基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜在革蘭陰性桿菌對(duì)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素耐藥性檢測(cè)中的應(yīng)用進(jìn)展

李媛睿， 俞 靜， 劉 瑛

·綜述·

基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜在革蘭陰性桿菌對(duì)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素耐藥性檢測(cè)中的應(yīng)用進(jìn)展

李媛睿， 俞 靜， 劉 瑛

基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜； 革蘭陰性桿菌； β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素； 耐藥性

β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素是一類(lèi)臨床應(yīng)用最為廣泛的抗菌藥物，它通過(guò)干擾細(xì)菌細(xì)胞壁肽聚糖的交聯(lián)結(jié)構(gòu)發(fā)揮殺菌作用。該類(lèi)抗生素包括青霉素及其衍生物、頭孢菌素、單酰胺環(huán)類(lèi)和碳青霉烯類(lèi)等，其中尤以碳青霉烯類(lèi)抗生素的抗菌活性最強(qiáng)。2013年CHINET細(xì)菌耐藥性監(jiān)測(cè)數(shù)據(jù)顯示：腸桿菌科細(xì)菌對(duì)頭孢菌素的耐藥率約為20%，對(duì)碳青霉烯類(lèi)抗生素的耐藥率接近7%；不發(fā)酵糖革蘭陰性桿菌對(duì)頭孢菌素和碳青霉烯類(lèi)抗生素耐藥率均接近50%［1］。耐藥菌株不斷出現(xiàn)給臨床用藥的選擇帶來(lái)很大困惑。針對(duì)上述細(xì)菌耐藥性的嚴(yán)峻形勢(shì)，需要應(yīng)用新技術(shù)更加快速、準(zhǔn)確地檢測(cè)細(xì)菌及其對(duì)抗菌藥物的耐藥性，從而及時(shí)對(duì)患者進(jìn)行合理的抗生素治療，對(duì)醫(yī)院內(nèi)傳播的耐藥菌株采取有效的控制措施。

基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜（matrixassisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometry，MALDI-TOF MS）是最新發(fā)展起來(lái)的一種快速檢測(cè)生物大分子的軟電離質(zhì)譜技術(shù)，可用于細(xì)菌和真菌鑒定，具有簡(jiǎn)便、快速、準(zhǔn)確和經(jīng)濟(jì)等優(yōu)點(diǎn)［2］。近年來(lái)MALDI-TOF MS技術(shù)在微生物領(lǐng)域內(nèi)的應(yīng)用范圍不斷擴(kuò)展，它不僅是細(xì)菌鑒定的有效工具，也為細(xì)菌耐藥性檢測(cè)研究提供了新方法。細(xì)菌對(duì)抗生素產(chǎn)生耐藥性的原因包括：天然固有耐藥、后天耐藥基因突變和基因轉(zhuǎn)移。革蘭陰性桿菌對(duì)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素產(chǎn)生的耐藥機(jī)制主要有以下3種：產(chǎn)β內(nèi)酰胺酶、外膜孔道蛋白結(jié)構(gòu)改變和外排泵系統(tǒng)的過(guò)度表達(dá)等。本文從上述三方面綜述了MALDI-TOF MS在革蘭陰性桿菌β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素耐藥性檢測(cè)方面相關(guān)的研究進(jìn)展，并展望該技術(shù)未來(lái)的應(yīng)用前景。

1 應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)β內(nèi)酰胺酶

1.1 β內(nèi)酰胺酶活性的檢測(cè)

產(chǎn)β內(nèi)酰胺酶是導(dǎo)致細(xì)菌對(duì)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素耐藥的主要原因，臨床上重要的β內(nèi)酰胺酶包括青霉素酶、超廣譜β內(nèi)酰胺酶（ESBL）、頭孢菌素酶以及碳青霉烯酶。β內(nèi)酰胺酶具有解開(kāi)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素的β內(nèi)酰胺環(huán)的活性，應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)抗生素及其降解產(chǎn)物變化，可以判斷細(xì)菌是否具有β內(nèi)酰胺酶活性。常見(jiàn)β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素及其降解產(chǎn)物的分子式和分子量見(jiàn)表1。

