養(yǎng)殖水溫對星洲紅魚生長、消化和免疫的影響

黃永春（集美大學水產學院，廈門361021）

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養(yǎng)殖水溫對星洲紅魚生長、消化和免疫的影響

黃永春
（集美大學水產學院，廈門361021）

摘 要：為研究不同養(yǎng)殖水溫對星洲紅魚的生長、消化和免疫的影響，選取300尾體長為（12．5±1．5）cm，體重為（25．1±2．3）g的健康星洲紅魚分別在溫度為15、20、25、30和35℃的水體中飼養(yǎng)40 d。每一溫度設3個重復，每個重復20尾星洲紅魚。結果表明：各養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚的特定生長率表現(xiàn)為30℃＞35℃＞25℃＞20℃＞15℃，且組間差異顯著（P＜0．05）；特定生長率（y）與養(yǎng)殖水溫（x）的回歸關系為：y＝－0．118 2x3＋0．917x2－1．457 5x＋1．082 7（r＝0．997 8）。各組星洲紅魚的成活率為86．67%～98．33%，在15℃時最高，在35℃時最低，除30與25℃組間差異不顯著（P＞0．05）外，其他組間差異顯著（P＜0．05）。飼料系數(shù)表現(xiàn)為35℃＞25℃＞30℃＞20℃＞15℃，除15和35℃組間差異顯著（P＜0．05）外，其他組間差異不顯著（P＞0．05）。隨養(yǎng)殖水溫從15℃升高到30℃，各組肌肉RNA／DNA逐步上升，在35℃時又有所下降，除15與20℃組間差異不顯著（P＞0．05）外，其他組間差異顯著（P＜0．05）。星洲紅魚肝胰腺、腸和胃蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶活性均隨養(yǎng)殖水溫的升高先上升后下降，其中蛋白酶和淀粉酶活性在30℃以后開始下降，而脂肪酶活性在25℃以后開始下降。除25和35℃組的淀粉酶活性以及20與30℃組的脂肪酶活性差異不顯著（P＞0．05）外，各消化酶活性在各組間差異顯著（P＜0．05）。星洲紅魚血清酸性磷酸酶（ACP）、堿性磷酸酶（AKP）、超氧化物歧化酶（SOD）和過氧化物酶（POD）活性均在30℃達到最高，在35℃時間有所下降。除血清SOD活性外，血清AKP、ACP和POD活性在25和35℃組間差異不顯著（P＞0．05），其他組間差異顯著（P＜0．05）。由此得出，養(yǎng)殖水溫在27～34℃時星洲紅魚生長快、消化能力強、免疫相關酶活性高；通過回歸分析得出，當養(yǎng)殖水溫為31℃時星洲紅魚的生長最佳。

關鍵詞：星洲紅魚；養(yǎng)殖水溫；生長；消化酶；免疫酶

星洲紅魚（Singapore red tilapia，O．mossambi?cus）屬鱸形目鱺魚科羅非魚屬種間雜交的一個品種，由新加坡、臺灣等地的養(yǎng)殖專家經過20余年的不斷改良而成，其體色鮮紅、生長快，當年魚苗可長至800～1 300 g，是集觀賞、養(yǎng)殖、垂釣于一體，具有養(yǎng)殖前景的羅非魚新品種［1］。

環(huán)境溫度是水生動物重要的外界環(huán)境因子之一，影響魚類正常的生理活動和行為特征。因此，溫度變化不僅影響魚類的攝食生長［2－9］、飼料轉化率［4，7－8］，還影響其消化酶活性［5，7，10－14］、免疫功能［14－17］，進而影響魚類機體的新陳代謝和生理調節(jié)機制。目前，有關環(huán)境溫度對羅非魚消化酶活性影響的研究僅見王輝等［7］、黎軍勝等［11］報道的環(huán)境溫度對奧尼羅非魚（Oreochromis niloticus×O．aureus）成魚消化酶活性的影響。養(yǎng)殖水溫對星洲紅魚生長、消化酶和血液免疫因子活性的影響尚未見報。本試驗設置15、20、25、30、35℃5個養(yǎng)殖水溫，通過40 d的飼養(yǎng)研究星洲紅魚在不同水溫下的生長性能、肌肉RNA／DNA、消化酶（蛋白酶、脂肪酶、淀粉酶）及免疫相關酶［堿性磷酸酶（AKP）、酸性磷酸酶（ACP）、超氧化物歧化酶（SOD）和過氧化物酶（POD）］活性的變化規(guī)律，為星洲紅魚養(yǎng)殖提供科學依據(jù)，并為進一步開展星洲紅魚配合飼料的研制提供基礎資料和理論依據(jù)，促進星洲紅魚養(yǎng)殖產業(yè)發(fā)展。

