劉艷霞, 李 想, 蔡劉體, 張 恒, 石俊雄
(貴州省煙草科學(xué)研究院,貴陽(yáng) 550000)
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煙草根系分泌物酚酸類物質(zhì)的鑒定及其對(duì)根際微生物的影響
劉艷霞, 李 想, 蔡劉體, 張 恒, 石俊雄*
(貴州省煙草科學(xué)研究院,貴陽(yáng) 550000)
【目的】煙草連作已導(dǎo)致土傳病害發(fā)生、煙株生長(zhǎng)受抑制、產(chǎn)量下降和品質(zhì)惡化等問(wèn)題。煙株對(duì)自身及土壤微生物產(chǎn)生的化感作用,是煙草產(chǎn)生連作障礙的一個(gè)重要原因,其中化感物質(zhì)中的根系分泌物是煙株與土壤微生物間相互作用的重要物質(zhì),探索煙草根系分泌物對(duì)根際微生物生長(zhǎng)的影響是生物防控?zé)煵萸嗫莶〉睦碚撘罁?jù)?!痉椒ā勘疚睦贸咝б合嗌V串聯(lián)四級(jí)桿飛行時(shí)間質(zhì)譜(UPLC-Q-TOF/MS)技術(shù),分離、鑒定煙草根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)的種類和含量; 通過(guò)添加外源酚酸類物質(zhì),研究在液體培養(yǎng)基中煙草根系分泌物中的主要酚酸類物質(zhì)對(duì)病原菌及拮抗菌的影響,并在土壤中添加鑒定出的主要酚酸類物質(zhì); 通過(guò)土壤培育試驗(yàn),研究其對(duì)土壤微生物多樣性和數(shù)量變化,特別是對(duì)煙草青枯病菌及其拮抗菌生長(zhǎng)的影響?!窘Y(jié)果】1)煙草根系分泌物粗提物對(duì)病原菌(茄科勞爾氏菌)生長(zhǎng)的促進(jìn)率為16.8%,對(duì)拮抗菌(短短芽孢桿菌)的生長(zhǎng)抑制率達(dá)到29.4%; 2)UPLC-Q-TOF/MS檢測(cè)根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)為苯甲酸和3-苯丙酸,含量分別為0.25μg/g干根重和1.15μg/g干根重; 3)液體培養(yǎng)外源添加低濃度的苯甲酸(≤ 2μg/L)和3-苯丙酸(≤ 3μg/L)促進(jìn)病原菌和拮抗菌的生長(zhǎng); 4μg/L的苯甲酸對(duì)病原菌生長(zhǎng)抑制作用不顯著,對(duì)拮抗菌生長(zhǎng)的抑制率達(dá)到90.2%,6μg/L的 3-苯丙酸對(duì)病原菌的生長(zhǎng)具有促進(jìn)作用,對(duì)拮抗菌的生長(zhǎng)抑制率達(dá)到81.1%,外源高濃度苯甲酸(≥4μg/L)和3-苯丙酸(≥ 7μg/L)抑制病原菌與拮抗菌的成長(zhǎng); 4)土壤中添加3μg/kg土的苯甲酸時(shí),土壤中病原菌的數(shù)量增加12.3%,而拮抗菌的數(shù)量減少21.0%,土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量分別降低37.5%,41.9%和55.6%; 3-苯丙酸濃度達(dá)到8μg/kg土?xí)r,拮抗菌生長(zhǎng)量減少14.5%,對(duì)病原菌沒(méi)有顯著影響,土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量分別降低69.9%,57.2%和80.7%; 5)土壤添加4μg/kg的苯甲酸和7μg/kg的3-苯丙酸后,土壤微生物Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)、McIntosh指數(shù)顯著下降,分別僅為對(duì)照的57.7%、94.1%、88.1%和97.6% 73.3%、80.0%。【結(jié)論】煙草根系分泌物粗提物促進(jìn)病原菌生長(zhǎng)抑制拮抗菌生長(zhǎng),根系分泌物中酚酸類物質(zhì)主要為苯甲酸和3-苯丙酸,液體培養(yǎng)中4μg/L的苯甲酸或6μg/L的 3-苯丙酸濃度是對(duì)病原菌生長(zhǎng)抑制不明顯但顯著抑制拮抗菌生長(zhǎng)的分界點(diǎn),土壤外源添加3μg/kg的苯甲酸或8μg/kg的3-苯丙酸時(shí),是土壤增加病原菌減少拮抗菌數(shù)量的分界點(diǎn),同時(shí)土壤微生物功能多樣性顯著下降,病原菌對(duì)根系分泌物中苯甲酸和3-苯丙酸的利用優(yōu)于拮抗菌,這也是煙草長(zhǎng)期連作引起青枯病暴發(fā)流行的機(jī)理之一。
煙草根系分泌物; 病原菌; 拮抗菌; 根際微生物; 土壤微生物群落功能多樣性
soilmicrobialfunctionaldiversity
煙草作物的氣候性較強(qiáng),對(duì)地理環(huán)境和栽培條件要求較高,因此煙草種植有明顯的地域性特點(diǎn),在貴州省甚至全國(guó)煙葉生產(chǎn)中,連作現(xiàn)象非常普遍。單一作物連作導(dǎo)致根系分泌物在土壤中不斷積累,從而對(duì)作物和土壤微生物產(chǎn)生化感作用[1]。酚酸類物質(zhì)是根系分泌物中非常重要的化感物質(zhì),對(duì)植物的自毒作用也是導(dǎo)致連作障礙發(fā)生的重要因素[2]。前期研究通過(guò)GC、HPLC、GC/MS等分離鑒定手段己經(jīng)得到了多種酚類化感物質(zhì),如氫氰酸、苯甲酸、肉桂酸和皂角昔等物質(zhì)都對(duì)土壤微生物生長(zhǎng)起抑制作用或促進(jìn)病原菌的生長(zhǎng)繁殖[3],從而誘導(dǎo)土傳性病害的發(fā)生。本研究表明,長(zhǎng)期連作一種作物會(huì)導(dǎo)致根際形成單一的土壤環(huán)境,根系分泌物作為土壤中的碳、氮物質(zhì),為病原菌生長(zhǎng)繁殖提供營(yíng)養(yǎng),同時(shí)也抑制了一些根際有益微生物的生長(zhǎng),從而在土壤中形成一種不平衡的微生態(tài)環(huán)境,導(dǎo)致土傳病害的暴發(fā)流行[4-5]。近年來(lái),對(duì)于根系分泌物的研究主要側(cè)重在小麥[6]、水稻[7]、西瓜[8]和黃瓜[9]等作物上,而對(duì)煙草根系分泌物相關(guān)研究較少。且現(xiàn)有研究主要集中在煙草根系粗提物的極性分離,以及不同極性的根系粗提物對(duì)煙苗生長(zhǎng)、土壤酶活性等的影響[10]。
本研究通過(guò)鑒定、分析煙草根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)種類和含量,研究根系分泌物對(duì)煙草青枯病菌、拮抗菌生長(zhǎng)及根際微生物多樣性的影響,旨在探索根系分泌物與煙草連作后造成的煙草青枯病害暴發(fā)的相關(guān)性。
1.1煙草青枯病菌茄科勞爾氏菌及其拮抗菌的分離、篩選與鑒定
圖1 共培養(yǎng)法觀測(cè)Ralstonia solanacearum(左)、拮抗菌Brevibacillus brevis(右)的菌落形態(tài)Fig.1 The colony morphology of R. solanacearum (left) and the antagonist (right) tested by co-cultureing R. solanacearum.