表1 β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素及其降解產(chǎn)物的分子式和分子量

應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)抗生素等小分子樣本的常用基質(zhì)有2，5-二羥基苯甲酸（DHB）和α-氰基-4-羥基肉桂酸（HCCA）［3］，分子量分別為154 u和190 u。由于基質(zhì)的質(zhì)譜峰可能會(huì)干擾待測(cè)抗生素的質(zhì)譜峰，因此需要選擇合適的基質(zhì)，使基質(zhì)峰和樣品峰之間不存在重疊。相關(guān)研究顯示：美羅培南［M+H］+（384 u）與HCCA二聚物［2M+H］+（380 u）的質(zhì)譜峰有重疊，應(yīng)選擇DHB為檢測(cè)美羅培南的基質(zhì)［4］；檢測(cè)氨芐西林、哌拉西林、頭孢噻肟、頭孢他啶、亞胺培南和厄他培南等抗生素，均可選擇HCCA為基質(zhì)［5-7］。應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)細(xì)菌的β內(nèi)酰胺酶活性，可用Tris-HCl緩沖液和0.45% NaCl溶液作為細(xì)菌蛋白質(zhì)的溶劑，其中加入SDS能有效降低上清液中細(xì)菌蛋白豐度，抑制基質(zhì)信號(hào)，從而提高檢測(cè)特異性［4，8］。目前市場(chǎng)上已有多種品牌及型號(hào)的MALDI-TOF MS儀和靶板：質(zhì)譜儀通常配制MALDI離子源和線性TOF檢測(cè)器，采用新型的反射式TOF檢測(cè)器，能提高檢測(cè)分辨率和質(zhì)譜數(shù)據(jù)采集速度；AnchorChip質(zhì)譜靶板表面疏水作用基團(tuán)的中央具有親水基團(tuán)，溶劑蒸發(fā)時(shí)樣品液滴收縮增加了靶板點(diǎn)樣區(qū)的蛋白質(zhì)豐度，相對(duì)常規(guī)靶板其檢測(cè)靈敏度提高10～100倍［6］。

不同文獻(xiàn)報(bào)道的應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)β內(nèi)酰胺酶活性的方法基本相同：將過(guò)夜培養(yǎng)的純菌落配成菌懸液，加入一定濃度的β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素溶液，混勻后置于37 ℃孵育1～4 h，離心，取上清液和相應(yīng)基質(zhì)依次點(diǎn)至靶板，利用MALDITOF MS進(jìn)行檢測(cè)，根據(jù)抗生素峰是否缺失或峰強(qiáng)度降低及降解產(chǎn)物質(zhì)譜峰是否出現(xiàn)，來(lái)判斷待測(cè)菌株是否具有相應(yīng)的酶活性。表2中顯示，MALDI-TOF MS在1～4 h內(nèi)可檢測(cè)革蘭陰性桿菌β內(nèi)酰胺酶活性，除生物梅里埃公司的VITEK MS型質(zhì)譜儀外，應(yīng)用布魯克公司的Ultraflex、Microflex和Autoflex型質(zhì)譜儀檢測(cè)β內(nèi)酰胺酶活性的靈敏度和特異度達(dá)96%～100%，與傳統(tǒng)方法相比具有操作簡(jiǎn)單直接，快速準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn)，將來(lái)有可能成為臨床微生物實(shí)驗(yàn)室的常規(guī)檢測(cè)方法［9］。應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)β內(nèi)酰胺酶活性存在一定局限性：由于采用的基質(zhì)和緩沖液不同，造成各實(shí)驗(yàn)室所得抗生素及降解產(chǎn)物質(zhì)譜峰分子量存在差異，這就需要設(shè)置各自實(shí)驗(yàn)室的陽(yáng)性和陰性對(duì)照，作為檢測(cè)結(jié)果的判斷依據(jù)［10］；僅能夠檢測(cè)耐藥株是否水解β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素，而不能判斷菌株對(duì)抗生素的耐藥程度［11］。

