吳青松, 彭德良, 黃文坤
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,植物病蟲害生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 北京 100193)
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植物寄生線蟲乙酰膽堿酯酶結(jié)構(gòu)與功能研究進(jìn)展
吳青松,彭德良,黃文坤*
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,植物病蟲害生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 北京100193)
乙酰膽堿酯酶通過水解神經(jīng)遞質(zhì)乙酰膽堿使得神經(jīng)信號(hào)能夠在生物體內(nèi)進(jìn)行正常的傳遞,從而有效調(diào)節(jié)正常的肌肉活動(dòng),在生物體神經(jīng)傳導(dǎo)的過程中發(fā)揮著重要作用。植物寄生線蟲乙酰膽堿酯酶具有由多種基因編碼的不同分子型,在線蟲化感、運(yùn)動(dòng)、取食、抗藥性等多個(gè)方面承擔(dān)著不同的功能。本文簡(jiǎn)要綜述了植物寄生線蟲乙酰膽堿酯酶分子型、基因結(jié)構(gòu)、基因功能、組織表達(dá)及其在線蟲抗藥性中的作用等方面的研究進(jìn)展。
植物寄生線蟲;乙酰膽堿酯酶;分子型;基因功能;抗藥性
植物寄生線蟲發(fā)生與分布廣泛,是侵染植物的主要病原之一,近年來在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上所造成的損失越來越嚴(yán)重,全世界每年因植物寄生線蟲造成的農(nóng)業(yè)損失就達(dá)到了157億美元[1]。植物內(nèi)寄生線蟲侵入植物根系、建立取食位點(diǎn)等整個(gè)危害過程都是由神經(jīng)元支配的肌肉運(yùn)動(dòng)[2],乙酰膽堿酯酶(acetylcholinesterase, AChE, EC 3.1.1.7)在這一過程中發(fā)揮了重要作用。植物寄生線蟲AChE通過水解神經(jīng)遞質(zhì)乙酰膽堿(ACh)來終止神經(jīng)沖動(dòng)的傳遞,調(diào)節(jié)正常的肌肉活動(dòng)。對(duì)于植物寄生線蟲的防治,目前多采用有機(jī)磷類和氨基甲酸酯類等非熏蒸性殺蟲劑,其殺線蟲機(jī)理便是作用于線蟲的AChE,通過與AChE活性位點(diǎn)的絲氨酸殘基形成共價(jià)鍵而使得AChE不能夠分解乙酰膽堿[34],線蟲長時(shí)間處于神經(jīng)興奮狀態(tài),最終造成線蟲肌肉麻痹、行動(dòng)異常,難以取食寄生而死亡[5]。AChE的研究對(duì)于更好地防治植物寄生線蟲病有著重要的作用。
動(dòng)物中存在多種形態(tài)的AChE分子,僅含有ace單基因的物種中會(huì)通過mRNA 的可變性剪接或者是酶蛋白的不同修飾來產(chǎn)生不同分子型[68],以此來行使不同的功能。而線蟲的AChE是由多種ace基因編碼的,分別對(duì)應(yīng)不同的酶分子型[9]。研究者首先在模式線蟲秀麗隱桿線蟲(Caenorhabditiselegans)中鑒定到6種可分離的AChE分子形式,運(yùn)用動(dòng)力學(xué)分析和突變體等遺傳學(xué)研究方法推出編碼秀麗隱桿線蟲AChE的有4種基因Ce-ace-1、Ce-ace-2、Ce-ace-3和Ce-ace-4[5,10]。隨后對(duì)4種ace基因在染色體上的定位、表達(dá)量及各自的功能也進(jìn)行了研究。根據(jù)AChE的生化特性劃分,包括對(duì)底物的親和性、對(duì)抑制劑的敏感性和熱穩(wěn)定性等,秀麗隱桿線蟲4種ace基因分別編碼4種不同的AChE動(dòng)力學(xué)類型(AChE-1即A型、AChE-2即B型、AChE-3即C型、AChE-4即D型)[10]。