1　材料與方法

1．1 試驗用魚

試驗用星洲紅魚來自集美羅非魚養(yǎng)殖場。選擇健康、規(guī)格一致，體長為（12．5±1．5）cm，體重為（25．1±2．3）g的星洲紅魚，暫養(yǎng)1周左右以適應養(yǎng)殖環(huán)境，暫養(yǎng)水溫為22．3℃。

1．2 試驗設計

星洲紅魚經暫養(yǎng)適應后開始正式試驗。試驗設15、20、25、30、35℃共5個養(yǎng)殖水溫，每一溫度設3個重復，每個重復20尾星洲紅魚，以重復為單位置于25 cm×30 cm×50 cm的水族箱中。應用大連匯新科技發(fā)展有限公司生產的海鮮蓄養(yǎng)智能控溫儀控制降溫，以暫養(yǎng)水溫22．3℃為基準，分別以每12 h升或降0．5℃的控溫速度到達各試驗溫度，試驗期間投喂羅非魚商品飼料（含28%粗蛋白質），根據(jù)星洲紅魚的活動、攝食情況，每天投喂2次，日投喂量為體重的3%～5%，定期記錄存活尾數(shù)，試驗期為40 d。

1．3 樣品制備

試驗結束后，禁食24 h取樣，從每一試驗溫度中取18尾（每個重復中隨機抽取星洲紅魚6尾），分別用1 mL注射器在魚尾椎動（靜）脈取血，于4℃下經10 000 r／min離心20 min，制備血清，將血清放于－80℃冰箱保存?zhèn)溆?。記錄體重后將魚置于冰盤活體剖開，取出胃、肝胰腺、腸和背部肌肉，剔除附著物，用預冷的重蒸水清洗后用濾紙吸干，裝袋，稱重后液氮保存用于測定胃、肝胰腺、腸消化酶活性及肌肉RNA／DNA。

各組剩余試驗魚測體重，記錄備案。

1．4 指標測定

1．4．1 生長性能測定

飼養(yǎng)結束后，測量各組魚的體重，各生長性能指標采用以下公式計算：

平均日增重（ADG，g／d）＝（W2－W1）／t；

飼料系數(shù)（FCR）＝G／（W2－W1）；

特定生長率（SGR，%／d）＝100×（lnW2－lnW1）／t；

存活率（SR，%）＝100×Nt／N0。

式中：W1為初始平均體重（g）；W2為終末平均體重（g）；t為試驗天數(shù)（d）；G為消耗的飼料重（g）；Nt每個重復中的存活尾數(shù)；N0為每個重復中的投放尾數(shù)。

1．4．2 消化器官（肝胰腺、腸和胃）消化酶活性測定

將各消化器官樣品取出解凍后，按重量∶體積＝1∶10（g／mL）加入預冷重蒸水，用玻璃勻漿器冰浴勻漿后于4℃、4 000 r／min離心機離心20 min，取上清液即為粗酶提取液，并于4℃冰箱中保存?zhèn)溆茫?4 h內完成測定。

蛋白酶活性采用福林酚試劑法測定，淀粉酶活性采用3，5－二硝基水楊酸比色定糖法測定，脂肪酶活性采用聚乙烯醇橄欖油乳化液水解法測定，反應溫度對應各養(yǎng)殖水溫（15、20、25、30和35℃）。

