醫(yī)用實(shí)驗(yàn)室純水水質(zhì)分析*

劉曉婷向代軍邵安良②王成彬*

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醫(yī)用實(shí)驗(yàn)室純水水質(zhì)分析*

劉曉婷①向代軍①邵安良①②王成彬①*

劉曉婷,女,(1986- ),碩士研究生，醫(yī)師。解放軍總醫(yī)院臨床檢驗(yàn)科，從事檢驗(yàn)工作。

目的：分析醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室用水凈化前、后的水質(zhì)純度。方法：參照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 6682-2008“分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法”，分別從pH值、電導(dǎo)率、可氧化物質(zhì)、吸光度、蒸發(fā)殘?jiān)涂扇苄怨璧暮?個(gè)指標(biāo)檢測分析。結(jié)果：實(shí)驗(yàn)室凈化前的純水pH值為7.4、電導(dǎo)率為0.07 mS/m、可氧化物質(zhì)含量為0.07 mg/L、吸光度值為0.008、蒸發(fā)殘?jiān)繛?.8 mg/L、可溶性硅含量為0.015 mg/L，符合二級水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)；而經(jīng)設(shè)備純化后的純水pH值為7.18、電導(dǎo)率為0.006 mS/m、可氧化物質(zhì)含量為0.06 mg/L、吸光度值為0.001、蒸發(fā)殘?jiān)繛?.6 mg/L、可溶性硅含量為0.01 mg/L，符合一級水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)。結(jié)論：實(shí)驗(yàn)室純水凈化前水質(zhì)為二級水，而凈化后水質(zhì)符合一級水標(biāo)準(zhǔn)，凈化后水質(zhì)顯著提高，可滿足醫(yī)用實(shí)驗(yàn)室的要求。

醫(yī)用；實(shí)驗(yàn)室；純水水質(zhì)；凈化

①解放軍總醫(yī)院臨床檢驗(yàn)科 北京 100853

②中國食品藥品檢定研究院 北京 100050

[First-author’s address] Department of Clinical Laboratory, Chinese PLA General Hospital, Beijing 100853, China.

在實(shí)驗(yàn)室日常分析工作中，洗滌儀器、溶解樣品及配置溶液均需用水。一般天然水和自來水(生活飲用水)中常含有氯化物、碳酸鹽、硫酸鹽以及泥沙等少量無機(jī)物和有機(jī)物，影響分析結(jié)果的準(zhǔn)確度[1-3]。作為分析用水，必須先經(jīng)一定的方法凈化，達(dá)到國家規(guī)定的相應(yīng)級別實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格后，方可使用[4]。作為醫(yī)院的檢驗(yàn)科室，其出示的報(bào)告結(jié)果質(zhì)量直接影響到臨床的診斷和治療。為此，本研究對實(shí)驗(yàn)室純水進(jìn)行水質(zhì)分析。

1 材料和方法

1.1 設(shè)備與材料

(1)儀器。pH計(jì)(S220，梅特勒)；紫外分光光度計(jì)(UV-3600，島津)；電導(dǎo)率儀(DDSJ-318，雷磁)，蒸發(fā)殘?jiān)鼫y定儀(ZF800A，標(biāo)際)。

(2)試劑。均購于國藥集團(tuán)，為分析純。

(3)水樣。純化前水樣取自本院供水中心(經(jīng)兩級純水設(shè)備制備)；純化后水樣，經(jīng)實(shí)驗(yàn)室純水設(shè)備再純制。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

參照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 6682-2008“實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法”[5]；每個(gè)試驗(yàn)至少重復(fù)3次。

1.3 pH值與電導(dǎo)率

(1)參照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 9724-2007“化學(xué)試劑pH值測定通則”的規(guī)定進(jìn)行測定[6]。使用pH計(jì)，以pH值為5.0～8.0的標(biāo)準(zhǔn)溶液校正pH值，然后將100 ml純水注入燒杯中，插入電極，按照說明書規(guī)定的操作步驟操作，測出水樣的pH值。

(2)采用電導(dǎo)率儀(DDSJ-318)，選用配備電極參數(shù)為0.01～0.1 cm-1的電導(dǎo)池，并具有溫度自動(dòng)補(bǔ)償功能。按照電導(dǎo)率儀說明書進(jìn)行測量。

1.4 可氧化物質(zhì)

(1)制劑的制備。配置20%硫酸溶液，0.01 mol/L高錳酸鉀標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液[7-8]。

(2)測定步驟。量取1000 ml純化后水樣，注入燒杯中，加入5 ml硫酸溶液(20%)，混勻。量取200 ml純化前水樣，注入燒杯中，加入1 ml硫酸溶液(20%)混勻。在上述已酸化的試液中分別加入1 ml高錳酸鉀標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液[(C1/5 KMnO4)=0.01 mol/L]混勻，蓋上表面皿，加熱至沸騰并保持5 min。