在植物寄生線蟲中,南方根結(jié)線蟲(Meloidogyneincognita)、花生根結(jié)線蟲(M.arenaria)、大豆孢囊線蟲(Heteroderaglycines)等AChE分子型是較早被確定的。南方根結(jié)線蟲和花生根結(jié)線蟲AChE分子類型相似,都含有5種酶分子,分為A、B、C 3種類型,且發(fā)現(xiàn)C型AChE對(duì)天然底物乙酰膽堿有很高的親和性,且對(duì)有機(jī)磷類和氨基甲酸酯類等AChE抑制劑不敏感[11],這與秀麗隱桿線蟲C型AChE對(duì)乙酰膽堿的親和性比A型和B型高近千倍的結(jié)論相一致[10]。大豆孢囊線蟲存在3種不同的AChE分子,歸屬于A型和C型,B型AChE的缺失或許與行為學(xué)有著密切的聯(lián)系。生物測(cè)定表明,與根結(jié)線蟲屬(Meloidogynespp.)相比,大豆孢囊線蟲對(duì)有機(jī)磷類和氨基甲酸酯類等AChE抑制劑更不敏感,可能是大豆孢囊線蟲中C型AChE占有更大比例的原因[12],這還有待于進(jìn)一步的研究。AChE被抑制的線蟲會(huì)出現(xiàn)麻痹、行動(dòng)異常等癥狀,但也有可能恢復(fù)其正常表型。有研究表明恢復(fù)后的線蟲盡管其表型正常,但仍有90%的AChE活性被抑制[13],這或許與不同類型AChE的相對(duì)敏感性及其被抑制后的失活與復(fù)活率有關(guān)系。植物寄生線蟲對(duì)有機(jī)磷類和氨基甲酸酯類殺線蟲劑的反應(yīng),與AChE不同分子類型的相對(duì)豐度和分布有關(guān)[12],所以對(duì)不同類型的AChE研究尤為重要。
AChE為絲氨酸水解酶族的糖蛋白,其分子結(jié)構(gòu)包括球型和尾型兩種。球型又分為單體(G1, AChES)、二聚體(G2)和四聚體(G4);根據(jù)其溶解性,AChE還可分為兩親分子(疏水型)和非兩親分子(親水型),而這很大程度上取決于羧基端的性質(zhì)。二聚體可因其羧基端插入了糖基磷脂酰肌醇(GPI)而共價(jià)結(jié)合于細(xì)胞表面,使之可溶解于離子型去垢劑中[4],成為疏水性的球型二聚體(AChEH)。四聚體(G4)具有一個(gè)高度保守的含有色氨酸的兩親性羧基端,既可以維持其四聚體形式,又可以與非催化結(jié)構(gòu)蛋白相連。在脊椎動(dòng)物中,四聚體AChE C-端含有色氨酸兩親四聚體化(WAT)區(qū)域,與膠原尾(ColQ)中的脯氨酸結(jié)合區(qū)(PRADs)相連,使其穩(wěn)定錨定于細(xì)胞基底層,同時(shí)與富脯氨酸膜錨點(diǎn)(proline-rich membrane anchor, PRiMA)相連,用于AChE的細(xì)胞內(nèi)修飾和錨定于神經(jīng)質(zhì)膜[14]。而對(duì)多數(shù)植物寄生線蟲AChE的分子結(jié)構(gòu)分析表明,A型和B型沒有膠原尾(ColQ)結(jié)構(gòu),而是由親水或非親水的球形單體、二聚體和四聚體所構(gòu)成的不同AChE分子型[6],但都有著相似的C-端氨基酸序列,表明其用類似于脊椎動(dòng)物AChE的方式固定于膜上[15]。除了結(jié)合于膜上的AChE,許多寄生線蟲通過黏膜表面分泌AChE到外部環(huán)境中[16],目前已經(jīng)從多種動(dòng)物寄生線蟲如腸線蟲巴西日?qǐng)A線蟲(Nippostrongylusbrasiliensis)和肺線蟲胎生網(wǎng)尾線蟲(Dictyocaulusviviparous)中鑒定到分泌性的AChE,這些親水性的酶由基因組所編碼,所以一些寄生線蟲或許有更多的ace基因[9],分泌性AChE與神經(jīng)元突觸間的AChE有著明顯不同,通常是由專門的頭感器和腺體所合成與分泌的[17],其功能或許與改變寄主腸胃道的生理反應(yīng)以促進(jìn)寄生存活有關(guān)系[9]。