破骨樣細(xì)胞中骨保護(hù)素和 NF-κB配體受體的表達(dá)及其意義
聶斌管思明1張韶英方欣1周韶瓊1
(華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬武漢市中心醫(yī)院老年病科,湖北武漢430014)
摘要〔〕目的探討破骨樣細(xì)胞中骨保護(hù)素(OPG)和 NF-κB配體受體(RANKL)表達(dá)情況。方法單獨(dú)培養(yǎng)骨髓單核細(xì)胞前體,用巨噬細(xì)胞集落刺激因子(M-CSF)和維生素D誘導(dǎo)其轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞,在0、5、10、15 d用光鏡觀察和TRAP染色(抗酒石酸染色)評(píng)估破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化程度,用RT-PCR檢測(cè)OPG和RANKL的表達(dá)情況;然后構(gòu)建主動(dòng)脈中膜平滑肌細(xì)胞(SMC)與骨髓單核細(xì)胞前體共培養(yǎng)的模型,用維生素C和β-磷酸甘油誘導(dǎo)SMC轉(zhuǎn)化為成骨樣細(xì)胞,并在0、5、10、15 d用同樣方法再次檢測(cè)共培養(yǎng)中破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化的情況,以及兩種細(xì)胞中OPG和RANKL的表達(dá)情況。結(jié)果不管是單獨(dú)培養(yǎng)、還是共培養(yǎng),破骨樣細(xì)胞中始終沒(méi)有OPG和RANKL的表達(dá)。結(jié)論破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化可能主要受成骨樣細(xì)胞分泌的OPG和RANKL調(diào)控,本身并沒(méi)有分泌OPG和RANKL進(jìn)行自身調(diào)節(jié)的機(jī)制存在。
關(guān)鍵詞〔〕骨保護(hù)素;NF-κB配體受體;成骨樣細(xì)胞;破骨樣細(xì)胞
中圖分類號(hào)〔〕R68〔文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼〕A〔
基金項(xiàng)目:武漢市衛(wèi)生計(jì)生委科研基金資助(No.WX15C42)
通訊作者:管思明(1951-),女,主任醫(yī)師,主要從事老年心血管病專業(yè)研究。
1華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬武漢協(xié)和醫(yī)院老年病科
張韶英(1963-),女,主任醫(yī)師,主要從事老年心血管病專業(yè)研究。
第一作者:聶斌(1976-),男,主治醫(yī)師,主要從事老年心血管病專業(yè)研究。
近年來(lái)研究表明,動(dòng)脈鈣化是與骨形成相似的一種高度可調(diào)控的過(guò)程〔1〕。動(dòng)脈中存在著類似于骨中成骨細(xì)胞活性的成骨樣細(xì)胞,導(dǎo)致動(dòng)脈局部的鈣沉積;同時(shí)也存在著類似骨中破骨細(xì)胞活性的破骨樣細(xì)胞,可吸收動(dòng)脈局部的鈣化。如果成骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化增多,而破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化不足,則會(huì)導(dǎo)致動(dòng)脈鈣化的形成〔2〕。目前的研究表明,破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化主要受骨保護(hù)素(OPG)/核轉(zhuǎn)錄因子(NF)-κB配體受體(RANKL)(OPG/RANKL)系統(tǒng)的調(diào)控〔3〕。但對(duì)于破骨樣細(xì)胞自身是否能分泌OPG、RANKL進(jìn)行自我調(diào)控,卻一直很少有研究報(bào)道。本文擬探討破骨樣細(xì)胞是否存在分泌OPG/RANKL進(jìn)行自我調(diào)控的機(jī)制。
1材料和方法
1.1材料健康雄性SD大鼠,體重180~200 g,購(gòu)自同濟(jì)醫(yī)學(xué)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心;大鼠骨鈣素抗體,堿性磷酸酶(ALP)活性檢測(cè)試劑盒,鈣檢測(cè)試劑盒購(gòu)自Bioss公司;大鼠OPG抗體、RANKL抗體購(gòu)自R等D Systems公司;維生素D、維生素C、β-磷酸甘油、巨噬細(xì)胞集落刺激因子(M-CSF)購(gòu)自上海信宜藥業(yè)公司; OPG和RANKL的引物由ProMab公司合成。
1.2破骨樣細(xì)胞的單獨(dú)培養(yǎng)