組織蛋白質濃度采用考馬斯亮藍染色法測定。各消化酶的活性均以比活力（U／mg prot）表示。

1．4．3 肌肉RNA／DNA測定

RNA／DNA測定采用Buckley［18］的方法進行，并略作修改。

1．4．4 血清免疫相關酶活性測定

AKP、ACP、SOD和POD活性均采用南京建成生物工程研究所生產的試劑盒測定。

1．5 數(shù)據(jù)分析與處理

試驗數(shù)據(jù)以平均值±標準差表示，采用SPSS 10．0軟件進行統(tǒng)計分析，差異顯著水平為P＜0．05。

2　結果與分析

2．1 不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚的生長性能

養(yǎng)殖水溫與星洲紅魚的生長關系密切，隨著養(yǎng)殖水溫的上升，星洲紅魚的平均日增重和特定生長率逐步增加，當養(yǎng)殖水溫達30℃時二者達到高峰，35℃后呈下降趨勢。在各養(yǎng)殖水溫下，星洲紅魚的平均日增重和特定生長均表現(xiàn)為30℃＞35℃＞25℃＞20℃＞15℃，且組間差異顯著（P＜0．05）（表1）。特定生長率（y）與養(yǎng)殖水溫（x）的回歸關系：y＝－0．118 2x3＋0．917x2－1．457 5x＋1．082 7（r＝0．997 8）（圖1），經分析得出，養(yǎng)殖水溫在27～34℃之間時星洲紅魚的特定生長率＞2．0；當養(yǎng)殖水溫為31℃時，星洲紅魚的特定生長率最高，為2．380。

養(yǎng)殖水溫為15℃時星洲紅魚的存活率最高，為98．33%，35℃時存活率最低，為86．67%（表1），15與35℃組星洲紅魚的存活率與其他各組差異顯著（P＜0．05），其他各組之間差異不顯著（P＞ 0．05）。

星洲紅魚在不同養(yǎng)殖水溫下飼料系數(shù)各不相同，表現(xiàn)為35℃＞25℃＞30℃＞20℃＞15℃，15 和35℃組的飼料系數(shù)與其他各組差異顯著（P＜0．05），20、25和30℃組的飼料系數(shù)差異不顯著（P＞0．05）（表1）。

表1　不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚的生長性能Table 1　Growth performance of Singapore red tilapia cultured in different water temperature

2．2 不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚肌肉RNA／DNA

在15、20、25、30、35℃養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚肌肉RNA／DNA分別為1．23±0．12、1．51±0．12、2．01±0．19、2．55±0．22和2．80±0．20，除15與20℃組間差異不顯著（P＞0．05）外，其他各組間差異顯著（P＜0．05），且肌肉RNA／DNA隨養(yǎng)殖水溫的升高先逐步上升，至30℃時達最高，爾后開始下降（圖2）。

圖1　養(yǎng)殖水溫與星洲紅魚特定生長率的回歸關系Fig．1　Regression relation between culture water temperature and SGR of Singapore red tilapia

圖2　不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚肌肉RNA／DNAFig．2　Muscle RNA／DNA of Singapore red tilapiacultured in different water temperature

2．3 不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚消化器官消化酶活性

2．3．1 蛋白酶活性

如表2所示，星洲紅魚肝胰腺、腸和胃蛋白酶活性均先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，在30℃以后隨養(yǎng)殖水溫的升高開始下降。星洲紅魚肝胰腺、腸和胃蛋白酶活性均表現(xiàn)為15℃＜20℃＜25℃＜35℃＜30℃，組間差異顯著（P＜0．05）。在相同養(yǎng)殖水溫條件下，星洲紅魚消化器官中蛋白酶活性大小均為腸＞胃＞肝胰腺，且腸與胃和肝胰臟相比差異顯著（P＜0．05）。

2．3．2 淀粉酶活性

如表2所示，星洲紅魚肝胰腺、腸和胃淀粉酶活性均先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，在30℃以后隨著養(yǎng)殖水溫的升高開始下降。星洲紅魚肝胰腺、腸和胃淀粉酶活性均表現(xiàn)為15℃＜20℃＜35℃＜25℃＜30℃，25和35℃組間差異不顯著（P＞0．05），其余各組間差異顯著（P＜0．05）。在相同養(yǎng)殖水溫條件下，星洲紅魚消化器官中淀粉酶活性大小均為肝胰腺＞腸＞胃，除15℃下肝胰臟與腸道淀粉酶活性差異不顯著（P＞0．05）外，其他養(yǎng)殖水溫下不同消化器官間顯著差異（P＜0．05）。

