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      肝細胞核因子4α增強型1.0倍HBV復制子體外復制模型建立及初步應用

      2016-03-28 05:06:08丁寧張明香
      肝臟 2016年1期
      關鍵詞:乙型肝炎

      丁寧 張明香

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      肝細胞核因子4α增強型1.0倍HBV復制子體外復制模型建立及初步應用

      丁寧 張明香

      【摘要】目的 建立一種肝細胞核因子4α(HNF4α)增強型1.0倍HBV復制子體外復制模型。方法 從臨床獲得的急性乙型肝炎患者血清中擴增并克隆HBV全長DNA;手術獲得肝組織中提取總RNA,擴增并克隆HNF4α基因cDNA。Bsp QI/ScaI雙酶切回收HBV全長DNA,HNF4α基因cDNA定向連接到真核表達載體pcDNA3.1(+)中,構(gòu)建pcDNA3.1-4α表達載體。將HBV全長DNA1μg/孔,按比例共轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-4α(0,0.5μg,1μg)于Hep G2細胞,96 h后檢測細胞上清中的HBs Ag、HBeAg和HBVDNA;以0.5μg/1μGpcDNA3.1-4α與HBV全長DNA共轉(zhuǎn)染Hep G2細胞,加入不同濃度LAM(0,100μMol/L)和ETV(0,10μMol/L),評價建立的體外復制模型。結(jié)果 1%TAE瓊脂糖凝膠電泳鑒定HBV全長DNA和HNF4α cDNAPCR產(chǎn)物,條帶長度為3.2 kb和1.5 kb;目的片段克隆后測序鑒定正確。膠回收HBV全長DNA克隆質(zhì)粒酶切目的片段,構(gòu)建的pcDNA3.1-4α表達載體酶切鑒定正確后,測序鑒定。不同濃度比例的pcDNA3.1-4α與HBV全長DNA轉(zhuǎn)染Hep G2細胞后,0μg/1μg組合:HBeAg陰性,HBs Ag陰性,上清HBVDNA載量為103;0.5μg/1μg組合:HBeAg陰性,HBs AGA值從0.1升高到1.99,上清HBVDNA載量從1×103IU/ML升高到4 ×104IU/ML;1μg/1μg組合:HBeAg陰性,HBs AGA值從0.1升高到2.4,上清HBVDNA載量從1×103IU/ML升高到1×105IU/ML;LAM從0~100μMol/L,細胞上清HBVDNA降低了97.6%;ETV從0~10μMol/L,上清HBVDNA降低了99.0%。結(jié)論 HNF4α增強型1.0倍HBV復制子體外復制模型,可以體外評價臨床常用抗病毒藥物,為后續(xù)HBV研究提供新思路。

      【關鍵詞】HNF4α;乙型肝炎;體外復制;抗乙肝藥物

      HBV感染具有高度的組織與種屬特異性,而目前的Hep G2和Huh7等人肝癌來源的細胞系能夠表達肝細胞蛋白,所以目前常用DNA轉(zhuǎn)染到永生化細胞系技術建立HBV感染體外細胞培養(yǎng)體系。但由于HBV基因組的緊湊及其相互重疊的結(jié)構(gòu)一度成為構(gòu)建HBVDNA轉(zhuǎn)染用載體面臨的難題。目前采用至少1.1倍的HBV全長基因組序列放入真核表達載體中,體外轉(zhuǎn)染肝癌細胞系,在細胞中過表達HBVpgRNA,達到體外復制的目的。所以目前的真核表達載體存在一些問題:①構(gòu)建比較復雜,構(gòu)建策略會影響實驗結(jié)果;②都是過表達的產(chǎn)物,不能真實模擬病毒體內(nèi)的復制力;③在體外細胞系中病毒沒有完整的生活史。1995年Günther等[1]用含有特異性酶切位點的全長引物擴增出HBV全長基因組,酶切后轉(zhuǎn)染體外細胞系后可以使HBV無縫自連后表達,但由于缺乏外源強效啟動子,1.0倍自連HBV復制子在體外病毒表達量較低。肝細胞核因子4α(hepatoeyte nuelear factor-4α,HNF4α)是核激素受體超家族的一種保守性的配體依賴性轉(zhuǎn)錄因子,在肝臟高表達,參與維護肝細胞分化、脂肪代謝、藥物解毒、白蛋白合成、能量代謝、膽汁酸合成等重要功能。Tang等[2]構(gòu)建在核心啟動子近端的HNF4α結(jié)合位點的4個堿基突變后發(fā),該突變型HNF4α不能與核心啟動子近端的結(jié)合位點結(jié)合,但HBV3.5 kb MRNA表達較野生株有輕微的下降,而HBV復制力則明顯下降。因此核激素受體HNF4α為HBVpgRNA合成和病毒復制所必需,且是一個具有增強HBV復制作用的調(diào)控因子。本研究將能夠表達HNF4α因子的真核表達載體與可自連的1.0倍HBV全長序列共轉(zhuǎn)染體外肝癌細胞系中,構(gòu)建一種利用HNF4a增強型1.0倍HBV復制子的體外模型,并初步應用。

