′s Hospital of Shaoyang,Shaoyang 422000,Hunan,China)

    ObjectiveTo reconstruct tissue-engineered skin by co-culture of human fibroblasts,keratinocytes and melanocytes on human de-epidermized dermis with keratinocyte serum-free medium (K-SFM).MethodsHealthy children′s prepuce tissues were treated with pancreatin and collagenase to prepare epidermal and dermal cell suspensions respectively.After keratinocytes and melanocytes were cultured separately up to passage 3 and fibroblasts up to passage 5,the density of these cells was adjusted to 2.5×105/mlfor the following experiment.Human de-epidermized dermis containing some components of the basement membrane was prepared.Firstly,fibroblast suspensions were seeded at the bottom of 6-well plates followed by 24-hour culture.Subsequently,the prepared de-epidermized dermis was added into the 6-well plates,then,keratinocyte and melanocyte suspensions were seeded on the surface of the de-epidermized dermis with the melanocyte∶keratinocyte∶fibroblast ratio being 1∶4∶1.After 4 hours of culture,the cell mixtures were divided into two groups:an experimental group cultured with K-SFM,a control group cultured with a mixed medium containing DMEM with 10%fetal bovine serum,K-SFM and M254 at a ratio of 1 ∶1∶1.De-epidermized dermis cultured with K-SFM or the mixed medium alone served as blank control groups.After submerged cultivation for 3 days,the tissue cultures were maintained at an air-liquid interface for another 11 days with the culture medium changed every 3 days.Finally,these cultures were subjected to hematoxylin and eosin staining,periodic acid-Schiff(PAS)staining and immunohistochemical staining for Melan-A,S-100,HMB45,cytokeratin-Pan,P63,K5,K6,K14,Ki67,vimentin,collagenⅣand laminin.ResultsAfter 14-day submerged and air-liquid interface culture,a well-structured epidermis developed in both the experimental group and control group with the formation of the stratum corneum.The immunohistochemical study showed positive staining for cytokeratin-Pan,P63,K5,K6,K14,Ki67,laminin in both the experimental group and control group,but positive staining for Melan-A,S-100,HMB45 and collagenⅣin only the experimental group.ConclusionTissue-engineered skin can be constructed using keratinocytes,melanocytes and fibroblasts co-cultured on de-epidermized dermis with K-SFMin vitro.

    Skin;Tissue engineering;Culture media,serum-free;Fibroblasts;Melanocytes;Keratinocytes

    Lu Hongguang,Email:hongguanglu@hotmail.com

    2015-06-08)

    (本文編輯:吳曉初)

    陸洪光,Email:hongguanglu@hotmail.com

    10.3760/cma.j.issn.0412-4030.2016.02.006

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