2．3．3 脂肪酶活性

如表2所示，星洲紅魚肝胰腺、腸和胃脂肪酶活性均先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，在25℃以后隨著養(yǎng)殖水溫的升高開始下降。星洲紅魚肝胰腺、腸和胃脂肪酶活性均表現(xiàn)為15℃＜20℃＜35℃＜30℃＜25℃，除20與30℃組肝胰腺和腸脂肪酶活性差異不顯著（P＞0．05）外，其他各組之間差異顯著（P＜0．05）。在相同養(yǎng)殖水溫條件下，星洲紅魚消化器官中脂肪酶活性大小均為腸＞胃＞肝胰臟，且不同消化器官間顯著差異（P＜0．05）。

表2　不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚消化酶活性Table 2　Digestive enzyme activities of Singapore red tilapia cultured indifferent water temperature　U／mg prot

2．4 不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚的血清免疫相關酶活性

2．4．1 AKP活性

在15、20、25、30和35℃水溫下，星洲紅魚血清AKP活性先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，30℃達到最高，而后開始下降，分別為（2．75± 0．30）U／mL、（4．65±0．94）U／mL、（6．74± 0．58）U／mL、（10．01±1．03）U／mL、（6．70± 1．08）U／mL，除了25和35℃組間差異不顯著（P＞0．05）外，其他組間差異顯著（P＜0．05）（圖3）。2．4．2 ACP活性

在15、20、25、30和35℃水溫下，星洲紅魚血清ACP活性先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，30℃達到最高，而后開始下降，分別為（7．68±1．30）U／mL、（12．45±1．09）U／mL、（19．08± 2．03）U／mL、（27．41±0．47）U／mL、（18．56± 2．21）U／mL，除了25和35℃組間差異不顯著（P＜0．05）外，其他組間差異顯著（P＜0．05）（圖3）。

2．4．3 SOD活性

在15、20、25、30和35℃水溫下，星洲紅魚血清SOD活性先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，30℃達到最高，而后開始下降，分別為（22．88± 2．10）U／mL、（43．66±2．94）U／mL、（60．67± 3．11）U／mL、（72．06±5．44）U／mL、（70．63± 3．88）U／mL。除了30和35℃組間差異不顯著（P＞0．05）外，其他各組間差異顯著（P＜0．05）（圖3）。

2．4．4 POD活性

在15、20、25、30和35℃水溫下，星洲紅魚血清POD活性先隨養(yǎng)殖水溫的升高而上升，30℃達到最高，而后開始下降，分別為（36．56± 3．58）U／mL、（68．22±6．25）U／mL、（95．81± 11．17）U／mL、（135．22±6．27）U／mL、（113．89± 10．46）U／mL，各組間差異顯著（P＜0．05）（圖3）。

圖3　不同養(yǎng)殖水溫下星洲紅魚血清AKP、ACP、SOD、POD活性Fig．3　Activities of serum AKP，ACP，SOD and POD of Singapore red tilapia cultured in different water temperature

3　討 論

3．1 養(yǎng)殖水溫與生長

魚類的生長取決于魚類的采食量，對飼料的消化、吸收以及轉變?yōu)闄C體組織的效率，而養(yǎng)殖水溫是影響魚類生長與存活最重要的環(huán)境因子［9］。本研究發(fā)現(xiàn)，星洲紅魚在15℃的養(yǎng)殖水溫下，雖然成活率最高（98．33%），飼料系數(shù)最低（1．04），但在該水溫下星洲紅魚的活動差、攝食弱，吸收以及轉變?yōu)闄C體組織的效率也差，生長緩慢；隨養(yǎng)殖水溫升高，星洲紅魚搶食強、飼料利用率高、生長速度明顯加快。經回歸分析得出，在養(yǎng)殖水溫27～34℃范圍內星洲紅魚的特定生長率＞2．0，當水溫31℃時，星洲紅魚的特定生長率最高，達2．380。這與奧尼羅非魚仔稚魚在22～31℃范圍內時生長速度隨溫度升高而加快，31℃時達到最高，但34℃時開始降低一致［7］，也與Azaza等［6］在尼羅羅非魚幼魚上所得結果基本相同。另外，高淳仁等［5］報道，大菱鲆（Scophthalmus maximus）幼魚在水溫為12～16℃時生長最快，水溫高于20℃時生長速度明顯下降；Burel等［3］報道，鯰魚（Silurus asotus）的采食量隨著養(yǎng)殖水溫的升高明顯升高，飼料轉化效率明顯提高，當水溫達到22．8℃時，鯰魚的采食量和飼料轉化效率最高；超過22．8℃以后，鯰魚的采食量和飼料轉化效率將會下降而影響生長。王輝等［7］和Xie等［2］認為：當養(yǎng)殖水溫超過某一臨界值時，該水溫條件成為魚類生長的脅迫因子，使生長速度減慢，過高的水溫可能已使體內的代謝發(fā)生紊亂，且水溫的升高對魚類的生長有正面和反面2種作用。因此，結合特定生長率與養(yǎng)殖水溫的回歸分析，本試驗認為31℃可能是星洲紅魚養(yǎng)殖水溫的臨界點，確切水溫還有待進一步研究。