表1 實(shí)驗(yàn)室純水水質(zhì)分析結(jié)果

1.5 吸光度與蒸發(fā)殘?jiān)?/p>

采用紫外分光光度計(jì)，按照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 9721-2006“化學(xué)試劑分子吸收分光光度法通則“紫外和可見光部分”的規(guī)定測定[9]。

量取1000 ml純化后水樣、純化前水樣500ml，分別將水樣分?jǐn)?shù)次加入旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器的蒸餾瓶中，于水浴上減壓蒸發(fā)。待水樣最后蒸發(fā)至約50 ml時(shí)，停止加熱。將上述預(yù)濃集的水樣，轉(zhuǎn)移至一個(gè)已于(105±2)℃恒量的蒸發(fā)皿中，并用5～10 ml水樣分2～3次沖洗蒸餾瓶，將洗液與預(yù)濃集水樣合并與蒸發(fā)皿中，采用蒸發(fā)殘?jiān)鼫y定儀(ZF800A)，按照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 9740-2008化學(xué)試劑蒸發(fā)殘?jiān)鼫y定通用方法的規(guī)定進(jìn)行測定[10]。

1.6 可溶性硅

1.6.1 制劑的準(zhǔn)備

分別配置0.01 mg/ml，1 mg/ml的二氧化硅標(biāo)準(zhǔn)溶液；50 g/l鉬酸銨溶液；2 g/l對甲氨基酚硫酸鹽溶液；50 g/l草酸溶液。

1.6.2 測定步驟

量取520 ml純化后水樣、純化前水樣270 ml，分別注入鉑皿中，亞沸蒸發(fā)至約20 ml，停止加熱，冷卻至室溫，加1ml鉬酸銨溶液(50 g/l)，搖勻，放置5 min后，加1 ml草酸溶液(50 g/l)，搖勻，放置1 min后，加1 ml對甲氨基酚硫酸鹽溶液(2 g/l)，搖勻。移入比色管中，稀釋至25 ml，搖勻，于60℃水浴中保溫10 min。溶液所呈藍(lán)色不得深于標(biāo)準(zhǔn)比色液。標(biāo)準(zhǔn)比色液的制備是量取0.5 ml二氧化硅標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.01 mg/ml)，用水稀釋至20 ml后，標(biāo)準(zhǔn)比色液與檢測的一級水和二級水同時(shí)采用同樣的方法處理。

1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

采用SPSS 21.0統(tǒng)計(jì)分析軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理。計(jì)量資料以均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示，組間差異分析采用配對t檢驗(yàn)，以P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

實(shí)驗(yàn)室凈化前的純水pH值為7.4±0.1，電導(dǎo)率為(0.07±0.01)mS/m，可氧化物質(zhì)含量為(0.07±0.02) mg/L，吸光度值為0.008±0.001，蒸發(fā)殘?jiān)繛?0.8±0.15)mg/L，可溶性硅含量為(0.015±0.003) mg/L；而經(jīng)設(shè)備純化后的純水pH值為7.18±0.02，電導(dǎo)率為(0.006±0.001)mS/m，可氧化物質(zhì)含量為(0.06±0.03)mg/L，吸光度值為0.001±0.000，蒸發(fā)殘?jiān)繛?0.6±0.08)mg/L，可溶性硅含量為0.01±0.001。凈化前后除可氧化物質(zhì)含量外，pH值、電導(dǎo)率、吸光度、蒸發(fā)殘?jiān)考翱扇苄怨韬窟M(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析比較，差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=12.225，t=12.113，t=4.763，t=6.864，t=4.402；P＜0.05)，可滿足醫(yī)用實(shí)驗(yàn)室的要求，見表1。

3 討論

在本研究中，試驗(yàn)用純水應(yīng)用于西門子BN?II全自動(dòng)蛋白分析儀和邁瑞B(yǎng)S380全自動(dòng)生化分析儀檢驗(yàn)分析、試劑配液及容器清洗等，清洗反應(yīng)杯及吸針。若純水質(zhì)量不合要求，清洗過程水中雜質(zhì)將留在反應(yīng)杯及吸針上，造成交叉污染[11-12]。純水設(shè)備采用先進(jìn)的反滲透技術(shù)和離子交換等技術(shù)相結(jié)合的方式，微電腦單板機(jī)程序控制，水質(zhì)檢測自動(dòng)顯示，從而獲得了高質(zhì)量的產(chǎn)出水[13-14]。