      材料與方法

      一、主要試劑

      Blood DNA提取試劑盒和組織RNA提取試劑盒(Qiagen,德國),PCReasy MIx(全式金生物有限公司,北京),DNA膠回收試劑盒(Qiagen,德國),T-A克隆試劑盒(Pro mega,美國),RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen,美國),Bsp QI/Sca I和Eco RI/Ba MHI核酸內(nèi)切酶(NEB公司,美國),pcDNA3.1(+)真核表達載體(Invitrogen,美國),DMEM、胎牛血清(Gibico,美國),Hep G2肝癌細胞系(本室自存)。引物序列由上海生工生物公司合成。

      二、引物設計

      HBV全長擴增引物按照文獻[1]合成,HNF4α擴增引物從NCBI獲得HNF4αcDNA(GenBank Nu Mber:NM_000545)提交序列,按照序列信息合成。見表1。

      三、血清HBVDNA的提取及全長基因組擴增

      從臨床獲得2份慢性乙型肝炎患者血清,HBVDNA定量為1.23×105IU/ML和3.68×106IU/ML,嚴格按照試劑盒說明書提取血清中HBVDNA,PCR擴增體系:2×PCRMix 25μL,F(xiàn)ULL-HBVF1μL,F(xiàn)ULL-HBVR1μL,HBVDNA5μL,dd H2O補足到50μL;PCR擴增條件:94℃5 min;94℃40 s,60℃100 s,72℃8 min×35循環(huán);72℃10 min;4℃保持。PCR產(chǎn)物全部加入1%TAE瓊脂糖凝膠中,進行電泳鑒定,在約3.2 kb陽性條帶樣本進行切膠,按照試劑盒說明回收目的PCR產(chǎn)物片段,產(chǎn)物以30μLEB重溶產(chǎn)物DNA,置于-20℃保存。

      四、肝組織中HNF4α MRNA的提取及cDNA擴增

      從臨床肝癌手術患者獲得的癌旁新鮮組織,立即加入液氮在研缽內(nèi)研碎,然后嚴格按照Qiagen組織RNA提取試劑盒說明書提取總RNA。按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書以oligd T引物在42℃作用90 min,70℃15 min滅活反轉(zhuǎn)錄酶,將MRNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。PCR擴增體系:2×PCRMix 25μL,4αF0.5μL,4α R0.5μL,cDNA產(chǎn)物5μL,dd H2O補足到50μL;PCR擴增條件:94℃3 min;94℃15 s,55℃20 s,72℃40 s×35循環(huán);72℃10 min;4℃保持。PCR產(chǎn)物全部加入1%TAE瓊脂糖凝膠中進行電泳鑒定,在約500 bp陽性條帶樣本進行切膠,按照試劑盒說明回收目的PCR產(chǎn)物片段,產(chǎn)物以30μLEB重溶產(chǎn)物DNA,置于-20℃保存。

