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      基于顯微操作的高效細(xì)胞電融合芯片的設(shè)計(jì)

      2016-09-14 08:03:06舒承松陳瑞華汝長(zhǎng)海
      化學(xué)與生物工程 2016年8期
      關(guān)鍵詞:移液管蘇州大學(xué)微孔

      舒承松,陳瑞華,汝長(zhǎng)海,2

      (1.蘇州大學(xué) 江蘇省先進(jìn)機(jī)器人技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 蘇州 215123;2.蘇州大學(xué) 蘇州納米科技協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇 蘇州 215123;3.蘇州大學(xué)附屬第一醫(yī)院臨床免疫研究所,江蘇 蘇州 215006)

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      基于顯微操作的高效細(xì)胞電融合芯片的設(shè)計(jì)

      舒承松1,陳瑞華3,汝長(zhǎng)海1,2

      (1.蘇州大學(xué) 江蘇省先進(jìn)機(jī)器人技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 蘇州 215123;2.蘇州大學(xué) 蘇州納米科技協(xié)同創(chuàng)新中心,江蘇 蘇州 215123;3.蘇州大學(xué)附屬第一醫(yī)院臨床免疫研究所,江蘇 蘇州 215006)

      設(shè)計(jì)了一款基于顯微操作的高效細(xì)胞電融合芯片,并針對(duì)該電融合芯片提出了一種快速、準(zhǔn)確、靈活的細(xì)胞配對(duì)融合操作方法。芯片使用ITO玻璃作為基底,在ITO上覆蓋一層2 μm厚的正光刻膠,并利用光刻加工技術(shù)在光刻膠上加工出直徑25 μm的微孔電極。設(shè)計(jì)了不同電極間距的微孔電極陣列,與鎢針電極構(gòu)成電融合電極對(duì)進(jìn)行了細(xì)胞電融合實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明,電極間距為10 mm的微孔電極陣列能夠?qū)崿F(xiàn)高效的細(xì)胞配對(duì),在間距為0.5 mm的微孔電極陣列上未觀測(cè)到細(xì)胞吸附現(xiàn)象。

      顯微操作;配對(duì)方法;電融合芯片;光刻;微孔電極

      細(xì)胞電融合是一種發(fā)展迅速的細(xì)胞工程技術(shù),被廣泛應(yīng)用于植物雜交[1]、抗腫瘤疫苗制備[2]和單克隆抗體制備[3]等領(lǐng)域。快速準(zhǔn)確地實(shí)現(xiàn)待融合細(xì)胞的配對(duì)一直是細(xì)胞電融合的研究熱點(diǎn)。國(guó)內(nèi)外研究機(jī)構(gòu)對(duì)目標(biāo)細(xì)胞配對(duì)進(jìn)行了大量研究,并利用現(xiàn)代微加工技術(shù)設(shè)計(jì)了很多高效的電融合芯片。

      麻省理工研究團(tuán)隊(duì)設(shè)計(jì)了雙面凹形的微陷阱陣列,通過控制融合芯片內(nèi)部的液體流動(dòng),使體積相近的兩種細(xì)胞準(zhǔn)確快速地配對(duì)[4],后續(xù)通過改進(jìn)陷阱的結(jié)構(gòu)使體積相差較大的細(xì)胞也能排隊(duì)融合[5-6]。重慶大學(xué)研究團(tuán)隊(duì)一直致力于高通量微電極陣列芯片的研究,通過優(yōu)化電極的形狀與位置,不斷提高細(xì)胞電融合芯片的精度與效率[7-9]。這些芯片主要針對(duì)單克隆抗體或腫瘤疫苗制備等需進(jìn)行大量細(xì)胞配對(duì)的場(chǎng)合;若細(xì)胞數(shù)量較少,易造成細(xì)胞丟失而導(dǎo)致細(xì)胞配對(duì)率低。如牛的體細(xì)胞核移植時(shí),需將供體細(xì)胞與去核卵母細(xì)胞電融合。由于兩種細(xì)胞體積相差較大,使用目前的電融合芯片難以準(zhǔn)確配對(duì)。目前常選擇人工操作微電極移動(dòng)細(xì)胞進(jìn)行配對(duì),操作復(fù)雜,實(shí)驗(yàn)穩(wěn)定性較差。