在培育45d后,先用自來(lái)水沖洗煙苗根系5次,再用去離子水沖洗5次。煙草根系浸泡在6L超純水中于恒溫恒濕人工氣候室中培育36h,期間用電磁泵向水中補(bǔ)充氧氣以維持煙株正常生長(zhǎng)。根系分泌物收集液經(jīng)0.45μm微孔過(guò)濾膜過(guò)濾后立即凍干濃縮并保存于-20℃條件下。根系分泌物凍干粉末溶解于滅菌去離子水中,分別配成0.01g/mL用于生物測(cè)定及1g/mL用于成分分析??偺己涂偟坑蒃lementar元素分析儀測(cè)定(VarioELcube,德國(guó)),經(jīng)測(cè)定,根系分泌物母液粗提物中總碳含量為38.94%,總氮含量為4.62%。
1.3煙草根系分泌物對(duì)病原菌與拮抗菌生長(zhǎng)的影響
茄科勞爾氏菌在改良的Kelman’sTTC瓊脂培養(yǎng)基(10g葡萄糖、5g蛋白胨、3g牛肉浸粉和0.5g酵母粉,定容至1L水中,pH調(diào)節(jié)至7.0)上培養(yǎng)[19],篩選到的拮抗菌在牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基上培養(yǎng)[20]。每種微生物各設(shè)置兩個(gè)處理,共4個(gè)處理: 1)茄科勞爾氏菌在改良后的Kelman’sTTC培養(yǎng)基上培養(yǎng)(CKR); 2)茄科勞爾氏菌在1 ∶1 (v∶v) 改良后的Kelman’sTTC培養(yǎng)基和0.01g/mL,rootDW根系分泌物溶液中培養(yǎng)(RR); 3)拮抗菌短短芽孢桿菌在牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基上培養(yǎng)(CKB); 4)拮抗菌短短芽孢桿菌在1 ∶1 (v∶v) 牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基和0.01g/mL,rootDW根系分泌物溶液中培養(yǎng)(RB)。所有處理于30℃、170r/m培養(yǎng)48h。茄科勞爾氏菌與拮抗菌的生長(zhǎng)速率通過(guò)分光光度計(jì)對(duì)OD600進(jìn)行測(cè)定。
根系分泌物對(duì)微生物生長(zhǎng)速率的影響=[(ROD600-CKOD600)/CKOD600]×100%式中: ROD600表示在1 ∶1 (v∶v)培養(yǎng)基和0.01g/mL,rootDW根系分泌物溶液中培養(yǎng)后微生物OD600值; CKOD600表示微生物直接在培養(yǎng)基中培養(yǎng)后的OD600值。
1.4UPLC-Q-TOF/MS分析酚酸標(biāo)準(zhǔn)品和根系分泌物中的酚酸類物質(zhì)
五倍子酸、原兒茶酸、2,5-二羥基苯甲酸、4-羥基苯甲酸和4-羥基苯甲醛從AlfaAesar公司購(gòu)買 (WardHill,MA,USA),香草酸、對(duì)香豆酸、紫丁香酸、阿魏酸、苯甲酸、3-苯丙酸和肉桂酸購(gòu)自Sigma-Aldrich公司(Steinem,Germany)。通過(guò)對(duì)比標(biāo)準(zhǔn)品和根系分泌物中主要物質(zhì)的出峰時(shí)間和峰面積鑒定根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)及其含量[21],并通過(guò)分析質(zhì)譜圖,確定各組分的分子組成。前期用半制備高效液相色譜儀(Aglient1200, 德國(guó))分離根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì),分離度較好(圖2)。兩個(gè)主要色譜峰出現(xiàn)在保留時(shí)間60min和60.5min,與標(biāo)準(zhǔn)品峰圖比對(duì)后,初步確定這兩個(gè)峰分別為苯甲酸和3-苯丙酸(圖2)。
圖2 酚酸標(biāo)準(zhǔn)品(左)和煙草根系分泌物(右)液相色譜圖Fig.2. HPLC chromatograms of standard phenolic acids (left) and tobacco root exudates (right)
[注(Note): 1—五倍子酸Gallicacid; 2—原兒茶酸Protocatechuicacid; 3—2,5-二羥基苯甲酸2, 5-dihydroxybenzoicacid; 4—4-羥基苯甲酸4-hydroxybenzoicacid; 5—4-羥基苯甲醛4-hydroxybenzaldehyde; 6—香草酸Vanillicacid; 7—對(duì)香豆酸P-coumaricacid; 8—紫丁香酸Syringicacid; 9—阿魏酸Ferulicacid; 10—苯甲酸Benzoicacid; 11—3-苯丙酸3-phenylpropanoicacid; 12—肉桂酸Cinnamicacid.]