最近有研究報(bào)道，采用MALDI-TOF MS技術(shù)聯(lián)合SepsityperTMkit試劑盒或分離膠促凝管，不但可直接檢測(cè)陽(yáng)性血培養(yǎng)中細(xì)菌，還可快速檢測(cè)陽(yáng)性血培養(yǎng)中細(xì)菌的β內(nèi)酰胺酶活性，對(duì)臨床調(diào)整抗生素治療方案、控制血流感染有重要意義［12-13］。

1.2 β內(nèi)酰胺酶的檢測(cè)

β內(nèi)酰胺酶是一類(lèi)由細(xì)菌產(chǎn)生的酶蛋白質(zhì)。將細(xì)菌蛋白質(zhì)提取物用MALDI-TOF MS檢測(cè)，可直接鑒定細(xì)菌是否產(chǎn)生β內(nèi)酰胺酶特異的質(zhì)譜峰，MALDI-TOF MS的檢測(cè)結(jié)果可通過(guò)肽質(zhì)量指紋譜（peptide mass fingerprinting，PMF） 分析得到驗(yàn)證。PMF分析是目前蛋白質(zhì)組研究中鑒定蛋白質(zhì)較為常用的方法：首先提取細(xì)菌蛋白質(zhì)進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳（sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electropheresis，SDS-PAGE）或雙向凝膠電泳（two-dimensional electrophoresis， 2-DE）；再切取凝膠中β內(nèi)酰胺酶蛋白條帶，經(jīng)胰蛋白酶消化后產(chǎn)生肽段，采用串聯(lián)質(zhì)譜（MALDI-TOF/TOF MS）或液相色譜質(zhì) 譜（Liquid chromatography -mass spectrometry，LC-MS）鑒定出肽段序列；最后將肽段數(shù)據(jù)導(dǎo)入Mascot軟件，搜索匹配蛋白質(zhì)種類(lèi)。Mascot是目前使用最廣泛的蛋白質(zhì)鑒定檢索軟件， 可以實(shí)現(xiàn)從質(zhì)譜數(shù)據(jù)到蛋白質(zhì)的鑒定。

表2 應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)革蘭陰性桿菌β內(nèi)酰胺酶活性

CAMARA等［18］在含氨芐西林的LB肉湯中培養(yǎng)耐藥大腸埃希菌，通過(guò)甲酸和異丙醇裂解提取細(xì)菌蛋白質(zhì)，將上清液點(diǎn)樣至靶板，干燥后再點(diǎn)樣基質(zhì)芥子酸 （sinapic acid， SA），采用MALDI -TOF MS檢測(cè)發(fā)現(xiàn)在29 ku處存在特征質(zhì)譜峰，通過(guò)PMF分析驗(yàn)證該峰為β內(nèi)酰胺酶。PAPAGIANNITSIS等［19］應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)產(chǎn)頭孢菌素酶弗氏枸櫞酸桿菌的提取物，發(fā)現(xiàn)在39 850 u處有特異性質(zhì)譜峰，經(jīng)PMF分析確證為CMY-2型頭孢菌素酶。LAU等［20］利用MALDI -TOF MS檢測(cè)產(chǎn)碳青霉烯酶的肺炎克雷伯菌存在11 109 u特征質(zhì)譜峰，經(jīng)PMF分析鑒定為blaKPC型碳青霉烯酶，由于肺炎克雷伯菌pKpQIL質(zhì)粒上的blaKPC基因與Tn4401轉(zhuǎn)位子相連，可將blaKPC基因通過(guò)質(zhì)粒轉(zhuǎn)移接合至大腸埃希菌DH10B，采用MALDI -TOF MS和DNA序列分析均能證明發(fā)生轉(zhuǎn)移結(jié)合的大腸埃希菌存在11 109 u特征性質(zhì)譜峰和Tn4401轉(zhuǎn)位子。