有報(bào)道發(fā)現(xiàn)寄生于大西洋鯡(Clupeaharengus)的簡(jiǎn)單異尖線蟲(Anisakissimplex)幼體軀體和分泌器官中分泌的AChE活性顯著高于寄主AChE活性,通過過量分泌AChE來達(dá)到適應(yīng)不利環(huán)境的目的[18]。在黑腹果蠅(Drosophilamelanogaster)的研究中,錨定于膜上的具有高催化活性的二聚體AChE主要在中樞神經(jīng)系統(tǒng)(CNS)中表達(dá),表明其參與突觸間的信號(hào)傳遞,而通過可變性剪接產(chǎn)生的可溶性的單體AChE更多的是在非神經(jīng)組織中表達(dá),但在CNS中的表達(dá)可被誘導(dǎo),藥物脅迫作用下CNS中可產(chǎn)生可溶性的單體AChE,具有化學(xué)防御功能[19]。
研究認(rèn)為,秀麗隱桿線蟲ace基因的Ce-ace-1與編碼人類以及電鰩的AChE基因具有42%的同源性[20],位于X染色體上,Ce-ace-2位于染色體Ⅰ上,Ce-ace-3和Ce-ace-4串聯(lián)存在于染色體Ⅱ上,相距很近,通常是一同被轉(zhuǎn)錄,但Ce-ace-4的mRNA含量遠(yuǎn)比其他三者要低。秀麗隱桿線蟲AChE-1與AChE-2序列有35%的一致性,AChE-1是兩親性的四聚體,連接一個(gè)疏水性的非催化亞基,AChE-2和AChE-3都含有糖基磷脂酰肌醇(GPI)錨定位點(diǎn),為結(jié)合GPI的兩親分子二聚體[9]。AChE-1和AChE-2占秀麗隱桿線蟲 AChE活性的95%,AChE-3貢獻(xiàn)了5%的AChE活性,AChE-4 與 AChE-3氨基酸序列有54%的一致性,AChE-4占AChE的活性少于0.1%,被認(rèn)為是無功能的[10]。
早期對(duì)于AChE的研究都是運(yùn)用生化和藥理性質(zhì)來進(jìn)行分子型的劃分和功能研究,1998年秀麗隱桿線蟲全基因組測(cè)序是生物學(xué)的一個(gè)里程碑,測(cè)序技術(shù)發(fā)展后,通過測(cè)序,完整的編碼AChE的基因被確定,從而使得運(yùn)用反向遺傳學(xué)的方法來深入研究基因功能成為重要且有效的方法。在植物寄生線蟲中,對(duì)AChE基因的克隆和功能研究已廣泛開展,已陸續(xù)克隆到南方根結(jié)線蟲AChE基因Mi-ace-1和Mi-ace-2,爪哇根結(jié)線蟲(M.javanica)AChE基因Mj-ace,馬鈴薯白線蟲(Globoderapallida)與大豆孢囊線蟲B型AChE基因Gp-ace-2和Hg-ace-2,甘薯莖線蟲(Ditylenchusdestructor)的3個(gè)基因Dd-ace-1、Dd-ace-2和Dd-ace-3,以及松材線蟲(Bursaphelenchusxylophilus)的Bx-ace-1、Bx-ace-2和Bx-ace-3[6,2127]。Mi-ace-1和Mj-ace基因核苷酸水平上相似性達(dá)到97%,都編碼656個(gè)氨基酸,蛋白相似性達(dá)到98.8%,含有維持AChE活性所必需的功能位點(diǎn)的保守區(qū)域[21]。Mi-ace-2 cDNA攜帶一個(gè)反式剪接SL1前導(dǎo)序列,預(yù)測(cè)蛋白序列和Mi-ace-1蛋白有32.3%的相似性,與Ce-ace-2蛋白有49.1%的相似性,存在催化三聯(lián)體、膽堿結(jié)合位點(diǎn)、催化峽谷芳香族氨基酸殘基等保守序列[22]。利用RT-PCR和RACE技術(shù)克隆的Dd-ace-1、Dd-ace-2和Dd-ace-3基因5′端均存在反式剪接引導(dǎo)序列SLI,分別編碼635、734和 611個(gè)氨基酸,都具有AChE特征,其中Dd-ACE-1與 Dd-ACE-3可能存在信號(hào)肽序列[6]。Bx-ace-2編碼蛋白序列與秀麗隱桿線蟲、南方根結(jié)線蟲、胎生網(wǎng)尾線蟲、大豆孢囊線蟲、馬鈴薯白線蟲、甘薯莖線蟲AChE-2型AChE蛋白序列均具有高度的相似性,Southern雜交試驗(yàn)表明Bx-ace-2基因含有反式剪接引導(dǎo)序列SL1,在松材線蟲基因組中以單拷貝存在[25],信號(hào)肽預(yù)測(cè)顯示Bx-ACE-2含有信號(hào)肽,而Dd-ACE-2不存在信號(hào)肽,此現(xiàn)象對(duì)于兩者在線蟲體內(nèi)的表達(dá)定位和功能差異是否有影響仍需進(jìn)一步研究[23,25]。