      表1 HBV全長擴增引物和HNF4α反轉(zhuǎn)錄及擴增引物

      五、全長HBV和HNF4α cDNA的克隆

      連接:T4 DNA連接酶Buffer 1μL,PGEM○R-TEasy載體(50 ng)1μL,膠回收DNA3μL,T4 DNA連接酶(3 U/μL)1μL,加dd H2O補足10μL,輕柔混勻,短暫離心,4℃過夜。轉(zhuǎn)化:從-70℃冰箱中取出的JM109感受態(tài)細胞置于冰上5 min,待菌液完全融化后,輕柔吹打混合后,取50μL感受態(tài)細胞加入連接體系的EP管中,靜置于冰上20 min,在42℃水浴中熱擊1 min,確保轉(zhuǎn)化EP管不能震動。隨后迅速將管子移到冰浴中,使細胞冷卻2 min。每管連接反應轉(zhuǎn)化細胞中加入平衡至室溫的500μLSOC培養(yǎng)基。將轉(zhuǎn)化管恒溫振蕩器中振蕩培養(yǎng),37℃,180 r/min搖菌1 h。按照300μL轉(zhuǎn)化培養(yǎng)基/板的比例將培養(yǎng)基均勻涂布于含有X-Gal/IPTG/氨芐的固體平板培養(yǎng)皿表面。將上述培養(yǎng)皿置于37℃過夜。第二天挑取白色菌斑單克隆進行鑒定。菌落PCR鑒定:將10μL純水加入PCR管中,采用無菌牙簽挑取白色單克隆菌落放于水中涮一下,再于復制板膠上劃幾下,編好號的PCR管置于95℃的金屬浴中10 min,隨后冰浴3 min裂菌。復制板置于37℃孵箱中過夜培養(yǎng)。以裂解菌液產(chǎn)物為模板,與1.3和1.4 PCR反應條件和體系相同,進行目的片段擴增。擴增產(chǎn)物1%TAE瓊脂糖凝膠電泳鑒定,有目的片段則為陽性克隆。陽性克隆菌液送測序?qū)⒍ā?/p>

      六、轉(zhuǎn)染級HBV全長DNA制備

      將已知序列信息的HBV全長克隆菌液,37℃,220 rp m搖菌過夜,按照試劑盒提取質(zhì)粒,以Bsp QI/ Sca I雙酶切質(zhì)粒,酶切體系為:NEBBuffer 3.1 10μL,Bsp QI1.5μL,Sca I1.5μL,HBV全長質(zhì)粒50μL,加dd H2O補足到100μL,先在體系中加入Bsp QI,50℃孵育5~6 h,然后再加入Sca I,37℃孵育過夜。酶切產(chǎn)物經(jīng)1%TAE瓊脂糖凝膠電泳鑒定后為4條帶,膠回收3.2 kb的目的片段,取20μL洗脫液溶解回收HBV全長目的片段,紫外分光光度計測量DNA濃度后置于-20℃?zhèn)溆谩?/p>

      七、pcDNA3.1-4α真核表達載體的構(gòu)建

      將測序的HNF4α cDNA克隆菌液和轉(zhuǎn)化了pcDNA3.1(+)空質(zhì)粒的菌液,37℃,220 r/min搖菌過夜,按照試劑盒提取質(zhì)粒,分別以Eco RI/Ba MHI雙酶切質(zhì)粒,酶切體系為:NEBBuffer 3.1 3μL,Eco RI1μL,Ba MHI1μL,HNF4α cDNA質(zhì)粒/pcDNA3.1(+)空質(zhì)粒5μL,加dd H2O補足到30μL,37℃孵育過夜。酶切產(chǎn)物經(jīng)1%TAE瓊脂糖凝膠電泳鑒定后,膠回收5.3 kb和396 bp的目的片段,取15μL洗脫液分別溶解回收目的片段。連接體系:T4 DNA連接酶Buffer 1μL,酶切pcDNA3.1(+)空質(zhì)粒產(chǎn)物1μL,酶切HNF4α cDNA產(chǎn)物3μL,T4 DNA連接酶(3 U/μL)1μL,加dd H2O補足10μL,置于4℃過夜。轉(zhuǎn)化和菌落PCR與1.5條件相同。陽性克隆送測序鑒定。