      Clow等[10]針對(duì)這種情況,利用光刻膠覆蓋一對(duì)交錯(cuò)的鈦電極,設(shè)計(jì)了一款獨(dú)特的微孔電極陣列芯片,將以前需人工操作的微電極固定,通過移液管將細(xì)胞搬運(yùn)到電極附近,再使用介電泳力將細(xì)胞配對(duì)。這款芯片的優(yōu)點(diǎn)是操作簡(jiǎn)單、易實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化,缺點(diǎn)是針對(duì)不同體積的細(xì)胞需要設(shè)計(jì)不同間距的電極,不夠靈活。

      相比于一對(duì)固定電極或者一對(duì)移動(dòng)電極,一側(cè)固定電極、一側(cè)移動(dòng)電極的設(shè)計(jì)能夠很好地綜合兩者的優(yōu)點(diǎn),并且在最大程度上避免兩者的缺點(diǎn)。作者將自制的微孔電極陣列芯片與一根尖端約20μm的鎢針電極構(gòu)成一對(duì)融合電極,進(jìn)行了細(xì)胞電融合實(shí)驗(yàn),并探討了不同間距的微孔電極陣列對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響。

      1 細(xì)胞電融合原理

      細(xì)胞電融合過程分為3步:第一步,細(xì)胞配對(duì),使用物理或者化學(xué)方法使待融合細(xì)胞緊密接觸,并沿電場(chǎng)線方向排列;第二步,細(xì)胞膜可逆性電穿孔,對(duì)待融合細(xì)胞施加高壓電脈沖,使得細(xì)胞接觸部分的細(xì)胞膜產(chǎn)生可逆性穿孔;第三步,細(xì)胞膜融合,繼續(xù)保持細(xì)胞間的緊密接觸直到細(xì)胞完成膜融合。細(xì)胞電融合過程如圖1所示。

      細(xì)胞配對(duì)細(xì)胞膜可逆性電穿孔細(xì)胞膜融合

      圖1細(xì)胞電融合過程示意圖

      Fig.1Schematic images of cell electrofusion process

      由圖1可知,在加入正弦交變電場(chǎng)后,電場(chǎng)中的細(xì)胞被極化形成電偶極子,并在介電泳力的作用下在電極上排隊(duì)(圖1a);細(xì)胞膜在高壓電脈沖下出現(xiàn)可逆性電穿孔,電解液中溶質(zhì)進(jìn)入細(xì)胞使得細(xì)胞膜膨脹(圖1b);繼續(xù)保持正弦信號(hào)使得細(xì)胞依然緊密接觸直至細(xì)胞完成膜融合(圖1c)。

      2 芯片的設(shè)計(jì)與制造方法

      實(shí)驗(yàn)所用雜交瘤細(xì)胞直徑在18~25 μm之間,因此將微孔電極直徑設(shè)計(jì)為25 μm。

      在最初的電極設(shè)計(jì)中,微孔電極陣列的電極間距為0.5 mm,實(shí)驗(yàn)時(shí)使用1滴融合液將電極全部覆蓋,但在實(shí)驗(yàn)過程中未觀察到微孔電極吸附細(xì)胞的現(xiàn)象,初步推測(cè)可能是多個(gè)電極在融合液滴中產(chǎn)生的電場(chǎng)相互干擾,減小了細(xì)胞受到的介電泳力。

      因此,將電極間距改為10 mm,實(shí)驗(yàn)中每個(gè)微孔電極用1個(gè)微滴單獨(dú)覆蓋,并以0.5 mm間距的電極陣列作為對(duì)照。

      圖2為設(shè)計(jì)的掩模板(40 mm×40 mm)。

      a.0.5 mm間距的電極陣列 b.10 mm間距的電極陣列 c.用于接出導(dǎo)線,連接融合信號(hào)發(fā)生器 d.無電極,在實(shí)驗(yàn)時(shí)放置待操作的細(xì)胞

      在鍍有氧化銦錫(ITO)薄膜(厚度約180 nm)的玻璃上旋涂一層厚度約為2 μm的正光刻膠RZJ-390PG。在100 ℃前烘90 s后蓋上掩模板曝光5 s;120 ℃后烘120 s后,放入顯影液中60 s。顯影完畢后用去離子水清洗芯片,在顯微鏡下觀察芯片是否加工完成。加工完成的電極芯片如圖3所示。

      電極芯片實(shí)物圖0.5 mm間距的電極陣列

      圖3電極芯片

      Fig.3Electrode chip

      3 實(shí)驗(yàn)

      3.1材料與儀器

      雜交瘤細(xì)胞 pd1-612由蘇州大學(xué)附屬第一醫(yī)院提供;電融合緩沖液(溶液成分0.3 mol·L-1甘露醇,0.1 mmol MgCl2,0.1 mmol CaCl2,37 ℃時(shí)電導(dǎo)率為80 μS·cm-1)。