1.5外源添加酚酸類物質(zhì)對(duì)病原菌和拮抗菌生長(zhǎng)的影響
將UPLC-Q-TOF/MS中分離、鑒定的主要酚酸類物質(zhì)以外源添加的方式研究其對(duì)煙草青枯病菌和拮抗菌生長(zhǎng)的影響。15μg苯甲酸溶解于60℃滅菌后的去離子水中,作為母液1。0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0和10.0μg/L濃度的苯甲酸溶液分別由母液1稀釋獲得; 0.3mg3-苯丙酸溶于10mL滅菌后去離子水中,作為母液2。0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0和10.0μg/L濃度的3-苯丙酸分別由母液2稀釋獲得。研究不同濃度的苯甲酸溶液和3-苯丙酸溶液對(duì)青枯病病原菌和拮抗菌生長(zhǎng)的影響方法同上。每處理重復(fù)5次。
1.6添加外源酚酸類物質(zhì)對(duì)土壤病原菌和拮抗菌數(shù)量的影響
從青枯病發(fā)病嚴(yán)重的大田采集土壤并接種拮抗菌,在貴州省煙草科學(xué)研究院實(shí)驗(yàn)室中進(jìn)行土壤培育實(shí)驗(yàn)。將分離、鑒定的根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)以外源添加的方式施加于土壤中,苯甲酸濃度調(diào)整至3、4和5μg/kg土,3-苯丙酸濃度調(diào)整至6、7和8μg/kg土,向土壤中接種滅菌去離子水為對(duì)照,每處理5次重復(fù)。將土壤置于恒溫培養(yǎng)箱中在28℃和60% 相對(duì)濕度下培養(yǎng)3d。用熒光定量PCR法測(cè)定土壤中病原菌和拮抗菌的數(shù)量[14]。
1.7添加外源酚酸類物質(zhì)對(duì)土壤根際微生物的影響
根際土壤微生物功能多樣性用BiologEcoPlate系統(tǒng) (BiologInc.HaywardCal.USA)通過(guò)比較31種碳源利用情況測(cè)定[22]。土壤懸液在4℃、3000×g轉(zhuǎn)速下離心5min,然后用0.85%的NaCl溶液稀釋100倍。土壤稀釋液接種于EcoPlates,在Biolog恒溫(25℃)培養(yǎng)箱中暗培養(yǎng)72h。EcoPlates上每孔顏色變化度為OD值與對(duì)照OD值之差[23]。微生物活性用微孔板平均顏色變化度(AWCD)值表示,Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)和McIntosh指數(shù)表征土壤微生物功能多樣性。
ShannonIndex=-∑PilnPi
式中,Pi=Ai/Atotal;ni=Ai;N=Atotal;A代表590nm處吸光度。
1.8數(shù)據(jù)處理
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用MicrosoftExcel2003進(jìn)行處理,顯著性分析采用SPSSBaseVer.13.0統(tǒng)計(jì)軟件 (SPSS,IL,Chicago,USA),LSD、Duncan新復(fù)極差法進(jìn)行多重比較(P≤0.05)。
2.1煙草根系分泌物粗提物對(duì)病原菌與拮抗菌生長(zhǎng)的影響
根系分泌物溶液能夠顯著促進(jìn)病原菌(茄科勞爾氏菌)的生長(zhǎng),同時(shí)對(duì)拮抗菌(短短芽孢桿菌)生長(zhǎng)具有抑制作用。從表1可以看出,與對(duì)照相比,添加根系分泌物母液粗提物后促進(jìn)了病原菌生長(zhǎng),增幅達(dá)到16.8%,對(duì)拮抗菌的生長(zhǎng)抑制率達(dá)到29.4%。2.2根系分泌物中主要酚酸類物質(zhì)鑒定與含量測(cè)定
目前根據(jù)酚酸的峰面積,只鑒定出兩種含量較高的酚酸類物質(zhì),其他峰有待于進(jìn)一步鑒定。在酚酸標(biāo)準(zhǔn)品液相色譜圖中,苯甲酸和3-苯丙酸的出峰時(shí)間分別為10.11min和12.92min,通過(guò)對(duì)比根系分泌物和酚酸標(biāo)準(zhǔn)品液相色譜圖的出峰時(shí)間,在根系分泌物UPLC色譜圖中10.10min和12.92min處分別為苯甲酸和3-苯丙酸(圖3)。從表2可以看出,在負(fù)離子模式下,從根系分泌物中分離鑒定出的兩種主要物質(zhì)m/z分別為121.0289和149.0599,與理論值分別相差1.0和4.0ppm,驗(yàn)證兩種物質(zhì)分別為苯甲酸和3-苯丙酸。經(jīng)過(guò)UPLC峰面積對(duì)比,苯甲酸在煙草根系分泌物中的含量為0.25μg/g干根重,3-苯丙酸在煙草根系分泌物中的含量為1.15μg/g干根重。
表1 煙草根系分泌物對(duì)病原菌和拮抗菌生長(zhǎng)的影響
圖3 酚酸標(biāo)準(zhǔn)品(上)和煙草根系分泌物(下)UPLC色譜圖Fig.3 UPLC of standard phenolic acids (upper) and substances in tobacco root exudates (lower)
峰號(hào)PeakNo.負(fù)離子模式Negativeionmode檢測(cè)值(m/z)Obs.mass化學(xué)式Chemicalformula理論值(m/z)Theor.massΔm(ppm)鑒定化合物Tentativeassignment1149.0599C9H10O2149.06034.03-phenylpropanoicacid2121.0289C7H6O2121.02901.0Benzoicacid
2.3添加外源苯甲酸和3-苯丙酸對(duì)液體培養(yǎng)病原菌和拮抗菌的影響
當(dāng)外源添加苯甲酸濃度≤3μg/L時(shí),苯甲酸能促進(jìn)病原菌(茄科勞爾氏菌)的生長(zhǎng),分別比對(duì)照處理增加了5.9%(1μg/L)、5.2%(2μg/L)和2.6%(3μg/L); 外源添加4μg/L濃度苯甲酸時(shí),病原菌濃度與對(duì)照處理之間無(wú)顯著差異; 超過(guò)5μg/L濃度苯甲酸時(shí),病原菌生長(zhǎng)受到明顯抑制(表3); 當(dāng)外源添加苯甲酸小于等于2μg/L時(shí)促進(jìn)拮抗菌(短短芽孢桿菌)的生長(zhǎng),促進(jìn)率隨苯甲酸溶液濃度的增加而減小; 當(dāng)苯甲酸濃度超過(guò)2μg/L后拮抗菌的生長(zhǎng)受到抑制,對(duì)拮抗菌生長(zhǎng)的抑制率達(dá)到16.6%(3μg/L)和90.2%(4μg/L),超過(guò)5μg/L后拮抗菌幾乎無(wú)法生長(zhǎng)。5μg/L濃度的苯甲酸溶液對(duì)茄科勞爾氏菌和短短芽孢桿菌的抑制作用分別達(dá)到99.7%和99.9%。病原菌和拮抗菌在10μg/L的苯甲酸溶液中完全不能生長(zhǎng)。
當(dāng)外源添加3-苯丙酸濃度小于等于6μg/L時(shí),病原菌的生長(zhǎng)得到促進(jìn),分別比對(duì)照處理增加10.6%(1μg/L)、10.1%(2μg/L)、8.4%(3μg/L)、6.7%(4μg/L)、5.2%(5μg/L)和1.3%(6μg/L),超過(guò)8μg/L濃度時(shí),病原菌的生長(zhǎng)受到顯著影響,幾乎不生長(zhǎng)(表3)。當(dāng)外源添加3-苯丙酸濃度小于等于3μg/L時(shí),促進(jìn)拮抗菌的生長(zhǎng),分別比對(duì)照處理增加4.2%(1μg/L)、1.3%(2μg/L)和1.2%(3μg/L),超過(guò)4μg/L時(shí)拮抗菌生長(zhǎng)受到抑制,分別比對(duì)照處理減少31.1%(4μg/L)和37.7%(5μg/L); 7μg/L濃度的3-苯丙酸對(duì)拮抗菌的生長(zhǎng)具有強(qiáng)烈的抑制作用,拮抗菌幾乎都不能存活。
2.4添加外源酚酸類物質(zhì)對(duì)土壤病原菌和拮抗菌數(shù)量的影響
表3 不同濃度苯甲酸和3-苯丙酸對(duì)病原菌和拮抗菌生長(zhǎng)的影響(OD600)
注(Note):NA—未得到的數(shù)據(jù)Meansnotavailable. 同列數(shù)據(jù)后不同字母表示處理間差異達(dá)5%顯著水平Valuesfollowedbydifferentlettersinacolumnaresignificantamongtreatmentsatthe5%level.