      八、pcDNA3.1-4α載體質(zhì)粒與全長HBVDNA共轉(zhuǎn)染Hep G2細胞系鑒定

      提取轉(zhuǎn)染級的pcDNA3.1-4α載體質(zhì)粒并測定其濃度,Hep G2細胞提前一天鋪板,2×105個細胞/孔接種至12孔細胞培養(yǎng)板中,按HBVDNA1μg/孔轉(zhuǎn)染,HBVDNA與轉(zhuǎn)染試劑X-geme HD按1∶2.5混合于Optim-MEM培養(yǎng)基分別加入pcDNA3.1-4α載體質(zhì)粒0μg,0.5μg,1μg中室溫孵育30 min,緩慢滴加轉(zhuǎn)染混合物到無血清培養(yǎng)基孵育的Hep G2細胞培養(yǎng)板中,37℃,體積分數(shù)為0.05的CO2孵育4~5 h后,棄去上清,PBS清洗細胞2遍后,加入1 ML含2%胎牛血清(FBS)的DMEM培養(yǎng)基37℃,體積分數(shù)為0.05的CO2孵育96 h后收取Hep G2細胞上清液,ELISA檢測上清液中的HBs Ag和HBeAg,上清經(jīng)Dnase I酶37℃消化過量的DNA過夜,75℃10 min滅活后,用熒光定量PCR方法檢測HBVDNA載量,實驗重復3次。

      九、HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子初步應用

      轉(zhuǎn)染前1天將Hep G2細胞按1×105個/孔置于24孔板中,細胞生長至60%~80%融合時,每孔加入全長HBVDNA0.5μg和0.5μGpcDNA3.1-4α載體質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染到Hep G2細胞。轉(zhuǎn)染后4 h,分別加入不同濃度的核苷(酸)類似物(LAM0,100μMol/L,ETV0,10μMol/L),隔天更換為含有相應藥物濃度的新培養(yǎng)液,連續(xù)作用4 d。收集細胞上清,上清經(jīng)Dnase I酶37℃消化過量的DNA過夜,75℃10 min滅活后,采用熒光定量PCR方法進行HBVDNA定量檢測,實驗重復3次。

      結(jié) 果

      一、HBVDNA全長以及HNF4α cDNA基因PCR擴增

      從臨床獲得5份急性肝炎患者血清,血清HBVDNA為1×104~106IU/ML。從肝癌患者外科手術獲得2份癌旁組織樣本,分別按說明書提取HBVDNA和肝組織總RNA,特異性引物擴增HBV全基因組DNA3.2 kb產(chǎn)物和HNF4α cDNA1.5 kb產(chǎn)物,1%TAE鑒定見圖1,圖2。

      圖1 HBV全長DNA擴增產(chǎn)物電泳鑒定

      圖2 HNF4α cDNA擴增產(chǎn)物電泳鑒定

      二、HBVDNA全長DNA以及HNF4α cDNA克隆

      將PCR產(chǎn)物按照試劑盒說明書膠回收目的片段,經(jīng)藍白斑篩選后,挑取白色陽性克隆菌落PCR鑒定后,菌液送測序鑒定。見圖3。

      三、轉(zhuǎn)染級HBV全長DNA的制備

      HBVDNA克隆經(jīng)菌落PCR和測序鑒定后,搖菌,提質(zhì)粒,Bsp QI/Sca I雙酶切后,膠回收3.2 kb目的片段,紫外分光光度計測濃度。見圖4。

      四、pcDNA3.1-4α真核表達載體構(gòu)建及鑒定

      HNF4α cDNA克隆質(zhì)粒與pcDNA3.1(+)空載體質(zhì)粒經(jīng)Eco RI/Ba MHI雙酶切,膠回收1.5 kb的目的片段,將回收的pcDNA3.1(+)載體與HNF4α cDNA片段通過T4dna連接酶連接過夜,轉(zhuǎn)化,涂板,挑菌提質(zhì)粒,經(jīng)Eco RI/Ba MHI雙酶切鑒定,5.3 kb和1.5 kb有單一條帶,條帶正確的質(zhì)粒送測序。見圖5。