      TE2000型倒置顯微鏡,Nikon公司;定位運(yùn)動(dòng)平臺(tái),Prior公司;MP285型顯微操作儀,Sutter公司;A601f型CCD攝像機(jī),Basler公司; PHD ULTRATM4400型微量注射泵,Harvard公司;恒溫?zé)崤_(tái),TOKAT HIT公司;自制電融合儀。

      3.2實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備

      將自制30 μm內(nèi)徑的玻璃移液管與微量注射泵連接,安裝在左操作手上,對(duì)細(xì)胞進(jìn)行吸吐與搬運(yùn)操作。將鎢絲尖端磨至20 μm,裝在右操作手上并與自制電融合儀相連。自制的電融合芯片放置在定位運(yùn)動(dòng)平臺(tái)上,并與自制電融合儀連接。細(xì)胞電融合顯微操作系統(tǒng)如圖4所示。

      在細(xì)胞配對(duì)與電融合實(shí)驗(yàn)中,由于細(xì)胞培養(yǎng)液中離子濃度很高,在外加電場(chǎng)下會(huì)產(chǎn)生明顯的焦耳熱現(xiàn)象,使液體產(chǎn)生對(duì)流影響細(xì)胞排隊(duì),同時(shí)較高的離子濃度也會(huì)降低溶液中的電場(chǎng)梯度,影響細(xì)胞電穿孔效果。因此實(shí)驗(yàn)開始前需將細(xì)胞離心,且用37 ℃的電融合緩沖液替換細(xì)胞培養(yǎng)液。

      3.3細(xì)胞配對(duì)實(shí)驗(yàn)

      (1)控制平臺(tái)移動(dòng),在顯微鏡下找到電融合芯片上微孔電極的位置并記錄。

      圖4 細(xì)胞電融合顯微操作系統(tǒng)

      (2)用移液槍在微孔電極上方滴加不含細(xì)胞的電融合液。用100 μL溶液覆蓋0.5 mm間距電極陣列的整個(gè)區(qū)域;用4滴50 μL的溶液分別覆蓋10 mm間距電極陣列中的4個(gè)微孔電極。

      (3)用移液槍吸取適量含有細(xì)胞的電融合液加入到芯片上無電極區(qū)域。使用左操作手與微量注射泵控制玻璃移液管吸取少量細(xì)胞。

      (4)將平臺(tái)移動(dòng)到微孔電極所在區(qū)域,控制右操作手帶動(dòng)鎢針電極靠近微孔電極,并打開自制電融合儀,接通細(xì)胞配對(duì)信號(hào)(-2~2 V,1 MHz,正弦波)。

      (5)控制左側(cè)玻璃移液管在微孔電極附近吐出一個(gè)細(xì)胞。細(xì)胞將在重力與介電泳力的作用下吸附在底部微孔電極上。

      (6)控制左側(cè)玻璃移液管吐出第二個(gè)細(xì)胞,這次細(xì)胞吐出的位置應(yīng)稍稍偏右,有助于細(xì)胞與上一個(gè)細(xì)胞形成細(xì)胞串。

      (7)待細(xì)胞成串排列后,加入細(xì)胞電穿孔信號(hào),完成電穿孔后,保持細(xì)胞配對(duì)信號(hào)30 s,等待細(xì)胞膜融合。

      (8)待細(xì)胞完成膜融合后,移動(dòng)平臺(tái)到另一個(gè)微孔電極處,重復(fù)步驟(4)~(7)。

      4 結(jié)果與討論

      圖5為電極間距為0.5 mm的電極陣列中細(xì)胞的運(yùn)動(dòng)過程。

      圖5a中,細(xì)胞位于微孔電極附近,但此時(shí)細(xì)胞并未在介電泳力的作用下向微孔電極移動(dòng)。圖5b中,控制右側(cè)鎢針電極靠近微孔電極后,細(xì)胞在介電泳力的作用下吸附到鎢針電極上。

      圖6為電極間距為10 mm的電極陣列中細(xì)胞的配對(duì)過程。

      圖6a中,移液管吐出的細(xì)胞在介電泳力與重力的作用下被微孔電極吸附。圖6b中,移液管吐出的兩個(gè)細(xì)胞成串排列。

      細(xì)胞位于微孔電極附近     細(xì)胞吸附到鎢針電極上

      單個(gè)細(xì)胞吸附兩個(gè)細(xì)胞成串配對(duì)