Kang等對(duì)松材線蟲的3個(gè)AChE基因進(jìn)行研究,Bx-ACE-1 和 Bx-ACE-2是疏水性的,錨定于膜上,而Bx-ACE-3是在松材線蟲一些特殊組織中檢測(cè)到的,為沒有糖基磷脂酰肌醇錨定位點(diǎn)或者H型疏水性序列的可溶性蛋白,分泌在細(xì)胞膜間隙或者是血腔中[2627],而在秀麗隱桿線蟲以及南方根結(jié)線蟲、花生根結(jié)線蟲和大豆孢囊線蟲等植物寄生線蟲中鑒定到的AChE都為胞膜蛋白[10,12]。
植物寄生線蟲AChE的組織表達(dá)及功能研究已廣泛開展,運(yùn)用秀麗隱桿線蟲作為異源表達(dá)系統(tǒng)進(jìn)行馬鈴薯白線蟲AChE功能鑒定時(shí)發(fā)現(xiàn),Gp-ace-1和Gp-ace-2都參與線蟲運(yùn)動(dòng),且功能有一定程度的重疊,Gp-ace-1主要在肌肉細(xì)胞中表達(dá),而Gp-ace-2主要在頭神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元細(xì)胞中表達(dá),主要參與信號(hào)的感知和集成,此研究與秀麗隱桿線蟲以及根結(jié)線蟲屬的研究結(jié)果相一致[2122,35]。發(fā)育表達(dá)分析表明Gp-ace-2基因在J2期表達(dá)量最高,原因可能是此階段要通過化學(xué)感覺神經(jīng)元和機(jī)械感覺神經(jīng)元來感知環(huán)境信號(hào);在寄生早期和年輕雌蟲中表達(dá)量最低,是因?yàn)樵谶@個(gè)固定性生活階段,感覺和運(yùn)動(dòng)活動(dòng)都減少了;在成熟的孕期雌蟲中表達(dá)量也比較高,與卵期的表達(dá)水平相當(dāng),可能是因?yàn)槠潴w內(nèi)的一些卵已經(jīng)含有部分2齡幼蟲;成熟的雄蟲在找尋雌蟲受精的過程中需要運(yùn)動(dòng),其表達(dá)量也比寄生階段要高。此外,Gp-ace-2基因可以恢復(fù)Ce-ace-1和Ce-ace-2雙突變體引起的運(yùn)動(dòng)不協(xié)調(diào)表型[29]。線蟲AChE單基因突變但余下基因的補(bǔ)償作用在一定程度上也說明了不同AChE功能上的相似或重疊性[9],而不同ace基因在神經(jīng)和肌肉等的不同組織表達(dá)位置又表明其功能的特異性[28],所以各基因的具體功能還有待于進(jìn)一步的研究。對(duì)南方根結(jié)線蟲的發(fā)育表達(dá)分析表明,Mi-ace-1和Mj-ace在卵、寄生前2齡幼蟲、雄蟲中都有表達(dá),用硫代乙酰膽堿(ATCh)作為底物進(jìn)行南方根結(jié)線蟲 AChE活性檢測(cè),結(jié)果表明在寄生前2齡幼蟲和雄蟲的頭感器中活性強(qiáng)烈,但是在雌成蟲中卻未檢測(cè)到有活性[21]。
Ce-ace-3mRNA含量豐富,但AChE-3僅占AChE活性的5%,且對(duì)于底物乙酰膽堿有著很低的Km值,所以AChE-3可能具有比較低的催化效率[10],對(duì)于部分AChE抑制劑如毒扁豆堿等不敏感,被認(rèn)為與抗性有關(guān),可能具有非經(jīng)典的突觸功能[9],Chang等對(duì)根結(jié)線蟲屬C型AChE的研究也得到一致的結(jié)論[11]。研究表明Ce-ace-3在咽部肌肉細(xì)胞、頭部神經(jīng)元、肛門神經(jīng)節(jié)和中腔中均有表達(dá)[9],若根結(jié)線蟲屬C型AChE主要在咽部肌肉表達(dá),則已經(jīng)建立了取食位點(diǎn)的固著性的成蟲仍然能夠取食,在殺線蟲劑藥物的存在下仍能存活[11, 30]。