      圖3 目的片段克隆及鑒定

      圖4 Bsp QI/ScaI雙酶切HBV全長克隆載體電泳鑒定

      五、pcDNA3.1-4α載體質(zhì)粒與全長HBVDNA共轉(zhuǎn)染Hep G2細胞系鑒定

      預先接種Hep G2細胞的24孔培養(yǎng)板中轉(zhuǎn)染1μg/孔HBV全長DNA,分別按比例加入0、0.5和1 μGpcDNA3.1-4α表達質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染,96 h后檢測上清中HBs Ag、HBeAg和HBVDNA載量。細胞上清中ELISA檢測HBeAg都低于0.2(A值),轉(zhuǎn)染不同濃度pcDNA3.1-4α的細胞上清中HBs Ag和上清中HBVDNA定量,隨pcDNA3.1-4α的濃度增加而升高。見圖6。

      六、HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子初步應用

      預先接種Hep G2細胞的24孔培養(yǎng)板中轉(zhuǎn)染1μg/孔HBV全長DNA,分別加入0.5μGpcDNA3.1-4α表達質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染后加入不同濃度的核苷(酸)類似物(LAM0,100μMol/L,ETV0,10μMol/ L),96 h后檢測上清中HBs Ag和HBVDNA載量。見圖7。

      圖5 pcDNA3.1-4α真核表達載體的構(gòu)建及鑒定

      圖6 不同濃度pcDNA3.1-4α與HBV全長DNA共轉(zhuǎn)染后細胞上清標志物檢測

      圖7 不同濃度抗病毒藥物對HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子的評價

      討 論

      長期的HBV慢性感染會導致肝硬化甚至肝癌,仍是世界范圍內(nèi)的公共衛(wèi)生問題之一[3]。由于感染人的HBV顆粒無法直接感染正常的體外無限增殖細胞,所以能夠支持HBV復制的體外培養(yǎng)體系的篩選制約了對HBV生活周期的深入研究,比如病毒與宿主細胞的結(jié)合,病毒的組裝,運輸與分泌等[4]。

      1995年Günther等[1]用含有特異性酶切位點的全長引物擴增出HBV全長基因組,酶切后轉(zhuǎn)染體外細胞系后可以使HBV無縫自連后表達,但由于缺乏外源強效啟動子,1.0倍自連HBV復制子在體外病毒表達量較低,在細胞上清中也檢測不到HBs Ag和HBeAg,但該策略為后續(xù)HBV體外轉(zhuǎn)染研究奠定了基礎。1996年Weiss等[5]將含1.2倍HBV基因組的pSPT1.2-HBV質(zhì)粒轉(zhuǎn)染Hep G2細胞,該細胞培養(yǎng)上清中能夠檢測到HBV復制中間體。2004年Yang等[6]應用PCR擴增出HBV全基因,構(gòu)建了1.1 倍HBV真核表達載體PHY106。將此重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染Hep G2細胞,篩選出1.1倍HBV穩(wěn)定表達細胞系。1.1倍體HBV轉(zhuǎn)染細胞系是目前HBV復制所需最小拷貝數(shù)的細胞模型。隨著研究的深入,新的HBVDNA體外轉(zhuǎn)染細胞模型不斷出現(xiàn),但所有模型都不能與宿主體內(nèi)HBV感染完全一致,除1.0倍HBV復制子之外,其他都有外源強效的啟動子,使HBV各元件過表達后在肝來源的癌細胞系中表達,缺失HBVcccDNA生活史階段,不能真實反映HBV的復制特點。

      HNF4α是核激素受體超家族的一種保守性的配體依賴性轉(zhuǎn)錄因子,在肝臟高表達,參與肝細胞多種重要功能。隨著對HNF4α研究的深入,發(fā)現(xiàn)它也是調(diào)控上皮細胞表型的重要基因,可阻斷肝纖維化、肝硬化等肝臟慢性疾病的進程,同時,HNF4α與HBV的轉(zhuǎn)錄和復制有關,但機制尚不完全清楚。Long等[7]發(fā)現(xiàn),肝組織中HNF4α表達量與HBs Ag、HBc Ag和HBVDNA的表達量呈正相關,證明在感染HBV的患者組織中的HNF4α可能支持HBV復制。Tang等[8]體外實驗結(jié)果顯示,HNF4α可以通過刺激前基因組3.5 kb MRNA的合成,從而支持HBV在非肝源細胞中的轉(zhuǎn)錄與復制,這表明HNF4α轉(zhuǎn)錄因子可能操縱了限制HBV嗜肝性的某些分子開關。裴彥禎等[9]研究證明,HBVDNA水平在慢性乙型肝炎、肝硬化、肝癌患者肝臟組織中逐漸降低。Ning等[10]研究表明,實驗性大鼠肝硬化、肝癌進程中,肝細胞HNF4α表達逐漸降低。因此,現(xiàn)有體外實驗的細胞系都是癌組織來源的,其HNF4α低表達或不表達,從而導致轉(zhuǎn)染細胞內(nèi)的HBVDNA復制力低下,所以干預提高體外細胞系中HNF4α的表達可以增強HBVDNA的復制能力。