另外，在蛋白質合成的生化過程中，信使RNA和轉運RNA是重要的參與者，當?shù)鞍踪|合成速度加快時，RNA濃度增加，因而RNA的濃度是測定生物生長率的敏感指標［18］。而細胞中細胞核內DNA數(shù)目恒定，且含量不隨環(huán)境條件的改變而發(fā)生變化，RNA／DNA可以作為魚類種群長期生長狀況評價指標［19］，因此RNA／DNA比單獨的RNA濃度更能精確地反映生長狀況［20］。本研究結果表明，星洲紅魚在15～35℃水溫條件下肌肉RNA／DNA隨水溫升高逐步上升，至30℃時最高，而后開始下降，這與表觀生長性能相一致。

3．2 養(yǎng)殖水溫與消化酶活性

魚類消化酶活性的高低決定魚類對營養(yǎng)物質消化吸收的能力，從而決定魚類生長發(fā)育的速度。在一定溫度范圍內，隨著反應溫度的升高，酶催化反應的速度加快，并在某一溫度下酶活性達到最大值，但超過一定數(shù)值后，酶催化反應的速度反而隨溫度的升高而減慢。本研究表明：星洲紅魚的消化酶活性隨養(yǎng)殖水溫的升高明顯呈現(xiàn)先升后降的趨勢，水溫在15～35℃范圍內時，在30℃時蛋白酶和淀粉酶活性達到最高，而后開始下降；脂肪酶活性則在25℃時達到最高，而后開始下降。區(qū)又君等［21］在19～31℃養(yǎng)殖水溫下，卵形鯧鲹（Trachinotus ovatus）幼魚蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶活性隨水溫的升高均呈先上升后下降的趨勢，蛋白酶活性在28℃時最高，淀粉酶活性在25℃時最高，脂肪酶活性在22℃時最高；劉洋等［14］研究得出細鱗魚（Brachymystax lenok）幼魚在水溫6、14 和22℃時消化器官（胃、幽門盲囊、肝臟和腸）中的蛋白酶、淀粉酶和脂肪酶活性均在14℃時最高；田宏杰等［13］報道14、21、28℃水溫下飼養(yǎng)施氏鱘（Acipenser schrenckii Brandt）幼魚的肝臟蛋白酶活性均以21℃時最高，十二指腸和胃蛋白酶活性則在28℃時最高，淀粉酶活性在21℃時最高；脂肪酶活性在14℃時最高。上述結果與本試驗結果基本一致。然而，王輝等［7］報道奧尼羅非魚仔稚魚養(yǎng)殖水溫在22～34℃時，胃蛋白酶、胰蛋白酶和淀粉酶活性隨養(yǎng)殖水溫的升高而持續(xù)上升，均在34℃時最高；脂肪酶活性在31℃時最高；黎軍勝等［11］報道奧尼羅非魚養(yǎng)殖水溫在17～32℃時，消化酶活性隨著水溫的升高而上升。這與本試驗結果有差異。研究表明，在一定溫度范圍內，升高養(yǎng)殖水溫，魚類腸道蠕動加快，攝食能力增強，標準代謝增強［7］，但此種正相關不是無限的，對于魚類來說，有一個極限溫度，在這個極限溫度以上，機體代謝紊亂，生長速度變慢，消化酶的活性也會隨著溫度的升高而呈逐漸下降趨勢［9］。對此，劉紅等［12］在研究溫度對條紋石鮨（Morone saxatilis）蛋白酶活性影響時發(fā)現(xiàn)，水溫較低時（15℃），由于儲存作用相對較大，代謝水平不高，故其蛋白酶活性最高；隨著水溫的上升，代謝作用明顯增強，蛋白酶活性也會隨之下降。養(yǎng)殖水溫除了直接影響消化酶的活性外，還通過調節(jié)機體的代謝，改變體內的離子濃度、pH等，從而間接影響消化酶活性，因此養(yǎng)殖水溫比反應溫度更顯著地影響消化酶活性。