1.3 β內(nèi)酰胺酶基因的SNP測(cè)序

PUSCH等［21］建 立 了 以MALDI-TOF MS為基礎(chǔ)的單核苷酸多態(tài)性（single nucleotide polymorphism，SNP）基因分型方法：首先通過(guò)PCR擴(kuò)增出一段含有SNP的DNA（SNP位點(diǎn)前后各50 bp左右），用SNP酶去除掉PCR體系中剩余的脫氧核糖核苷三磷酸（dNTP）和引物；再加入單堿基延伸引物，其3'末端堿基緊挨SNP位點(diǎn)，采用4種ddNTP替代dNTP；然后探針在SNP位點(diǎn)處僅延伸一個(gè)堿基，連接上的ddNTP與SNP位點(diǎn)的等位基因?qū)?yīng)；最后應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)延伸產(chǎn)物與未延伸引物間的分子量差異，確定該位點(diǎn)處堿基，能夠推測(cè)DNA堿基序列的變化。

有相關(guān)研究報(bào)道［22-23］，基于MALDI-TOF MS 的SNP測(cè)序技術(shù)能清楚區(qū)分細(xì)菌質(zhì)粒攜帶的β內(nèi)酰胺酶基因上位點(diǎn)突變的質(zhì)譜峰差異，從而準(zhǔn)確檢測(cè)大腸埃希菌的SHV型和TEM型β內(nèi)酰胺酶基因。基于MALDI-TOF MS的SNP測(cè)序是一種快速檢測(cè)β內(nèi)酰胺酶基因的新方法，其檢測(cè)結(jié)果高度可靠、試劑成本低、適合于自動(dòng)化操作且在一次實(shí)驗(yàn)中可檢測(cè)多位點(diǎn)突變。

2 應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)膜孔蛋白

革蘭陰性細(xì)菌的外膜上存在多種外膜蛋白（outer membrane protein， Omp），其中膜孔蛋白（porin）對(duì)抗生素具有選擇通透性。若膜孔蛋白結(jié)構(gòu)發(fā)生改變或者缺失，外膜通透性減弱，運(yùn)輸至細(xì)菌壁膜間隙的β內(nèi)酰胺類(lèi)抗生素大量減少，使細(xì)菌對(duì)抗生素耐藥。

PMF是一種直接、有效的蛋白質(zhì)組鑒定技術(shù)，近年來(lái)質(zhì)譜技術(shù)已經(jīng)應(yīng)用于細(xì)菌外膜蛋白質(zhì)組研究［24］。通常采用SDS-PAGE或2-DE電泳分離細(xì)菌外膜蛋白，切取凝膠中目的蛋白條帶，胰蛋白酶解蛋白質(zhì)并純化肽段，再進(jìn)行質(zhì)譜儀檢測(cè)，最后在Mascot數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索PMF代表的膜孔蛋白組分。應(yīng)用質(zhì)譜儀檢測(cè)不同革蘭陰性桿菌的膜孔蛋白的結(jié)果如表3所示［25-27］。最新一項(xiàng)研究建立了應(yīng)用MALDI-TOF MS快速檢測(cè)大腸埃希菌與肺炎克雷伯菌膜孔蛋白的方法，結(jié)果表明肺炎克雷伯菌質(zhì)譜圖中38 ku和36 ku處峰缺失，與SDS-PAGE上42 ku的OmpK36 ku和40 ku的OmpA條帶缺失相對(duì)應(yīng)；大腸埃希菌質(zhì)譜圖中38 ku、37 ku和35 ku處峰缺失，與SDS-PAGE上41 ku的OmpC、40 ku的OmpF和38 ku的OmpA條帶缺失相對(duì)應(yīng)［28］。該方法簡(jiǎn)化了操作流程，且分辨率較高，可用于細(xì)菌膜孔蛋白缺失的快速篩查。

表3 應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)革蘭陰性桿菌膜孔蛋白和外排泵相關(guān)蛋白質(zhì)