1.2.1單核細(xì)胞前體的取材、培養(yǎng)〔4〕選用6周齡雄性SD大鼠,斷頸處死,無(wú)菌條件下分離股骨,暴露髓腔后用α-MEM培養(yǎng)基(含20%胎牛血清)沖洗骨髓腔,沖洗液用200目篩網(wǎng)過(guò)濾后,收集接種于25 ml培養(yǎng)瓶,在5%CO2,37℃培養(yǎng)24 h后,收集未貼壁的細(xì)胞,加入淋巴分離液,進(jìn)行Ficoll/Hypaque梯度離心,然后收集表面的單核細(xì)胞層,用磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗后,接種于含有α-MEM培養(yǎng)基(含20%胎牛血清)的六孔板中,并在培養(yǎng)液中加入100 U/ml 的青霉素,和100 μg/ml的鏈霉素。
1.2.2誘導(dǎo)單核細(xì)胞前體向破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化在上述培養(yǎng)液中加入25 ng/ml的M-CSF和1×10-8mol/L的維生素D,分別在第0、5、10、15天,用以下方法檢測(cè)單核細(xì)胞前體向破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化情況。(1)破骨樣細(xì)胞鏡下形態(tài)學(xué)觀察。(2)破骨樣細(xì)胞的抗酒石酸(TRAP)染色檢測(cè):常規(guī)細(xì)胞爬片,去離子水洗3次,浸入新配置的TRAP染色孵育液37℃中1 h,然后去離子水洗3次,中性樹(shù)膠封片,最后在光鏡下觀察,陽(yáng)性為顯示暗紅色。(3)破骨樣細(xì)胞的OPG和RANKL表達(dá):引物由primer3.0軟件設(shè)計(jì),并由ProMab公司合成。OPG(rattus)-正義:5'-ATCGGCCACGCGAACCTCAC-3',OPG(rattus)-反義:5'-GCTGCTCGCTGGGTTTGCAG-3',片段長(zhǎng)度155 bp,退火溫度59℃;RANKL(rattus)-正義:5'-AGCCTTTCAAGGGGCCGTGC-3',RANKL(rattus)-反義:5'-GGGCCACATCGAGCCACGAA-3',片段長(zhǎng)度104 bp,退火溫度58℃。
1.3共培養(yǎng)
1.3.1成骨樣細(xì)胞和破骨樣細(xì)胞共培養(yǎng)模型的構(gòu)建〔5〕選取6周齡雄性SD大鼠,無(wú)菌條件下分離主動(dòng)脈,去除筋膜,沿縱軸剪開(kāi)動(dòng)脈,小心刮去內(nèi)膜,然后剝下中膜,剪成約1 mm×1 mm的小組織塊,放入裝有DMEM(含20%胎牛血清)培養(yǎng)液的培養(yǎng)瓶中,并加入100 U/ml 的青霉素和100 μg/ml 的鏈霉素。待細(xì)胞從組織塊中游出后,收集放入5% CO2、37℃的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)。SMC的鑒定采用光鏡下形態(tài)學(xué)觀察和SMC的特異性標(biāo)志物α-actin的免疫熒光染色法。實(shí)驗(yàn)所用SMC為培養(yǎng)的第6~8代細(xì)胞;SMC和單核細(xì)胞前體的共培養(yǎng)則如文獻(xiàn)〔6〕所述,首先將SMC種植于非接觸性共培養(yǎng)體系的下層Lab-TeK腔室玻片上,然后將單核細(xì)胞前體種植于上層tissue culture insert(NUNC產(chǎn)品)中。共培養(yǎng)細(xì)胞體系也隨機(jī)分為兩組:正常組和鈣化組,正常組即為SMC和單核細(xì)胞前體的普通共培養(yǎng),鈣化組則在此培養(yǎng)液中再加入10 mmol/L β-磷酸甘油和50 μg/ml維生素C,以誘導(dǎo)其中的SMC形成鈣化。并在第0,5,10,15天收集兩種細(xì)胞分別進(jìn)行以下檢測(cè)。
1.3.2共培養(yǎng)中成骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化程度的檢測(cè)
1.3.2.1成骨樣細(xì)胞中鈣離子含量的測(cè)定收集共培養(yǎng)中的成骨樣細(xì)胞,棄去細(xì)胞培養(yǎng)液,將細(xì)胞用PBS洗三次后,加入0.6 mol/L的HCl,37℃孵育24 h脫鈣,收集脫鈣上清液,用鈣測(cè)定試劑盒(鄰甲酚酞絡(luò)合酮比色法)檢測(cè)細(xì)胞的鈣離子含量;另外,用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定細(xì)胞的蛋白含量,最后結(jié)果用蛋白含量標(biāo)準(zhǔn)細(xì)胞鈣含量(以μg/mg protein表示)。