      本研究從急性肝炎患者血清中擴增出HBV全長序列,分離出單克隆。從肝組織中獲得HNF4α MRNA,反轉(zhuǎn)錄后獲得cDNA單克隆,將HNF4α cDNA放入pcDNA3.1真核表達載體中。不同比例共轉(zhuǎn)染pcDNA3.1-4α表達質(zhì)粒和HBV全長DNA,結(jié)果顯示,0.5μg/1μg轉(zhuǎn)染組合,對HBV就有很強的增效作用,HBeAg陰性,HBs AGA值從0.1升高到1.99,上清HBVDNA載量從1×103IU/ML升高到4×104IU/ML。1μg/1μg轉(zhuǎn)染組合:HBeAg陰性,HBs AGA值從0.1升高到2.4,上清HBVDNA載量從1×103IU/ML升高到1×105IU/ML,以上數(shù)據(jù)顯示HNF4α可以增強1.0倍HBV復制子的體外表達,但對HBeAg沒有增效作用。

      選取拉米夫定和恩替卡韋來評價建立的HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子系統(tǒng),LAM從最低濃度(0)到最大濃度(100μMol/L),HBs AGA值從2.05降到0.2,上清HBVDNA載量從1.1×105IU/ML降低到2.6×103IU/ML;ETV從最低濃度(0)到最大濃度(10μMol/L),HBs AGA值從2.18降到0.12,上清HBVDNA載量從2.2×105IU/ML降到2.0×103IU/ML。以上數(shù)據(jù)顯示建立的HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子系統(tǒng)可以體外評價核苷類抗病毒藥物。

      總之,HNF4α體外表達可以增強HBV復制力,建立的HNF4α增強型1.0倍HBVDNA復制子系統(tǒng)可以有效的評價抗病毒藥物,該系統(tǒng)更接近的模擬HBV在感染患者體內(nèi)的復制情況,為后續(xù)HBV的研究提供了新的思路。

      參 考 文 獻

      1 Günther S,Li BC,Miska S,et al. Anovel method for efficient a Mplification of w hole hepatitis Bvirus geno mes permits rapid functional analysis and 4eveals deletion Mutants in im Munosuppressed patients.JVirol,1995,69:5437-5444.

      2 Tang H,McLanchalan A. Transcriptional regulation of hepatitis Bvirus by nuclear horm one receptors is critical determinant of viral tropism. Proc Natl Acad Sci USA,2001,98:1841-1846.

      3 Beasley RP,Lin CC,et al. Hepatocellular carcino ma and hepatitis Bvirus:a prospective study of men in Taiwan. Lancet,1981,2:1129-1133.

      4 Sells MA,et al.Production of hepatitis Bvirus particlesin Hep G2 cells transfected with cloned hepatitis Bvirus DNA. Proc Natl Acad Sci USA,1987,84:1005-1009.

      5 Weiss L,Kekule AS,et al. The HBV-producing cellline Hep G2-4 A5:Anew in vitro system for studying the regulation of HBVreplication and for screening anti-hepatitis Bvirus drugs. Virol,1996,216:214-218.

      6 Yang HL,Westland C,et al. In vitro antiviral susceptiblity of full-length clinical hepatitis Bvirus isolates cloned with a novel expression vector. Antiviral Res,2004,61:27-36.

      7 Long Y,Chen E,Liu C,et al. The correlation of hepatocyte nuclear factor 4 alpha and 3 beta with hepatitis Bvirus replication in the liver of chronic hepatitis Bpatients. JViral Hepat,2009,16:537-546.