Kang等對(duì)松材線蟲AChE進(jìn)行了研究,實(shí)時(shí)定量PCR的轉(zhuǎn)錄譜表明Bx-ace-3轉(zhuǎn)錄效率在繁殖和傳播階段最高,是Bx-ace-1的2~3倍,是Bx-ace-2 的9~18倍,免疫組織化學(xué)法揭示了Bx-ACE-1和 Bx-ACE-2分布在神經(jīng)組織中,而Bx-ACE-3存在于細(xì)胞膜間隙或血腔等特殊組織中。Bx-ACEs體外表達(dá)的動(dòng)力學(xué)分析認(rèn)為Bx-ACE-1有很強(qiáng)的底物特異性,Bx-ACE-2有很高的催化效率,Bx-ACE-3對(duì)抑制劑不敏感,且推測(cè)Bx-ACE-1和Bx-ACE-2在突觸間傳遞過程中發(fā)揮著共同的但并非重疊的作用,而Bx-ACE-3具有抵御化學(xué)藥害的非神經(jīng)元功能[26,31]。三者都存在時(shí),Bx-ACE-3明顯降低了AChE抑制劑對(duì)Bx-ACE-1 和 Bx-ACE-2的抑制作用。通過RNA干擾使得Bx-ACE-3下調(diào)后,一些殺線蟲劑化合物對(duì)松材線蟲的毒性顯著提高。對(duì)意大利蜜蜂(Apismellifera)AChE 的研究得出了類似的結(jié)論,Am-ACE-2錨定于細(xì)胞質(zhì)膜上,催化活性高,在突觸間發(fā)揮作用,而Am-ACE-1是以可溶性的形式存在,對(duì)抑制劑不敏感,起到隔絕外源性物質(zhì)的作用[3,32]。Bx-ACE-3的功能類似于脊椎動(dòng)物丁酰膽堿酯酶(butyrylcholinesterase, BuChE, EC 3.1.1.8),在脊椎動(dòng)物中已經(jīng)證明了BuChE作為生物清除劑這一功能,它能夠在神經(jīng)藥劑到達(dá)作用位點(diǎn)前進(jìn)行攔截,削弱其致死效應(yīng)[3334]。所以Bx-ACE-3被認(rèn)為是一種隔離蛋白,通過非特異性地結(jié)合有毒的外源性物質(zhì),來保護(hù)神經(jīng)系統(tǒng)免受損害,而在突觸傳遞中發(fā)揮很小的作用。研究還得出Bx-ACE-3與內(nèi)源的松樹樹脂萜烯相互作用,松材線蟲可能已經(jīng)進(jìn)化出了基于Bx-ACE-3的抵抗anti-AChE萜烯化合物的化學(xué)防御系統(tǒng)[27],類似的研究還包括植物精油中的植物化學(xué)物質(zhì)對(duì)于松材線蟲和簡(jiǎn)單異尖線蟲有防治效果是因?yàn)橐种屏薃ChE活性[3536],植物中的天然毒物對(duì)于松材線蟲病的防治具有很好的效果[37]。Bx-ACE-3作為化學(xué)防御外源性物質(zhì)的生物清除劑這一角色為AChE功能的多樣性提供了一個(gè)重要的見解[27]。
有機(jī)磷類和氨基甲酸酯類等非熏蒸性殺蟲劑作用于AChE,這些藥劑的廣泛濫用會(huì)造成一些昆蟲、線蟲對(duì)其產(chǎn)生抗藥性。在馬鈴薯甲蟲(Leptinotarsadecemlineata)、棉蚜(Aphisgossypii)、小菜蛾(Plutellaxylostella)、二化螟(Chilosuppressalis)等多種昆蟲中發(fā)現(xiàn)了抗藥性[3839]。對(duì)寄生于羊、馬、牛等動(dòng)物上的寄生線蟲的研究發(fā)現(xiàn),羊的捻轉(zhuǎn)血矛線蟲(Haemonchuscontortus)等多種動(dòng)物胃腸道寄生線蟲對(duì)藥劑產(chǎn)生了抗藥性[40]。丁中發(fā)現(xiàn)不同地理種群的甘薯莖線蟲對(duì)滅線磷的敏感性存在差異,抗性種群抗藥性水平是敏感種群的2~4倍,AChE對(duì)殺線蟲劑的反應(yīng)與AChE各類型的分布和相對(duì)含量相關(guān),不同AChE類型量的變化會(huì)引起抗性[6]。張博的研究表明有機(jī)磷和氨基甲酸酯類等非熏蒸性殺蟲劑只是起到麻痹線蟲的作用,蟲體還有復(fù)蘇的可能,這會(huì)誘使線蟲產(chǎn)生抗藥性[41]。植物寄生線蟲抗藥性產(chǎn)生的原因在廣度和深度上還需要進(jìn)一步研究,這將對(duì)于延緩線蟲抗藥性的產(chǎn)生、制定合理的線蟲綜合防治策略、保障農(nóng)業(yè)生產(chǎn)安全具有重要作用。