3．3 養(yǎng)殖溫度與血清免疫相關酶活性的關系

AKP和ACP是體內最重要的2種水解酶，廣泛存在于動物血液和各種器官內，可以加速物質的攝取和轉運，形成水解酶體系，破壞和消除侵入體內的異物，達到機體防御的功能，是評價動物生理代謝水平的一項重要指標［22］。本研究結果表明，星洲紅魚血清AKP、ACP活性隨著養(yǎng)殖水溫的升高先上升，30℃達到最高，而后開始下降。這可能是因為在水溫（低溫和高溫）脅迫下，星洲紅魚細胞生理代謝效率降低，代謝水平下降，從而導致在細胞中的AKP和ACP活性下降。方美娟等［17］報道低溫和高溫都會使花魚骨（Hemibarbus macu?latus）的血清中AKP、ACP活性顯著降低，導致免疫力下降，出現(xiàn)死亡；王天神等［23］報道水溫為10～15℃時，克氏原螯蝦（Procumburus clurkii）血液中AKP、ACP的活性保持穩(wěn)定，20℃時二者活性達到峰值，水溫繼續(xù)升高時二者活性逐漸降低。上述結果與本試驗結果基本一致。

SOD和POD是生物體內非常重要的2種抗氧化酶，特別是SOD，能清除超氧陰離子自由基，促使O－2歧化為過氧化氫（H2O2）和水（H2O），隨后過氧化氫酶（CAT）再將H2O2催化為H2O和氧氣（O2），從而達到為機體解毒的目的。在此過程中POD起到催化H2O2反應的作用，是抗氧化防御系統(tǒng)的關鍵酶［24］。本研究中，隨養(yǎng)殖水溫的升高，星洲紅魚血清SOD和POD活性逐步提高，這表明星洲紅魚隨水溫的升高可以使魚體代謝加快及耗氧量增加，加快氧自由基的產生，從而引起抗氧化酶活性的升高，維持機體代謝平衡，提高機體的免疫力和抗病力。但長期在高溫（35℃）下脅迫，星洲紅魚血清SOD和POD活性開始下降，清除自由基的能力則減弱，過多的自由基如不能被及時清除，將損害機體細胞和組織正常的生理機能和免疫防御能力，進而對病原生物的易感性提高［25］，因此35℃時其成活率最低。這與李大鵬等［15］報道的中華鱘（Acipenser sinensis Gray）血清SOD活性在12～31℃范圍內隨養(yǎng)殖水溫的升高先升后降，26℃時SOD活性最高，26℃之后，SOD活性略有下降的結果一致。

4　結 論

由此得出，養(yǎng)殖水溫在27～34℃時星洲紅魚的生長快、消化能力強、免疫相關酶活性高；通過回歸分析得出，當養(yǎng)殖水溫為31℃時星洲紅魚的生長最佳。

參考文獻：

［1］ 黃永春，林祥日，許洪玉，等．星洲紅魚對溫度適應性的研究［J］．福建水產，2012，34（5）：398－404．

［2］ XIE X J，SUN R Y．The bioenergetics of the southern catfish（Silurus meridionalis Chen）：growth rate as a function of ration level，bady weight，and temperature ［J］．Journal of Fish Biology，1992，40（5）：719－730．

［3］ BUREL C，PERSON?LE RUYET J，GAUMET F，et al．Effects of temperature on growth and metabolism in juvenile turbot［J］．Journal of Fish Biology，1996，49 （4）：678－692．