圖4 添加外源苯甲酸對(duì)土壤病原菌和拮抗菌數(shù)量的影響Fig.4. The effect of exogenous benzoic acid on the population of R. solanacearum and B. brevis
[注(Note): 柱上不同小寫字母表示病原菌處理間差異達(dá)5%顯著水平,不同大寫字母表示拮抗菌處理間差異達(dá)5% 顯著水平Differentsmalllettersabovethebarsmeansignificantatthe5%levelsamongtreatmentsofpathogen,andcapitallettersmeansignificantatthe5%levelsamongtreatmentsofantagonist.]
2.5添加外源苯甲酸和3-苯丙酸對(duì)土壤根際可培養(yǎng)微生物數(shù)量和微生物群落功能多樣性的影響
4μg/kg的苯甲酸和8μg/kg的3-苯丙酸顯著降低土壤微生物數(shù)量(表4、表5)。當(dāng)苯甲酸的濃度為4μg/kg、5μg/kg時(shí),土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量分別降低85.2、92.6%、60.7, 76.9%和86.2、92.2%。隨著3-苯丙酸濃度的增加,盡管土壤微生物數(shù)量稍有下降趨勢(shì),但處理間無(wú)顯著差異。當(dāng)3-苯丙酸濃度達(dá)到8μg/kg時(shí),與對(duì)照相比,土壤微生物數(shù)量顯著下降。4μg/kg的苯甲酸或7μg/kg的3-苯丙酸是土壤微生物多樣性和均勻度顯著下降的轉(zhuǎn)折點(diǎn),添加4μg/kg的苯甲酸土壤Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)和McIntosh指數(shù)分別僅為對(duì)照的57.6%、88.1%和73.3%,添加7μg/kg的3-苯丙酸土壤Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)和McIntosh指數(shù)分別僅為對(duì)照的94.1%、97.6%和80.1%。
圖5 添加外源3-苯丙酸對(duì)土壤病原菌和拮抗菌數(shù)量的影響Fig.5. The effect of exogenous 3-phenylpropanoic acid on the population of R. solanacearum and B. brevis
[注(Note): 柱上不同小寫字母表示病原菌處理間差異達(dá)5%顯著水平,不同大寫字母表示拮抗菌處理間差異達(dá)5%顯著水平Differentsmalllettersabovethebarsmeansignificantatthe5%levelamongtreatmentsofpathogen,andcapitallettersmeansignificantatthe5%levelamongtreatmentsofantagonist.]
表4 添加外源苯甲酸后土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量和微生物群落功能多樣性
注(Note): 同列數(shù)據(jù)后不同字母表示處理間差異達(dá)5%顯著水平Valuesfollowedbydifferentlettersinacolumnaresignificantamongtreatmentsatthe5%level.
表5 添加外源3-苯丙酸后土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量和微生物群落功能多樣性
注(Note): 同列數(shù)據(jù)后不同字母表示處理間差異達(dá)5%顯著水平Valuesfollowedbydifferentlettersinacolumnaresignificantamongtreatmentsatthe5%level.
近年來(lái)研究表明,化感物質(zhì)不但引起作物自毒作用,同樣會(huì)導(dǎo)致病害的暴發(fā)流行[24]。目前,研究煙草根系分泌物的種類和含量,以及主要酚酸類物質(zhì)對(duì)根際微生物特別是對(duì)土傳病害病原菌和拮抗菌生長(zhǎng)影響方面的系統(tǒng)研究還較少,并主要集中在根系粗提物的極性分離,以及不同極性的根系粗提物對(duì)煙苗生長(zhǎng)、土壤酶活性等的影響方面[8]。植物賴以生存的土壤中聚集著大量微生物,其中既有有益微生物,也有病原微生物。根系分泌物中豐富的糖類、氨基酸類、有機(jī)酸及酚酸等物質(zhì),為植物根際土壤微生物的生長(zhǎng)和繁殖提供了充足的營(yíng)養(yǎng),同時(shí)也影響著土壤微生物的種類、數(shù)量及其在植物根際的分布。研究發(fā)現(xiàn),不同土壤微生物在根際的定殖受根系分泌物的影響而表現(xiàn)出明顯的根際效應(yīng)[25-26]。而且,根系分泌物還對(duì)根際微生物的生長(zhǎng)和發(fā)育產(chǎn)生影響。韓雪等[5]研究不同黃瓜品種的根系分泌物對(duì)黃瓜枯萎病菌孢子萌發(fā)、菌絲生長(zhǎng)及病原菌生物量的影響時(shí)發(fā)現(xiàn),抗枯萎病黃瓜品種的根系分泌物對(duì)上述指標(biāo)均有明顯的抑制作用,而感病品種則相反。韓麗梅等[27]研究大豆連作土壤中有機(jī)物對(duì)大豆根腐病菌的影響時(shí)發(fā)現(xiàn),土壤中酚酸組分對(duì)尖孢鐮刀菌等三種病菌的生長(zhǎng)多表現(xiàn)出顯著的促進(jìn)作用; 同時(shí),根系分泌物中的有機(jī)酸與酚酸類物質(zhì)使連作土壤理化特性改變,引發(fā)根際土壤pH值降低,也對(duì)根際土壤微生物種群結(jié)構(gòu)的變化產(chǎn)生較大影響,因此長(zhǎng)期連作導(dǎo)致土傳病害的暴發(fā)流行[28]。根系分泌物中的酚類與酚酸類物質(zhì)在作物自毒現(xiàn)象和連作障礙中扮演非常重要的角色,多種酚酸類物質(zhì)對(duì)植物的生長(zhǎng)發(fā)育都起到抑制的作用[29-31]。本試驗(yàn)以煙草根系分泌物中的酚酸類物質(zhì)為主要研究對(duì)象,在煙草根系分泌物中分離、篩選鑒定到兩種主要酚酸類物質(zhì)(苯甲酸和3-苯丙酸),補(bǔ)充了煙草根系分泌物已有的關(guān)于其他酚酸類物質(zhì)的研究?jī)?nèi)容。