[1]Abad P, Gouzy J, Aury J M, et al. Genome sequence of the metazoan plant parasitic nematodeMeloidogyneincognita[J]. Nature Biotechnology, 2008, 26(8):909915.
[2]王亞輝. 秀麗隱桿線蟲(Caenorhabditiselegans)—一個(gè)研究神經(jīng)系統(tǒng)的最簡(jiǎn)單模型[J]. 中國神經(jīng)科學(xué)雜志, 2000, 16(1):6064.
[3]Lee S H, Kim Y H, Kwon D H, et al. Mutation and duplication of arthropod acetylcholinesterase:Implications for pesticide resistance and tolerance [J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2015, 120:118124.
[4]張明, 李盾, 陳儀本, 等. 乙酰膽堿酯酶分子生物學(xué)研究進(jìn)展[J].農(nóng)藥, 2006, 45(1):811.
[5]Opperman C H, Chang S. Nematode acetylcholinesterases:molecular forms and their potential role in nematode behavior[J]. Parasitology Today, 1992, 8(12):406411.
[6]丁中. 不同種群甘薯莖線蟲對(duì)乙酰膽堿酯酶抑制劑的敏感性差異及機(jī)理[D]. 長沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2007:116.
[7]Massoulie J, Anselment A, Bon S, et al. The polymorphism of acetylcholinesterase:post-translational processing, quaternary associations and localization [J]. Chemico-Biological Interactions, 1999, 119:2942.
[8]Kim Y H, Kwon D H, Ahn H M, et al. Induction of soluble AChE expression via alternative splicing by chemical stress inDrosophilamelanogaster[J].Insect Biochemistry and Molecular Biology, 2014, 48:7582.
[9]Selkirk M E, Lazari O, Hussein A S, et al. Nematode acetylcholinesterases are encoded by multiple genes and perform non-overlapping functions[J]. Chemico-Biological Interactions, 2005, 157:263268.
[10]Combes D, Fedon Y, Grauso M, et al. Four genes encode acetylcholinesterases in the nematodesCaenorhabditiselegansandCaenorhabditisbriggsae, cDNA sequences, genomic structures, mutations and in vivo expression [J]. Journal of Molecular Biology, 2000, 300(4):727742.