純水作為醫(yī)院實(shí)驗(yàn)室用量最大的試劑，是許多物質(zhì)進(jìn)行化學(xué)反應(yīng)和能量交換的必要介質(zhì)。水的純度是否合格將直接影響測量結(jié)果的可靠性，影響到臨床的診斷和治療[15]。因此，必須對純水質(zhì)量引起高度重視，應(yīng)意識(shí)到純水質(zhì)量是獲得其他檢測準(zhǔn)確結(jié)果的首要條件；并應(yīng)注意更新設(shè)備[16]。許多實(shí)驗(yàn)室純水設(shè)備陳舊老化，所產(chǎn)純水不能滿足標(biāo)準(zhǔn)要求，必須更新設(shè)備或改造程序。此外，要加強(qiáng)制備、購進(jìn)純水過程中運(yùn)輸、保存與使用的監(jiān)控[17-18]；如使用高壓聚乙烯容器貯存電導(dǎo)率0.08 μs/ cm的純水，兩周后電導(dǎo)率會(huì)上升到0.1 μs/cm。純水器等實(shí)驗(yàn)室純水系統(tǒng)的使用壽命與水質(zhì)、日常維護(hù)有著緊密的聯(lián)系，水質(zhì)差、日常不注意清洗維護(hù)會(huì)加重縮短純水器的使用期[18]。在純水器的水箱及RO膜表面極易產(chǎn)生菌膜，菌膜會(huì)使純水器的運(yùn)轉(zhuǎn)出現(xiàn)問題，如造成濾膜阻塞、內(nèi)壓升高、系統(tǒng)漏水及增壓泵損壞；菌膜也造成離子交換樹脂無法正常工作；菌膜還會(huì)阻塞RO膜，使其無法正常工作。應(yīng)定期消毒RO膜，定期清洗水箱，及時(shí)更換耗材，避免菌膜的產(chǎn)生并使純水器達(dá)到最佳狀態(tài)，保持實(shí)驗(yàn)結(jié)果在無污染背景下的高一致性，為臨床的診斷和治療提供準(zhǔn)確的數(shù)據(jù)支持。

4 結(jié)語

參照國家標(biāo)準(zhǔn)GB/T 6682-2008“分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法”，分別從pH值、電導(dǎo)率、可氧化物質(zhì)、吸光度、蒸發(fā)殘?jiān)涂扇苄怨璧暮?個(gè)指標(biāo)探索分析實(shí)驗(yàn)室純水在純化前后的水質(zhì)。結(jié)果表明，實(shí)驗(yàn)室純水凈化前符合二級水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)；而經(jīng)設(shè)備純化后的純水符合一級水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)，實(shí)驗(yàn)室純水凈化后水質(zhì)得到顯著提高，能夠滿足醫(yī)用實(shí)驗(yàn)室的要求。

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[10]國家標(biāo)準(zhǔn).GB/T 9740-2008化學(xué)試劑蒸發(fā)殘?jiān)鼫y定通用方法[S].北京:中國標(biāo)準(zhǔn)出版社,2008.

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Quality analysis on medical laboratory pure water

LIU Xiao-ting, XIANG Dai-jun, SHAO An-liang, et al// China Medical Equipment,2016,13(2):104-106.

Objective: To analysis pure water quality of medical laboratory before and after purification.Methods: According to GB/T 6682-2008: water for analytical laboratory use: specifications and test methods, explore pure water quality before and after purification from pH, conductivity, oxidized substances, absorbance, evaporation residue and the content of soluble silicon, respectively.Results: Before purification, pH value, conductivity, oxidized substances, absorbance, evaporation residue and the content of soluble silicon of pure water was 7.4, 0.07 mS/m, 0.07 mg/L, 0.008, 0.8 mg/L and 0.015 mg/L, respectively.And it conformed to 2nd grade.While pH value, conductivity, oxidized substances, absorbance, evaporation residue and the content of soluble silicon of pure water is 7.18, 0.006 mS/m, 0.06 mg/L, 0.001, 0.6 mg/L and 0.01 mg/L, respectively after purification, which was in line with 1st grade.Conclusion: Pure water quality of medical laboratory is 2nd grade before purification, while water quality increases to 1st grade after purification.Purification has been improved pure water quality significantly, and it can meet the requirements of medical laboratory.

Medical; Laboratory; Pure water quality; Purification

10.3969/J.ISSN.1672-8270.2016.02.033

國家重大科學(xué)儀器設(shè)備開發(fā)專項(xiàng)(2012YQ18011708)“微生物快速檢測技術(shù)在臨床中的應(yīng)用”；全軍醫(yī)學(xué)技術(shù)研究“十二五”重大專項(xiàng)(AWS11Z005-4)“師、團(tuán)快速檢驗(yàn)箱組”

wangcb301@126.com

1672-8270(2016)02-0104-03

R197.3

A

2015-10-25