      8 Tang H,Raney AK,McLachlan A. Replication of the wild type and a natural hepatitis Bvirus nucleocapsid pro Moter variant is differentially regulated by nuclear horm one receptors in cell culture.JVirol,2001,75:8937-8948.

      9 裴彥禎,韓濤,馬驍艷,等. HBs Ag及HBVDNA定量水平在慢性乙型肝炎、肝硬化和肝癌患者中的變化.中華肝臟病雜志,2011,10:743.

      10 Ning BF,Ding J,Yin C,et al. Hepatocyte nuclear factor 4 alpha suppresses the develop ment of hepatocellular carcino ma. Cancer Res,2010,70:7640-7651.

      (本文編輯:錢燕)

      Construction and initial application of HNF4 α enhanced 1.0-fold HBVreplication modelinvitro

      DINGNing,ZHANGMing-xiang. Departmentof liver diseases,the Sixth People's Hospitalof Shenyang,Shenyang 110006,China

      【Abstract】Objective To construct a hepatocyte nuclear factor 4 alpha(HNF4 α)enhanced 1.0-fold hepatitis Bvirus (HBV)replication Model. Methods Afull-length HBVDNAfro Mseru Mof acute hepatitis B(AHB)patients was isolated for am plification and cloning,and total RNAof liver tissue fro Msurgery was extracted for HNF4 α gene cDNAam plifying and cloning. Bsp QI/ScaIwas used to digest HBVDNAplasmid and recover HBVDNAproduction. HNF4 α gene cDNAwas directionally connected to the eukaryotic expression vector pcDNA3.1(+)for construction of pcDNA3.1-4 α expression vector. Hep G2 cells were transfected with full-length HBVDNA(1μg/well),according to proportion of transfection pcDNA3.1-4 α(0μg,0.5μg,1μg). After 96 hours,HBs Ag,HBe AGlevels and HBVDNAload in cell supernatant were detected. Hep G2 cells were transfected with 0.5μg/1μGpcDNA3.1-4 α and full-length HBVDNA,w hich were added with different concentrations of LAM(0μMol/L,100μMol/L)and ETV(0μMol/L,10μMol/L)to evaluate the replication Modelin vitro. Results The 1%TAEagarose gel detection showed that the lengths of the strips of full-length HBVDNAand HNF4 α cDNAPCRproduct were 3.2 kb and 1.5 kb,respectively,of w hich cloning target frag ments were sequenced and identified. The full-length HBVDNAwas recycled fro Mgel for cloning digested target frag ments. The constructed pcDNA3.1-4 α expression vector was sequenced and identified. Hep G2 cells were transfected with different ratios of pcDNA3.1-4 α and full-length HBVDNA.In 0μg/1μGgroup,HBe AGand HBs AGwere negative with a HBVDNAload of 103in supernatant;in 0.5μg/1μGgroup,HBe AGwas negative and HBs AGODrose fro M0.1 to 1.99 with an increasing HBVDNAload fro M1×103to 4×104;in 1μg/1μGgroup,HBe AGwas negative and HBs AGODbook=29,ebook=33rose fro M0.1 to 2.4 with an increasing HBVDNAload fro M1×103to 1×105. HBVDNAload in supernatant was reduced by 97.6%as lamivudine increasing fro M0μMol/Lto 100μMol/L,and was also reduced by 99.0%as entecavir increasing fro M0μMol/Lto 10μMol/L. Conclusion HNF4 α enhanced 1.0-fold HBVreplication Model is constructed successfully,w hich could be used to evaluate anti-HBVagents in vitro and provide new insights for HBVstudy.

      【Key words】HNF4 alpha;Hepatitis Bvirus;Replication in vitro;Antiviral HBV

      收稿日期:(2015-08-27)

      Corresponding author:DINGNing,Email:dingningwz_1976@sina.com

      通信作者:丁寧,Email:dingning wz_1976@sina.com

      基金項目:國家傳染病重大專項分課題:慢性病毒性肝炎中西醫(yī)結(jié)合治療方案優(yōu)化研究(2012ZX1005004-001)

      作者單位:110006 沈陽市第六人民醫(yī)院肝病科

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