不同濃度的酚酸對(duì)微生物生長(zhǎng)繁殖起著不同的作用。馬瑞霞等研究[32]指出,當(dāng)反式-阿魏酸的濃度分別達(dá)到5.149, 2.575和0.257mmol/L時(shí),枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)的生長(zhǎng)和反硝化作用受到顯著影響; 而當(dāng)苯甲酸的濃度為4.09 和8.189mmol/L時(shí),枯草芽孢桿菌生長(zhǎng)得到顯著促進(jìn)。高欣欣等[33]分離并鑒定烤煙根系分泌物中存在苯甲酸、肉桂酸、反丁烯二酸和琥珀酸等,并分析測(cè)定了這些酚酸類物質(zhì)對(duì)煙草種子和出芽的化感作用,研究表明,苯甲酸能夠顯著抑制煙苗的生長(zhǎng)、種子萌發(fā)及煙葉品質(zhì),濃度越高抑制作用越強(qiáng)。本試驗(yàn)探索了不同種類、不同濃度的酚酸類物質(zhì)對(duì)病原菌和兩株拮抗菌生長(zhǎng)的影響,結(jié)果表明,低濃度的苯甲酸和3-苯丙酸能夠促進(jìn)病原菌和拮抗菌的生長(zhǎng),而高濃度則同時(shí)抑制這兩種微生物的生長(zhǎng)。另外,苯甲酸對(duì)病原菌的抑制濃度大于拮抗菌,這可能是由于不同微生物對(duì)酚酸類物質(zhì)濃度的響應(yīng)不同造成的; 譚秀梅等[34]的研究也得到類似的結(jié)果,即隨著外源物質(zhì)濃度的升高,土壤微生物數(shù)量具有先增加后降低的趨勢(shì)。Qu等[35]研究表明,2,4-二叔丁基苯酚和香草酸的加入對(duì)微生物量同樣存在低濃度促進(jìn)、高濃度抑制的作用。郝文雅等[36]發(fā)現(xiàn)西瓜根系分泌物能夠增加尖孢鐮刀菌(Fusarium oxysporumf.sp.niveum)孢子萌發(fā)的數(shù)量,并增強(qiáng)其繁殖能力。本試驗(yàn)中計(jì)算得到根系分泌物中的苯甲酸含量為0.25μg/g干根重,而在田間實(shí)際生產(chǎn)中,正常的煙株旺長(zhǎng)期的根干重約為12g左右[37],即每株煙旺長(zhǎng)期的苯甲酸分泌量約為3μg/kg根際土。試驗(yàn)結(jié)果中3μg/kg的苯甲酸對(duì)土壤中的病原菌生長(zhǎng)具有促進(jìn)作用,但對(duì)拮抗菌的生長(zhǎng)卻起到抑制作用,表明田間實(shí)際生產(chǎn)中,煙株正常分泌的苯甲酸對(duì)病原菌具有正向趨向作用,而對(duì)拮抗菌卻具有排斥作用。3-苯丙酸在煙草根系分泌物中的含量為1.15μg/g干根重,每株煙旺長(zhǎng)期的3-苯丙酸分泌量為13.8μg/kg,超出試驗(yàn)中設(shè)置的最大量8μg/kg的3-苯丙酸,可能會(huì)同時(shí)抑制土壤中的病原菌和拮抗菌的生長(zhǎng)。根系分泌物中含有多種物質(zhì),可能會(huì)對(duì)濃度較高的某一種物質(zhì)具有緩沖性,而單一添加3-苯丙酸時(shí),這種緩沖作用消失,有可能造成比理論分界點(diǎn)偏低的現(xiàn)象。
在本研究中,4μg/kg的苯甲酸或8μg/kg的3-苯丙酸可以顯著減少土壤微生物包括細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量。根際微生物的活性與根系分泌物的種類和數(shù)量密切相關(guān),根系分泌物對(duì)根際土壤中的微生物種類及數(shù)量有著特異性和非特異性的影響,在多數(shù)情況下,根系分泌物對(duì)根際微生物的影響是非特異性的,它對(duì)微生物物趨向有著誘導(dǎo)的作用。革蘭氏陰性無(wú)芽孢細(xì)菌會(huì)受到根系分泌物的誘導(dǎo)向根際聚集[38]。Sushma[39]的研究表明,根際促生菌熒光假單胞桿菌(Pseudomonas fluorescens)會(huì)受到番茄根系分泌物中主要成分檸檬酸和蘋果酸的誘導(dǎo)定殖,即趨化現(xiàn)象。本試驗(yàn)中的茄科勞爾氏菌屬于革蘭氏無(wú)芽孢細(xì)菌,而拮抗菌Brevibacillus brevis為革蘭氏陽(yáng)性菌,因此,煙草根系分泌物對(duì)病原菌的誘導(dǎo)性遠(yuǎn)遠(yuǎn)大于對(duì)拮抗菌的誘導(dǎo)性,使得病原菌比拮抗菌更易定殖在煙株根際。
根系分泌物對(duì)根際土壤的微生物多樣性和豐富度作用顯著[40],根系分泌物調(diào)節(jié)并決定著根系與土壤微生物間的生物、化學(xué)、物理等相關(guān)關(guān)系,在根系-微生物互作過(guò)程中起著至關(guān)重要的作用[41-42]?;凶饔猛ㄟ^(guò)改變根際土壤中微生物的數(shù)量和群落結(jié)構(gòu)間接影響微生態(tài)平衡[43-44],調(diào)控病原菌的生長(zhǎng)與致病性。特定的根系分泌物決定著土壤中主要的微生物群落種類,在連作條件下,土壤微生物群落多樣性降低,有益微生物減少甚至滅亡,病原微生物增加[9]??挛妮x[45]認(rèn)為在煙草連作障礙土壤中存在化感自毒物質(zhì),隨著這些自毒物質(zhì)逐漸積累,可以顯著降低土壤微生物群落多樣性,增加病原微生物數(shù)量,破壞土壤微生態(tài)系統(tǒng)的平衡,降低根系的代謝活動(dòng)及營(yíng)養(yǎng)元素的有效性,最終導(dǎo)致煙葉產(chǎn)量和質(zhì)量下降。本試驗(yàn)中當(dāng)苯甲酸的濃度為4μg/kg、5μg/kg時(shí),土壤細(xì)菌、放線菌和真菌的數(shù)量分別降低了85.2%、92.6%,60.7%和76.9%、 86.2%、92.2%。在一定濃度下,隨著3-苯丙酸濃度的增加,盡管土壤微生物濃度稍有下降趨勢(shì),但處理間無(wú)顯著差異。當(dāng)3-苯丙酸濃度達(dá)到8μg/kg時(shí),與對(duì)照相比,土壤微生物數(shù)量顯著下降。土壤的微生物活性分別由Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)和McIntosh指數(shù)表征,反映土壤微生物功能多樣性。4μg/kg的苯甲酸或7μg/kg的3-苯丙酸是土壤微生物多樣性和均勻度顯著下降的轉(zhuǎn)折點(diǎn)。當(dāng)土壤中接種低濃度的苯甲酸和3-苯丙酸時(shí),土壤微生物對(duì)BiologECO板中的底物利用率較高。與液體培養(yǎng)基不同的是,土壤能夠緩沖酚酸類物質(zhì)對(duì)微生物的抑制作用。因此,土壤接種苯甲酸和3-苯丙酸后對(duì)土壤微生物生長(zhǎng)的抑制濃度略大于液體培養(yǎng)基。
通過(guò)UPLC-Q-TOF/MS,在煙草根系分泌物中分離、篩選到兩種主要酚酸類物質(zhì)為苯甲酸和3-苯丙酸; 液體培養(yǎng)條件下,對(duì)茄科勞爾氏菌具有促進(jìn)作用的酚酸濃度分別為3μg/L苯甲酸和6μg/L3-苯丙酸,顯著高于對(duì)拮抗菌短短芽孢桿菌有促進(jìn)作用的酚酸濃度; 土壤外源添加3μg/kg的苯甲酸或8μg/kg的3-苯丙酸時(shí),土壤病原菌數(shù)量增加而拮抗菌數(shù)量減少,同時(shí)土壤微生物功能多樣性降低; 與拮抗菌相比,煙草青枯病病原菌可以更好地利用煙草根系分泌物中的酚酸類物質(zhì),從而比拮抗菌更易定殖于煙株根際,這可能是連作障礙造成土傳病害暴發(fā)流行的機(jī)理之一。
[1]WeirT,ParkSW,VivancoJ.Biochemicalandphysiologicalmechanismsmediatedbyallelochemicals[J].CurrentOpinioninPlantBiology, 2004, 7: 472-479.