3 MALDI-TOF MS檢測(cè)外排泵系統(tǒng)

革蘭陰性桿菌的外排泵系統(tǒng)通過(guò)主動(dòng)外排多種藥物，形成了低水平和非特異的耐藥性。革蘭陰性桿菌最主要的外排泵系統(tǒng)為耐藥結(jié)節(jié)分化超家族（resistance nodulation cell division family，RND），它是一組跨越細(xì)菌內(nèi)膜和外膜的蛋白質(zhì)，由內(nèi)膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白、膜融合蛋白和外膜通道蛋白構(gòu)成三聚體。應(yīng)用質(zhì)譜技術(shù)聯(lián)合蛋白質(zhì)分離方法和生物信息學(xué)工具，不僅能檢測(cè)細(xì)菌外膜的膜孔蛋白，也能檢測(cè)細(xì)菌外排泵系統(tǒng)中的蛋白質(zhì)組分。

XU等［25］對(duì)提取的大腸埃希菌總蛋白進(jìn)行2-DE電泳，提純處理凝膠中蛋白質(zhì)的肽段后，應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)并檢索，結(jié)果顯示為外排泵系統(tǒng)中外膜通道蛋白TolC和YhiU，通過(guò)蛋白質(zhì)印跡法（Western blotting）驗(yàn)證耐氨芐西林大腸埃希菌TolC和YhiU的表達(dá)量增加。在銅綠假單胞菌蛋白質(zhì)組的研究中［26，30］，應(yīng)用MALDI-TOF MS能成功檢測(cè)到外排泵系統(tǒng)中膜融合蛋白MexA和外膜通道蛋白OprM，經(jīng)Western blotting證實(shí)MexA和OprM表達(dá)上調(diào)導(dǎo)致銅綠假單胞菌產(chǎn)生耐藥性。應(yīng)用MALDI-TOF MS檢測(cè)不同革蘭陰性桿菌的外排泵相關(guān)蛋白質(zhì)結(jié)果如表3所示［25-26，29-30］。

4 展望

MALDI-TOF MS具有自動(dòng)化、高通量、操作簡(jiǎn)便、樣本用量少和檢測(cè)準(zhǔn)確度高等特點(diǎn)。它將微生物檢測(cè)時(shí)間由以小時(shí)計(jì)算推進(jìn)到以分鐘計(jì)算，應(yīng)用范圍從微生物的快速鑒定擴(kuò)大到耐藥性檢測(cè)。隨著質(zhì)譜技術(shù)的不斷發(fā)展、操作流程的簡(jiǎn)化、微生物PMF和耐藥相關(guān)蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)庫(kù)的豐富和擴(kuò)展，我們相信臨床微生物實(shí)驗(yàn)室未來(lái)也將具備檢測(cè)分析細(xì)菌蛋白質(zhì)組的能力。基于微生物PMF和蛋白質(zhì)組圖譜的MALDI-TOF MS技術(shù)是微生物領(lǐng)域的一場(chǎng)革命，這一技術(shù)未來(lái)可應(yīng)用于細(xì)菌的分子流行病調(diào)查、細(xì)菌毒力因子和血藥濃度檢測(cè)，甚至可用來(lái)指導(dǎo)藥物分子靶點(diǎn)的篩選和新藥的設(shè)計(jì)，為患者提供個(gè)體化的治療方案，它將全面推進(jìn)微生物快速診斷與耐藥性檢測(cè)的發(fā)展。

［1］胡付品， 朱德妹， 汪復(fù)，等. 2013年中國(guó)CHINET細(xì)菌耐藥性監(jiān)測(cè)［J］. 中國(guó)感染與化療雜志， 2014，（ 5）： 365-374.

［2］WIESER A， SCHNEIDER L， JUNG J， et al. MALDI-TOF MS in microbiological diagnostics-identification of microorganisms and beyond（ mini review）［J］. Appl Microbiol Biotechnol，2012， 93（3）： 965-974.