［4］ BJ?RNSSON B，STEINARSSON A，ODDGEIRS?SON M．Optimal temperature for growth and feed con?version of immature cod（Gadus morhua L．）［J］．IC?ES Journal of Marine Science，2001，58（1）：29－38．

［5］ 高淳仁，王印庚，馬愛軍，等．溫度對大菱鲆幼魚生長、成活率和體內蛋白酶活性的影響［J］．海洋水產研究，2006，27（6）：33－36．

［6］ AZAZA M S，DHRA?EF M N，KRA?EM M M．Effects of water temperature on growth and sex ratio of juvenile Nile tilapia Oreochromis niloticus（Linnae?us）reared in geothermal waters in southern Tunisia ［J］．Journal of Thermal Biology，2008，33（2）：98－105．

［7］ 王輝，強俊，李瑞偉．溫度對奧尼羅非魚仔稚魚生長、飼料利用和消化酶活力的影響［J］．廣東海洋大學學報，2008，28（6）：14－19．

［8］ ?RNASON T，BJ?RNSSON B，STEINARSSON A，et al．Effects of temperature and body weight on growth rate and feed conversion ratio in turbot（Scophthalmus maximus）［J］．Aquaculture，2009，295（3／4）：218－225．

［9］ 歐陽利劍，郭學武．溫度對魚類攝食及生長的影響［J］．海洋科學集刊，2009（49）：87－95．

［10］ 劉紅，汲長海，施正鋒，等．溫度對條紋石鮨蛋白消化酶活性影響的初步研究［J］．水產科技情報，1998，25（3）：103－107．

［11］ 黎軍勝，李建林，吳婷婷．飼料成分與環(huán)境溫度對奧尼羅非魚消化酶活性的影響［J］．中國水產科學，2004，11（6）：585－588．

［12］ 趙東海．黃鱔消化酶活性與溫度的關系［J］．河北大學學報：自然科學版，2005，23（3）：323－325．

［13］ 田宏杰，莊平，章龍珍，等．水溫對施氏鱘幼魚消化酶活力的影響［J］．中國水產科學，2007，14（1）：126－131．

［14］ 劉洋，牟振波，徐革鋒，等．水溫對細鱗魚幼魚消化酶活性的影響［J］．水產學雜志，2011，24（3）：6－9．

［15］ 王文博，李愛華．環(huán)境脅迫對魚類免疫系統(tǒng)影響的研究概況［J］．水產學報，2002，26（4）：368－374．

［16］ 李大鵬，劉松巖，謝從新，等．水溫對中華鱘血清活性氧含量及抗氧化防御系統(tǒng)的影響［J］．水生生物學報，2008，32（3）：327－332．

［17］ 方美娟，劉凱，李智強，等．花血清免疫酶活力對水溫耐受性的研究［J］．浙江海洋學院學報：自然科學版，2010，29（4）：336－339．

［18］ BUCKLEY L J．Relationships between RNA／DNA ra?tio，prey density，and growth rate in Atlantic cod（Ga?dus morhua）larvae［J］．Journal of the Fisheries Re?search Board of Canada，1979，36（12）：1497－1502．

［19］ HOFER R．Protein digestion and proteolytic activity in the digestive tract of an Omnivorous cyprinid［J］．Comparative Biochemistry and Physiology Part A：Phtsiology，1982，72（1）：55－63．

［20］ HAINES T A．An evaluation of RNA／DNA ratio as a measure of long?term growth in fish populations［J］．Journal of the Fisheries Research Board of Canada，1973，30（2）：195－199．

［21］ 區(qū)又君，羅奇，李加兒，等．卵形鯧鲹消化酶活性的研究Ⅳ．養(yǎng)殖水溫和酶反應溫度對幼魚酶活性的影響［J］．海洋漁業(yè)，2011，33（1）：28－32．

［22］ MUTA T，IWANGA S．The role of hemolymph coagu?lation in innate immunity［J］．Current Opinion in Im?munology，1996，8（1）：41－47．