[2]YeJQ,YeSF,ZhangMF, et al.Effectsofrootexudatesandaqueousrootextractsofcucumber(Cucumis sativusL.)andallelochemicals,onphotosynthesisandantioxidantenzymesincucumber[J].BiochemicalSystematicsandEcology, 2003, 31(1): 129-139.
[3]WuHW,HaigT,PratleyJ.Allelochemicalsinwheat(Triticum aestivumL.):Variationofphenolicacidsinshoottissues[J].JournalofChemicalEcology, 2001, 27(1): 125-135.
[4]RuanW,LiuM,PanJ, et al.Effectofoilcakesonthegrowthofcucumber(Cucumis sativusL.)undercontinuouscroppingsystemanditsmechanism[J].ScientiaAgriculturaSinica, 2003, 36(12): 1519-1524.
[5]韓雪, 吳鳳芝, 潘凱. 根系分泌物與土傳病害關(guān)系之研究綜述[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2006, 22(2): 316-318.
HanX,WuFZ,PanK.Reviewontherelationbetweentherootexudatesandsoil-spreaddisease[J].ChineseAgriculturalScienceBulletin, 2006, 22(2): 316-318.
[6]WuHW,HaigT,PratleyJ.Allelochemicalsinwheat(Triticum aestivuml.):Cultivardifferenceintheexudationofphenolicacids[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry, 2001, 49(88): 3742-3745.
[7]HaoW,RenL,RanW, et al.AlleopathiceffectsofrootexudatesfromwatermelonandriceplantsonFusarium oxysporumf.Sp. Niveum [J].PlantandSoil, 2010, 336: 485-497.
[8]WuH,RazaW,LiuD, et al.AllelopathicimpactofartificiallyappliedcoumarinonFusarium oxysporumf.Sp. Niveum [J].WorldJournalofMicrobiologyandBiotechnology, 2008, 24: 1297-1304.
[9]ChenL,YangX,RazaW, et al. Trichoderma harzianumsqr-t037rapidlydegradesallelochemicalsinrhizospheresofcontinuouslycroppedcucumbers[J].AppliedMicrobiologyandBiotechnology, 2011, 89: 1653-1663.
[10]郭亞利, 李明海, 吳洪田, 等. 烤煙根系分泌物對(duì)烤煙幼苗生長(zhǎng)和養(yǎng)分吸收的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2007, 13(3): 458-463.
GuoYL,LiMH,WuHT, et al.Effectsofrootexudatesongrowthandnutrientsuptakeoftobaccoseedlings[J].PlantNutritionandFeritlizerScience, 2007, 13(3): 458-463.
[11]EnglerbrechtMC.Modificationofasemi-selectivemediumfortheisolationandquantificationofPseudomonas solanacearum [J].ACIARBacterialWiltNewsletter, 1994, 10: 3-5.
[12]KochR. überdenaugenblicklichenStandderbakteriologischenCholeradiagnose(inGerman) [J].ZeitschriftfürHygieneundInfectionskrankheiten, 1893, 14: 319-333.
[13]HervasA,LandaB,DatnoffLE, et al.EffectsofcommercialandindigenousmicroorganismsonFusariumwiltdevelopmentinchickpea[J].BiologicalControl, 1998, 13: 166-176.
[14]LiuY,ShiJ,FengY, et al.Tobaccobacterialwiltcanbebiologicallycontrolledbytheapplicaitonofantagonisticstrainsincombinationwithorganicfertilizer[J].BiologyandFertilityofSoils, 2013, 49: 447-464.
[15]ZhangH,YuZ,HuangQ, et al.Isolation,identificationandcharacterizationofphytoplankton-lyticbacteriumCH-22againstMicrocystis aeruginosa [J].Limnologica, 2011, 41: 70-77.
[16]CartwrightDK,SpurrHWJ.BiologicalcontrolofPhytophthora parasiticavar. Nicotianaeontobaccoseedlingswithnon-pathogenicbinucleateRhizoctoniafungi[J].SoilBiologyandBiochemistry, 1998, 30: 1879-1884.
[17]HoaglandDR,ArnonDI.Thewater-culturemethodforgrowingplantswithoutsoil[M].Berkley:UniversityofCaliforniaAgriculturalExperimentStationCircular, 1950. 39.
[18]ArnonDI,StoutPR.Theessentialityofcertainelementsinminutequantityforplantswithspecialreferencetocopper[J].PlantPhysiology, 1939, 14: 371-375.
[19]FrenchEB,GutarraL,AleyP, et al.Culturemediaforralstoniasolanacearumisolation,identification,andmaintenace[J].Fitopatologia, 1995, 30(3): 126-130.
[20]趙斌, 何紹江. 幾種常用培養(yǎng)基的配制方法[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2002. 85-88.
ZhaoB,HeSJ.Severalcommonculturemedia[M].Beijing:SciencePress, 2002. 85-88.
[21]BanwartWL,PorterPM,GranatoTC, et al.HPLCseparationandwavelengtharearatiosofmorethan50phenolicacidsandflavonoids[J].JournalofChemicalEcology, 1985, 11: 383-395.