［3］RUELLE V， El MOUALIJ B， ZORZI W， et al. Rapid identification of environmental bacterial strains by matrixassisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry［J］. Rapid Commun Mass Spectrom， 2004， 18 （18）： 2013-2019.

［4］HRABAK J， STUDENTOVA V， WALKOVA R， et al. Detection of NDM-1， VIM-1， KPC， OXA-48， and OXA-162 carbapenemases by matrix-assisted laser desorption ionizationtime of flight mass spectrometry［J］. J Clin Microbiol， 2012， 50 （7）： 2441-2443.

［5］SPARBIER K， SCHUBERT S， WELLER U， et al. Matrixassisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry-based functional assay for rapid detection of resistance against beta-lactam antibiotics［J］. J Clin Microbiol，2012， 50（3）： 927-937.

［6］KEMPF M， BAKOUR S， FLAUDROPS C， et al. Rapid detection of carbapenem resistance in Acinetobacter baumannii using matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry［J］. PLoS One， 2012， 7（2）： e31676.

［7］胡燕燕， 孫謙， 蔡加昌，等. 基質(zhì)輔助激光解析/電離飛行時(shí)間質(zhì)譜儀檢測(cè)KPC型碳青霉烯酶的研究［J］. 中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志， 2012， 32（6）： 561-565.

［8］GRANT DC， HELLEUR RJ. Surfactant-mediated matrixassisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry of small molecules［J］. Rapid Commun Mass Spectrom， 2007， 21（6）： 837-845.

［9］HRABAK J， WALKOVA R， STUDENTOVA V， et al. Carbapenemase activity detection by matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry［J］. J Clin Microbiol， 2011， 49（9）： 3222-3227.

［10］LEE W， CHUNG HS， LEE Y， et al. Comparison of matrixassisted laser desorption ionization-time-of-flight mass spectrometry assay with conventional methods for detection of IMP-6， VIM-2， NDM-1， SIM-1， KPC-1， OXA-23， and OXA-51 carbapenemase-producing Acinetobacter spp.， Pseudomonas aeruginosa， and Klebsiella pneumoniae［J］. Diagn Microbiol Infect Dis， 2013， 77（3）： 227-230.

［11］HRABAK J， CHUDACKOVA E， WALKOVA R. Matrixassisted laser desorption ionization-time of flight（ malditof） mass spectrometry for detection of antibiotic resistance mechanisms： from research to routine diagnosis［J］. Clin Microbiol Rev， 2013， 26（1）： 103-114.

［12］CARVALHAES CG， CAYO R， VISCONDE MF， et al. Detection of carbapenemase activity directly from blood culture vials using MALDI-TOF MS： a quick answer for the right decision［J］. J Antimicrob Chemother， 2014， 69（8）： 2132-2136.

［13］JUNG JS， POPP C， SPARBIER K， et al. Evaluation of MALDI-TOF MS for rapid detection of beta-lactam resistance in Enterobacteriaceae derived from blood cultures［J］. J Clin Microbiol， 2014，52（3）：924-930.

［14］KNOX J， JADHAV S， SEVIOR D， et al. Phenotypic detection of carbapenemase-producing Enterobacteriaceae by use of matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry and the Carba NP Test［J］. J Clin Microbiol， 2014，52（11）： 4075-4077.

［15］王利君， 范艷艷， 王玫，等. MALDI-TOF MS檢測(cè)產(chǎn)碳青霉烯酶腸桿菌科細(xì)菌的應(yīng)用價(jià)值［J］. 中華醫(yī)學(xué)雜志， 2013， 93 （26）： 2079-2081.

［16］王利君， 范艷艷， 王玫. 產(chǎn)OXA-23鮑曼不動(dòng)桿菌的基質(zhì)輔助激光解析電離飛行時(shí)間質(zhì)譜檢測(cè)研究［J］. 國(guó)際檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志，2013， 34（19）： 2587-2589.