［23］ 王天神，周鑫，趙朝陽，等．不同溫度條件下克氏原螯蝦免疫酶活性變化［J］．江蘇農業(yè)科學，2012，40 （12）：239－241．

［24］ PARIHAR M S，JAVERI T，HEMNANI T，et al．Re?sponses of superoxide dismutase，glutathione peroxi?dase and reduced glutathione antioxidant defenses in gills of the freshwater catfish（Heteropneustes fossil?is）to short?term elevated temperature［J］．Journal of Thermal Biology，1997，22（2）：151－156．

［25］ 宋林生，季延賓，蔡中華，等．溫度驟升對中華絨螯蟹（Eriocheir sinensis）幾種免疫化學指標的影響［J］．海洋與湖沼，2004，35（1）：74－77．

Effects of Cultural Water Temperature on Growth，Digestion and Immune of Singapore Red Tilapia（O．mossambicus）

HUANG Yongchun

（責任編輯 菅景穎）

（Fishery College of Jimei University，Xiamen 361021，China）

Author，HUANG Yongchun，associate professor，E?mail：ychuang＠jmu．edu．cn

Abstract：In order to study the effects of different cultural water temperature on growth，digestion and im?munes of Singapore red tilapia（O．mossambicus），a total of 300 healthy Singapore red tilapia with the body weight of（25．1±2．3）g and body length of（12．5±1．5）cm were cultured at the water temperature was 15，20，25，30 and 35℃for 40 days，respectively．Each temperature had 3 replicates，and each replicate had 20 fish．The results showed that there was significant difference in the specific growth rate（SGR）at different cul?tural water temperature（P＜0．05），which was 30℃＞35℃＞25℃＞20℃＞15℃．The regression relation of SGR（y）and cultural water temperature（x）was：y＝－0．118 2x3＋0．917x2－1．457 5x＋1．082 7（r＝0．997 8）．The survival rate was 86．67%to 98．33%at different temperature，and the highest survival rate was at 15℃and the lowest survival rate was at 35℃，in which there was significant difference among different temperature groups（P＜0．05）except 30 and 25℃groups（P＞0．05）．The feed conversion ratio at different temperature was 30℃＞35℃＞25℃＞20℃＞15℃，in which there was no significant difference among different tempera?ture groups（P＞0．05）except 15 and 35℃groups（P＜0．05）．The muscle RNA／DNA was increased with cul?tural water temperature increasing from 15 to 30℃，and then decreased at 35℃，in which there were signifi?cant difference among different temperature groups（P＜0．05）except 15 and 20℃（P＞0．05）．The activities of protease，amylase and lipase of hepatopancreas，intestine and stomach were firstly increased and then de?creased with cultural water temperature increasing，in which the activities of protease and amylase were de?creased after 30℃and the activity of lipase were decreased after 25℃．There were significant difference a?mong different temperature groups（P＜0．05）except amylase activity at 25 and 35℃groups and lipase activity at 20 and 30℃groups（P＞0．05）．The activities of alkaline phosphatase（AKP），acid phosphatase（ACP），superoxide dismutase（SOD）and peroxydase（POD）in serum had the highest values at 30℃，and decreased at 35℃．Except serum SOD activity，there was significant diffenences in the activities of AKP，ACP and POD among different temperature groups（P＜0．05）except 25 and 35℃groups（P＞0．05）．Therefore，Singapore red tilapia grow faster with stronger digestive ability and higher immune enzyme activities when the water tem?perature is 27 to 34℃．Regression anaylsis result shows that Singapore red tilapia has the best growth when the water temperature is 31℃．［Chinese Journal of Animal Nutrition，2015，27（7）：2264?2271］

Key words：Singapore red tilapia（O．mossambicus）；cultural water temperature；growth；digestive enzyme；immune enzyme

作者簡介：黃永春（1966—），男，福建長汀人，副教授，博士，從事水產健康養(yǎng)殖和良種選育研究。E?mail：ychuang＠jmu．edu．cn

基金項目：福建省質量監(jiān)督局《星洲紅魚種質標準》（2011—2012）；李尚大集美大學學科建設基金“星洲紅魚（red tilapia）種質特性和養(yǎng)殖生態(tài)學的研究”（ZC2010001）

收稿日期：2015－02－09

doi：10．3969／j．issn．1006?267x．2015．07．034

文章編號：1006?267X（2015）07?2264?08

文獻標識碼：A

中圖分類號：S963