[22]BissettA,RichardsonAE,BakerG, et al.Long-termlanduseeffectsonsoilmicrobialcommunitystructureandfunction[J].AppliedSoilEcology, 2011, 51: 66-78.
[23]GarlandJL,MillsAL.Classificationandcharacterizationofheterotrophicmicrobialcommunitiesonthebasisofpatternsofcommunity-levelsole-carbon-sourceutilization[J].AppliedandEnvironmentalMicrobiology, 1991, 57: 2351-2359.
[24]陳志杰, 梁銀麗, 張鋒, 等. 溫室土壤連作對(duì)黃瓜主要病害的影響[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2008, 16(1): 71-74.
ChenZJ,LiangYL,ZhangF, et al.Effectofdifferentcropsuccessionsonmaindiseasedevelopmentincucmberundersunlitgreenhouse[J].ChineseJournalofEco-Agriculture, 2008, 16(1): 71-74.
[25]陳宏宇, 李曉鳴, 王敬國(guó). 抗病性不同大豆品種根面及根際微生物區(qū)系的變化Ι. 非連作大豆(正茬)根面及根際微生物區(qū)系的變化[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2005, 11(6): 804-809.
ChenHY,LiXM,WangJG.ChangeofmicrofloraintherhizosplaneandrhizosphereofdifferentdiseaseresistancesoybeancultivarsΙ.Changeofmicrofloraintherhizoplaneandrhizosphereofsoybeanundernormalrotationcroppingcondition[J].PlantNutritionandFertilizerScience, 2005, 11(6): 804-809.
[26]陳宏宇, 李曉鳴, 王敬國(guó). 抗病性不同大豆品種根面及根際微生物區(qū)系的變化Π. 連作大豆(重茬)根面及根際微生物區(qū)系的變化[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào), 2006, 12(1): 104-108.
ChenHY,LiXM,WangJG.ChangeofmicrofloraintherhizosplaneandrhizosphereofdifferentdiseaseresistancesoybeancultivarsΠ.Changeofmicrofloraintherhizoplaneandrhizosphereofsoybean[J].PlantNutritionandFertilizerScience, 2006, 12(1): 104-108.
[27]韓麗梅, 鞠會(huì)艷, 王旭明. 大豆連作土壤有機(jī)化合物對(duì)大豆根腐病菌生長(zhǎng)的影響[J]. 大豆科學(xué), 2004, 23(1): 36-40.
HanLM,JuHY,WangXM.Influenceoftheorganiccompoundsincontinuouscroppingsoybeanonpathogenicofrootrot[J].SoybeanScience, 2004, 23(1): 36-40.
[28]李瓊芳. 不同連作年限麥冬根際微生物區(qū)系動(dòng)態(tài)研究[J]. 土壤通報(bào), 2006, 37(3): 563-565.
LiQF.Dynamicsofthemicrobialflorainthelirioperhizosphereandoutrhizosphereduringcontinuouscroppingyears[J].ChineseJournalofSoilScience, 2006, 37(3): 563-565.
[29]PerezP.Rootexudatesofwildoats:Allelopathiceffectonspringwheat[J].Phytochemistry, 1991, 30(7): 2199-2202.
[30]TangC,YongC.Collectionandindentificationofallelopathiccompoundsfromtheundisturbedrootsystemofbigaltalimpograss(Hemarthria altissima) [J].PlantPhysiology, 1982, 69: 155-160.
[31]WangTSC,YangTK,ChuangTT.Soilphenoicacidsasplantgrowthinhibitors[J].SoilScience, 1967, 103(44): 239-246.
[32]馬瑞霞, 馮怡, 李萱. 化感物質(zhì)對(duì)枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)在厭氧條件下的生長(zhǎng)及反硝化作用的影響[J]. 生態(tài)學(xué)報(bào), 2000, 20: 452-457.
MaRX,FengY,LiX.EffectsofallelochemicalsongrowthofBacillus subtilisanditsdenitrificationunderanaerobiccondition[J].ActaEcologicaSinica, 2000, 20: 452-457.
[33]高欣欣, 于會(huì)泳, 張繼光, 等. 烤煙根系分泌物的分離鑒定及對(duì)種子萌發(fā)的影響[J]. 中國(guó)煙草科學(xué), 2012, 33(3): 87-91.
GaoXX,YuHY,ZhangJG, et al.Identificationofchemicalcompositionsofrootexudatesfromflue-curedtobaccoandtheirinfluencetoseedgermination[J].ChineseTobaccoScience, 2012, 33(3): 87-91.
[34]譚秀梅, 王華田, 孔令剛, 等. 楊樹(shù)人工林連作土壤中酚酸積累規(guī)律及對(duì)土壤微生物的影響[J]. 山東大學(xué)學(xué)報(bào)(理學(xué)版), 2008, 43(1): 14-19.
TanXM,WangHT,KongLY, et al.Accumulationofphenolicacidsinsoilofacontinuouscroppingpolarplantationandtheireffectsonsoilmicrobes[J].JournalofShandongUniversity(NaturalScience), 2008, 43(1): 14-19.
[35]QuXH,WangJG.Effectofamendmentswithdifferentphenolicacidsonsoilmicrobialbiomass,activity,andcommunitydiversity[J].AppliedSoilEcology, 2008, 39: 172-179.
[36]郝文雅, 冉煒, 沈其榮, 任麗軒. 西瓜、水稻根分泌物及酚酸類物質(zhì)對(duì)西瓜?;图怄哏牭毒挠绊慬J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué), 2010, 43(12): 2443-2452.
HaoWY,RanW,ShenQR,RenLX.Effectsofrootexudatesfromwatermelon,riceplantsandphenolicacidsonFusarium oxysporumf.sp. niveum [J].ScientaAgriculturaSinica, 2010, 43(12): 2443-2452.
[37]曾宇, 葉協(xié)鋒, 符云鵬, 等. 施加腐熟小麥秸稈對(duì)土壤容重及烤煙根系生長(zhǎng)的影響[J]. 中國(guó)煙草學(xué)報(bào), 2014, 20(3): 68-72.
ZengY,YeXF,FuYP, et al.Effectoffertilizingrottenwheatstrawonsoilbulkdensityandrootgrowthofflue-curedtobacco[J].ActaTabacariaSinica, 2014, 20(3): 68-72.
[38]LiuF,WenX.Progressinralationshipbetweenrootexudatesandrhizosphericmicroorganism[J].FoodandDrug, 2006, 8(9): 37-40.
[39]SushmaGS.Chemotacticresponseofplant-growth-promotingbacteriatowardsrootsofvesicular-arbuscularmycorrhizaltomatoplants[J].FEMSMicrobiologyEcology, 2003, 45(3): 219-227.