［17］BURCKHARDT I， ZIMMERMANN S. Using matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry to detect carbapenem resistance within 1 to 2.5 hours［J］. J Clin Microbiol， 2011， 49（9）： 3321-3324.

［18］CAMARA JE， HAYS FA. Discrimination between wild-type and ampicillin-resistant Escherichia coli by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry［J］. Anal Bioanal Chem， 2007， 389（5）： 1633-1638.

［19］PAPAGIANNITSIS CC， KOTSAKIS SD， TUMA Z， et al. Identification of CMY-2-type cephalosporinases in clinical isolates of Enterobacteriaceae by MALDI-TOF MS［J］. Antimicrob Agents Chemother， 2014， 58（5）： 2952-2957.

［20］LAU AF， WANG H， WEINGARTEN RA， et al. A rapid matrix-assisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry-based method for single-plasmid tracking in an outbreak of carbapenem-resistant Enterobacteriaceae［J］. J Clin Microbiol， 2014， 52（8）： 2804-2812.

［21］PUSCH W， WURMBACH JH， THIELE H， et al. MALDITOF mass spectrometry-based SNP genotyping［J］. Pharmacogenomics， 2002， 3（4）： 537-548.

［22］STURENBURG E， STORM N， SOBOTTKA I， et al. Detection and genotyping of SHV beta-lactamase variants by mass spectrometry after base-specific cleavage of in vitro-generated RNA transcripts［J］. J Clin Microbiol， 2006， 44（3）： 909-915.

［23］IKRYANNIKOVA LN， SHITIKOV EA， ZHIVANKOVA DG，et al. A MALDI TOF MS-based minisequencing method for rapid detection of TEM-type extended-spectrum beta-lactamases in clinical strains of Enterobacteriaceae［J］. J Microbiol Methods，2008， 75（3）： 385-391.

［24］HINES HB. Microbial proteomics using mass spectrometry［J］. Methods Mol Biol， 2012， 881： 159-186.

［25］XU C， LIN X， REN H， et al. Analysis of outer membraneproteome of Escherichia coli related to resistance to ampicillin and tetracycline［J］. Proteomics， 2006， 6（2）： 462-473.

［26］PENG X， XU C， REN H， et al. Proteomic analysis of the sarcosine-insoluble outer membrane fraction of Pseudomonas aeruginosa responding to ampicilin， kanamycin， and tetracycline resistance［J］. J Proteome Res， 2005， 4（6）： 2257-2265.

［27］DUPONT M， PAGES J M， LAFITTE D， et al. Identification of an OprD homologue in Acinetobacter baumannii［J］. J Proteome Res， 2005， 4（6）： 2386-2390.

［28］胡燕燕. 耐碳青霉烯革蘭陰性桿菌分子流行病學(xué)及MALDITOF MS在碳青霉烯耐藥決定子快速檢測(cè)中的應(yīng)用研究［D］.浙江大學(xué)， 2014.

［29］DOS SANTOS KV， DINIZ CG， VELOSO LDE C， et al. Proteomic analysis of Escherichia coli with experimentally induced resistance to piperacillin/tazobactam［J］. Res Microbiol，2010， 161（4）： 268-275.

［30］章喻軍， 王三英. 銅綠假單胞菌外膜亞蛋白質(zhì)組圖譜的建立［J］. 廈門(mén)大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 2008，47（1）： 111-115.

Matrix-assisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometry for detection of β-lactam resistance in gram-negative bacilli

LI Yuanrui， YU Jing， LIU Ying. （Department of Laboratory Medicine， Xinhua Hospital， Shanghai Jiao Tong University School of Medicine， Shanghai 200092， China）

R378.2

A

1009-7708（2016）02-0229-06

10.16718/j.1009-7708.2016.02.019

2015-06-18

2015-07-15

上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬新華醫(yī)院檢驗(yàn)科臨床微生物室，上海 200092。

李媛睿（1990—），女，碩士研究生，主要從事細(xì)菌耐藥機(jī)制研究。

劉瑛，E-mail： lywjw0129@163.com。