[11]Chang S, Opperman C H. Characterization of acetylcholinesterase molecular forms of the root-knot nematode,Meloidogyne[J]. Molecular and Biochemical Parasitology, 1991, 49(2):205214.
[12]Chang S, Opperman C H. Separation and characterization ofHeteroderaglycinesacetylcholinesterase molecular forms [J]. Journal of Nematology, 1992, 24(1):148155.
[13]Opperman C H, Chang S . Effects of aldicarb and fenamiphos on acetylcholinesterase and motility ofCaenorhabditiselegans[J]. Journal of Nematology, 1991,23(1):2027.
[14]Massoulié J, Bon S, Perrier N, et al. The C-terminal peptides of acetylcholinesterase:Cellular trafficking, oligomerization and functional anchoring[J]. Chemico-Biological Interactions, 2005, 157:314.
[15]Pezzementi L, Krejci E, Chatonnet A, et al. A tetrameric acetylcholinesterase from the parasitic nematodeDictyocaulusviviparusassociates with the vertebrate tail proteins PRiMA and ColQ [J]. Molecular and Biochemical Parasitology, 2012, 181(1):4048.
[16]Ogilvie B M, Rothwell T L, Bremner K C, et al. Acetylcholinesterase secretion by parasitic nematodes. I .Evidence for secretion of the enzyme by a number of species[J]. International Journal for Parasitology, 1973, 3(5):589597.
[17]Pritchard D I, Leggett K V, Rogan M T, et al.Necatoramericanussecretory acetylcholinesterase and its purification from excretory-secretory products by affinity chromatography[J]. Parasite Immunology, 1991, 13(2):187199.
[18]Podolska M, Nadolna K. Acetylcholinesterase secreted byAnisakissimplexlarvae (Nematoda:Anisakidae) parasitizing herring, Clupea harengus:an inverse relationship of enzyme activity in the host-parasite system[J]. Parasitology Research, 2014, 113(6):22312238.
[19]Kim Y H, Lee S H. Which acetylcholinesterase functions as the main catalytic enzyme in the Class Insecta?[J]. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 2013, 43(1):4753.
[20]Culetto E, Combes D, Fedon Y, et al. Structure and promoter activity of the 5′ flanking region oface-1, the gene encoding acetylcholinesterase of class A inCaenorhabditiselegans[J]. Journal of Molecular Biology, 1999, 290(5):951966.
[21]Piotte C,Arthaud L,Abad P,et al.Molecular cloning of an acetylcholinesterase gene from the plant parasitic nematodes,MeloidogyneincognitaandMeloidogynejavanica[J]. Molecular and Biochemical Parasitology,1999, 99(2):247256.
[22]Laffaire J B, Jaubert S, Abad P, et al.Molecular cloning and life stage expression pattern of a new acetylcholinesterase gene from the plant parasitic nematodeMeloidogyneincognita[J]. Nematology, 2003, 5:213217.
[23]丁中, 彭德良, 黃文坤, 等. 甘薯莖線蟲乙酰膽堿酯酶基因Dd-ace-2全長cDNA的克隆和序列分析[J].生物工程學(xué)報(bào), 2008, 24(2):239244.
[24]丁中, 彭德良, 高必達(dá),等.甘薯莖線蟲乙酰膽堿酯酶基因ace-3全長cDNA的克隆和序列分析[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2008, 16(2):326331.
[25]熊玉芬. 松材線蟲乙酰膽堿酯酶基因Bx-ace-2克隆和序列分析及RNAi研究[D]. 南京:南京農(nóng)業(yè)大學(xué), 2009:78.
[26]Kang J S, Lee D W, Choia J Y, et al. Three acetylcholinesterases of the pinewood nematode,Bursaphelenchusxylophilus:insights into distinct physiological functions [J]. Molecular and Biochemical Parasitology, 2011, 175(2):154161.
[27]Kang J S, Lee D W, Koh Y H, et al. A soluble acetylcholinesterase provides chemical defense against xenobiotics in the pinewood nematode [J]. PLoS ONE, 2011, 6(4):e19063.