[40]NayyarA,HamelC,LafondG, et al.Soilmicrobialquality
associatedwithyieldreductionincontinuous-pea[J].AppliedSoilEcology, 2009, 43: 115-121.
[41]BaisHP,WeirTL,PerryLG, et al.Theroleofrootexudates
inrhizosphereinteractionswithplantsandotherorganisms[J].AnnualReviewofPlantBiology, 2006, 57: 233-266.
[42]BroecklingCD,BrozAK,BergelsonJ, et al.Rootexudatesregulatesoilfungalcommunitycompositionanddiversity[J].AppledandEnvironmentalMicrobiology, 2008, 74: 738-744.
[43]KongC,WangP,GuY, et al.Fateandimpactonmicroorganismsofriceallelochemicalsinpaddysoil[J].JournalofAgriculturalandFoodChemistry, 2008, 56: 5043-5049.
[44]WuF,WangX.Effectofp-hydroxybenzoicandcinnamicacids
onsoilfungi(Fusarium oxysporumf.sp. Cucumerinim)growthandmicrobialpopulation[J].AllelopathyJournal, 2006, 18: 129-140.
[45]柯文輝. 煙草連作障礙的根際微生態(tài)研究[D]. 福州: 福建農(nóng)林大學(xué)碩士學(xué)位論文, 2009.
KeWH.Studiesonrhizospheremicro-ecologyoftobaccosuccessivecroppingobstacle[D].Fuzhou:MSThesisofFujianAgricultureandForestryUniversity, 2009.
Identificationofphenolicacidsintobaccorootexudatesandtheirroleinthegrowthofrhizospheremicroorganisms
LIUYan-xia,LIXiang,CAILiu-ti,ZHANGHeng,SHIJun-xiong﹡
(Guizhou Academy of Tobacco Science, Guiyang 550000, China)
【Objectives】Tobaccocontinuousmono-croppinghascausedveryseriousproblems,includingsoil-bornediseaseoutbreak,tobaccogrowthsuppression,yieldreductionandqualitydecline.Allelopathycomesfromtobaccoandsoilmicroorganismsmaybeoneofthemostimportantreasonsleadingtomono-croppingobstacle.Tobaccorootexudates(TRE)playakeyroleintheplant-microorganisminteractionsintherhizosphere.Itisofgreatimportancetoexploreeffectoftobaccorootexudatesonrhizospheremicroorganisms. 【Methods】Inthisstudy,themainphenolicacidswerescreenedandidentifiedbytheUPLC-Q-TOF/MSmethod,andtheircontentsintobaccorootexudateswereevaluated.EffectofidentifiedphenolicacidsfromTREinliqiudmediumonpathogenanditsantagonistwasinvestigatedbyapplyingexogenousphenolicacids.Besides,thesoilwasaddedwiththeidentifiedphenolicacidsandculturedfor3d.Afterthat,therhizospheremicrobialdiversitiesandcounts,especiallythepopulationofpathogenRalstonia solanacearumanditsantagonistBrevibacillus brevisinthesoilweremeasured. 【Results】 1)Thetobaccorootexudatespromotethegrowthofpathogenby16.8%andsuppressthegrowthofantagonistby29.4%. 2)TwophenolicacidsarescreenedandidentifiedbyUPLC-Q-TOF/MSwiththeconcentrationsof0.25μg/gand1.15μg/gdryroot,respectively. 3)Whentheexogenousphenolicacidswereaddedtotheculturemedia,lowconcentrationsofbenzoicacid(≤2μg/L)and3-phenylpropanoicacid(≤3μg/L)promotethegrowthofthepathogenandantagonist,andthe4μg/LbenzoicaciddoesnotsignificantlyaffectR. solanacearum,whereasthepopulationofantagonistisdecreasedby90.2%.The6μg/L3-phenylpropanoicacidpromotesthegrowthofthepathogenwhileinhibitsthegrowthofantagonistby81.1%.Highconcentrationsofbenzoicacid(≥ 4μg/L)and3-phenylpropanoicacid(≥ 7μg/L)significantlysuppressthepathogenandantagonist. 4)Whenthesoilisappliedwiththe3μg/kgbenzoicacid,thepathogencountwasincreasedby12.3%whiletheantagonistpopulationisdecreasedby21.0%.Besides,thepopulationsofsoilbacteria,actinomycetesandfungiaredeclinedby37.5%,41.9%and55.6%,respectively.The8μg/kg3-phenylpropanoicacidsignificantlysuppressestheantagonistgrowthby14.5%,anddoesnotsignificantlyaffectthepathogen.Soilbacteria,actinomycetesandfungiaredecreasedby69.9%, 57.2%and80.7%,respectivelyunderthisconcentrationof3-phenylpropanoicacid. 5)Afterthe4μg/kgbenzoicacidor7μg/kg3-phenylpropanoicacidapplicationtothesoil,theShannonindex,SimpsonindexandMcIntoshindexaresignificantlydeclinedto57.7%, 88.1%, 73.3%and94.1%, 97.6%, 80.0%ofCK. 【Conclusions】Thetobaccorootexudatespromotethepathogengrowthwhereassuppresstheantagonistgrowth.Themainphenolicacidsintobaccorootexudatesarebenzoicacidand3-phenylpropanoicacid.The4μg/Lexogenousbenzoicacidor6μg/Lexogenous3-phenylpropanoicacidaretheboundaryconcentrations,whichdonotsignificantlysuppressthegrowthofpathogenbutinhibitstheantagonist.Whenbenzoicacidand3-phenylpropanoicacidareappliedtothesoil,thegrowthofpathogenispromoted,whiletheantagonistpopulationandtherhizo-microbialfunctionaldiversityaresignificantlyreducedunderthe3μg/kgbenzoicacidor8μg/kg3-phenylpropanoicacid.Pathogencouldsurviveundertheconditionoftobaccorootexudates,ratherthanantagonist.Thismaybeanexplanationoftobaccobacterialwiltoutbreakresultedfrommono-croppingobstacle.Keywords:tobaccorootexudates;pathogen;antagonist;rhizospheremicroorganism;
2014-10-28接受日期: 2014-12-30網(wǎng)絡(luò)出版日期: 2015-07-21
國(guó)家自然科學(xué)基金(41461068); 公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(201103004); 中國(guó)煙草總公司重點(diǎn)項(xiàng)目(110201002019); 貴州省煙草總公司重點(diǎn)項(xiàng)目(201410); 貴州省科學(xué)技術(shù)基金項(xiàng)目(黔科合J字[2013]2197號(hào)和2198號(hào))資助。
劉艷霞(1982—),女,河北張家口人,博士,副研究員,主要從事植物營(yíng)養(yǎng)、土壤微生物區(qū)系分析等研究。
E-mail:liuyanxia306@163.com。*通信作者E-mail:sjx2196@163.com
S572.01;S154.37
A
1008-505X(2016)02-0418-11