      圖6細(xì)胞配對(duì)過程

      Fig.6Cell paring process

      結(jié)果表明,采用0.5 mm間距的電極陣列進(jìn)行細(xì)胞配對(duì)實(shí)驗(yàn)時(shí),由于一個(gè)微滴中有多個(gè)電極的存在,導(dǎo)致細(xì)胞受到的介電泳力減弱,細(xì)胞由于細(xì)胞膜粘附力的作用,附著在芯片上,沒有發(fā)生移動(dòng)。增大排隊(duì)信號(hào)幅值或減小電極間距后,細(xì)胞向右側(cè)鎢針電極移動(dòng)。

      當(dāng)電極間距為10 mm時(shí),一滴50 μL的微滴僅覆蓋了一個(gè)微孔電極,微滴中的電場(chǎng)分布情況簡(jiǎn)單,可以簡(jiǎn)化成兩根針尖電極對(duì)細(xì)胞進(jìn)行作用。在外加峰峰值為2 V、頻率為1 MHz的正弦排隊(duì)信號(hào)后,微孔邊緣周邊50 μm內(nèi)的腫瘤細(xì)胞能以20 μm·s-1的速度向電極中心移動(dòng)。

      5 結(jié)論

      所有的細(xì)胞核移植過程中都需要使待融合的細(xì)胞緊密接觸,并且盡量使細(xì)胞對(duì)的長(zhǎng)軸與電場(chǎng)線方向平行。由操作員手動(dòng)調(diào)整待融合細(xì)胞的位置的方法難度較大,并且容易給實(shí)驗(yàn)帶來干擾。

      針對(duì)這種需要對(duì)少量細(xì)胞進(jìn)行快速準(zhǔn)確配對(duì)的細(xì)胞融合實(shí)驗(yàn),設(shè)計(jì)了一種新的細(xì)胞電融合芯片,基于該芯片提出了一種細(xì)胞電融合顯微操作方法。細(xì)胞配對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,10 mm間距的微孔電極陣列能夠高效地實(shí)現(xiàn)細(xì)胞排隊(duì)。

      該芯片制作簡(jiǎn)單、操作容易、適用于多種直徑的細(xì)胞。與同領(lǐng)域的其它細(xì)胞電融合顯微操作方法相比,本方法對(duì)人工操作精度的要求更低,更容易實(shí)現(xiàn)細(xì)胞配對(duì)的自動(dòng)化。

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      Design of an Efficient Cell Electrofusion Chip Based on Micromanipulation

      SHU Cheng-song1,CHEN Rui-hua3,RU Chang-hai1,2

      (1.JiangsuProvincialKeyLaboratoryofAdvancedRobotics,SoochowUniversity,Suzhou215123,China;2.CollaborativeInnovationCenterofSuzhouNanoScienceandTechnology,SoochowUniversity,Suzhou215123,China;3.InstituteofClinicalImmunology,TheFirstAffiliatedHospitalofSoochowUniversity,Suzhou215006,China)

      Anefficientcellelectrofusionchipbasedonmicromanipulationwasdesigned.Afast,accurateandflexiblecellpairingmethodwasdevelopedforthiselectrofusionchip.Thechipprototypewasfabricatedonanindiumtinoxide(ITO)substratethatwassubsequentlycoveredbyapositivephotoresistfilmwiththethicknessof2μm.Microporeelectrodesmeasuring25μmindiameterwerefabricatedonthefilmbylithography.Microporeelectrodearrayswithdifferentspacingsweremanufacturedandpairedwithtungstenneedleforcellelectrofusionexperiment.Resultsshowedthatmicroporeelectrodearraywitha10mmspacingcouldpairthecellefficiently,howevercellsalignonthemicroporeelectrodearraywith0.5mmspacingwasnotobserved.

      micromanipulation;pairingmethod;electrofusionchip;lithography;microporeelectrode

      10.3969/j.issn.1672-5425.2016.08.015

      國(guó)家重大科研儀器設(shè)備研制專項(xiàng)(61327811),國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(61174087,61233010),江蘇省杰出青年基金資助項(xiàng)目(BK2012005)

      2016-03-31

      舒承松(1990-),男,湖北武漢人,碩士研究生,研究方向:顯微操作系統(tǒng),E-mail:sudamugong@163.com;通訊作者:汝長(zhǎng)海,教授,E-mail:rzh@suda.edu.cn。

      Q 813.2

      A

      1672-5425(2016)08-0063-04

      舒承松,陳瑞華,汝長(zhǎng)海.基于顯微操作的高效細(xì)胞電融合芯片的設(shè)計(jì)[J].化學(xué)與生物工程,2016,33(8):63-66.

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