[28]Combes D, Fedon Y, Toutant J P, et al. Multipleacegenes encoding acetylcholinesterases ofCaenorhabditiseleganshave distinct tissue expression[J]. European Journal of Neuroscience, 2003, 18(3):497512.
[29]Costa J C, Lilley C J, Atkinson H J, et al. Functional characterisation of a cyst nematode acetylcholinesterase gene usingCaenorhabditiselegansas a heterologous system [J]. International Journal for Parasitology, 2009, 39(7):849858.
[30]丁中, 彭德良, 高必達(dá). 線蟲乙酰膽堿酯酶研究進(jìn)展[J]. 植物保護(hù), 2008, 34(3):1821.
[31]Kang J S, Moon Y S, Lee S H. Inhibition properties of three acetylcholinesterases of the pinewood nematodeBursaphelenchusxylophilusby organophosphates and carbamates [J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2012, 104(2):157162.
[32]Kim Y H, Cha D J, Jung J W, et al. Molecular and kinetic properties of two acetylcholinesterases from the western honey bee,Apismellifera[J]. PLoS ONE, 2012, 7(11):e48838.
[33]Lenz D E, Maxwell D M, Koplovitz I, et al. Protection against soman or VX poisoning by human butyrylcholinesterase in guinea pigs and cynomolgus monkeys[J]. Chemico-Biological Interactions, 2005, 157:205210.
[34]Cerasoli D M, Griffiths E M, Doctor B P, et al.Invitroandinvivocharacterization of recombinant human butyrylcholinesterase (Protexia (TM)) as a potential nerve agent bioscavenger[J]. Chemico-Biological Interactions, 2005, 157:363365.
[35]Kang J S, Kim E, Lee S H, et al. Inhibition of acetylcholinesterases of the pinewood nematode,Bursaphelenchusxylophilus, by phytochemicals from plant essential oils[J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2013, 105(1):5056.
[36]Gómez-Rincón C, Langa E, Murillo P, et al. Activity of tea tree (Melaleucaalternifolia) essential oil against L3 larvae ofAnisakissimplex[J]. BioMed Research International, 2014, 2014:549510.
[37]Kang J S, Moon Y S, Lee S H, et al. Inhibition of acetylcholinesterase and glutathioneS-transferase of the pinewood nematode (Bursaphelenchusxylophilus) by aliphatic compounds [J]. Pesticide Biochemistry and Physiology, 2013, 105(3):184188.
[38]Mutero A, Pralavorio M, Bride J M,et al. Resistance-associated point mutations in insecticide-insensitive acetylcholinesterase [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1994, 91(13):59225926.
[39]Fournier D. Mutations of acetylcholinesterase which confer insecticide resistance in insect populations [J]. Chemico-Biological Interactions, 2005, 157:257261.
[40]李國勤, 張雪娟. 牛羊線蟲抗藥性及其PCR檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2002, 23(5):2224.
[41]張博. 山東省不同地區(qū)蔬菜根結(jié)線蟲的抗藥性差異與化學(xué)防治研究[D]. 泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué), 2002.
(責(zé)任編輯:田喆)
Research progress on structure and function of acetylcholinesterase in plant parasitic nematodes
Wu Qingsong,Peng Deliang,Huang Wenkun
(State Key Laboratory for Biology of Plant Diseases and Insect Pests, Institute of Plant Protection, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing100193, China)
The acetylcholinesterase hydrolyzes the concerned neurotransmitter acetylcholine to ensure the normal delivery of nerve signals in the organism and regulates the normal muscle activity, which plays an important role in the process of biological nerve conduction. Acetylcholinesterases of plant parasitic nematodes exist in diverse molecular forms,which are encoded by different genes. Those forms undertake different functions such as chemoreceptivity, movement, feeding, and resistance of nematicides. This review gives a brief introduction on the advance of molecular forms, structure, function, histochemical expression and nematicidal resistance of acetylcholinesterase in plant parasitic nematodes.
plant parasitic nematodes;acetylcholinesterase;molecular form;gene function;nematicidal resistance
20150428
20150720
國家自然科學(xué)基金 (31272022);公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(201103018);國家科技支撐計(jì)劃(2012BAD19B06)
E-mail:wkhuang2002@163.com
S 432.45
A
10.3969/j.issn.05291542.2016.03.003