1.3.2.2成骨樣細(xì)胞中ALP活性的檢測(cè) 收集共培養(yǎng)中成骨樣細(xì)胞,首先用超聲波裂解細(xì)胞,然后向微孔板內(nèi)添加100 μl底物緩沖液和20 μl樣品,在微孔板振蕩器上充分振蕩1 min后,37℃孵育15 min。添加80 μl反應(yīng)終止液,在微孔板振蕩器上充分振蕩1 min后,用酶標(biāo)儀測(cè)量405 nm處的吸光值,計(jì)算出ALP活性值,最后結(jié)果再用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定的蛋白含量進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化。
1.3.2.3成骨樣細(xì)胞中骨鈣素的Western印跡檢測(cè)收集共培養(yǎng)中成骨樣細(xì)胞,常規(guī)勻漿,提蛋白,蛋白質(zhì)變性,進(jìn)行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠(SDS-PAGE)電泳,使用三明治電轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜上,然后置于5%的脫脂奶粉中封閉,4℃過(guò)夜。棄去封閉液,用PBST漂洗2~3次,加入按1∶100稀釋后的一抗抗大鼠骨鈣素單克隆抗體,室溫下于搖床孵育2 h,PBST漂洗后加入末辛根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的二抗,室溫下于搖床孵育1 h,PBST漂洗后進(jìn)行二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色,最后以Gel pro4.0 版凝膠光密度分析軟件進(jìn)行測(cè)量分析。
1.3.3共培養(yǎng)中破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化程度的檢測(cè)收集共培養(yǎng)中破骨樣細(xì)胞,使用上述1.2.2中方法,檢測(cè)破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化程度。
1.3.4共培養(yǎng)中兩組細(xì)胞的OPG和RANKL實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)收集共培養(yǎng)中的成骨樣細(xì)胞和破骨樣細(xì)胞,分別進(jìn)行OPG和RANKL的實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè),檢測(cè)方法如前所述。
1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)方法應(yīng)用SPSS17.0軟件進(jìn)行t檢驗(yàn)。
2結(jié)果
2.1破骨樣細(xì)胞的單獨(dú)培養(yǎng)
2.1.1單獨(dú)培養(yǎng)時(shí)破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化情況 單核細(xì)胞前體經(jīng)過(guò)15 d誘導(dǎo)后,大多數(shù)轉(zhuǎn)化為多核巨細(xì)胞,有偽足,并可以借助偽足的凹凸伸縮而變化形態(tài),而且TRAP染色顯示為紅色。表明培養(yǎng)的單核細(xì)胞前體經(jīng)誘導(dǎo)后大多數(shù)已轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞。見(jiàn)圖1。
圖1 破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化
2.1.2單獨(dú)培養(yǎng)時(shí)破骨樣細(xì)胞中OPG、RANKL的表達(dá)情況在單核細(xì)胞前體轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞的過(guò)程中,無(wú)論在第0、5、10、15天,其OPG、RANKL的實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)均表現(xiàn)為無(wú)或極其微弱。
2.2共培養(yǎng)
2.2.1共培養(yǎng)時(shí)成骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化情況共培養(yǎng)中,SMC經(jīng)鈣化誘導(dǎo)15 d后,其鈣離子含量、ALP活性、骨鈣素Western印跡檢測(cè)都為強(qiáng)陽(yáng)性,表明經(jīng)過(guò)鈣化誘導(dǎo),SMC已成功轉(zhuǎn)化為成骨樣細(xì)胞。見(jiàn)表1。
表1 成骨細(xì)胞轉(zhuǎn)化對(duì)比 ± s)
與0 d比較:1)P<0.05
2.2.2共培養(yǎng)時(shí)破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化情況共培養(yǎng)15 d后,單核細(xì)胞前體中僅有一小部分轉(zhuǎn)化為多核巨細(xì)胞,有偽足,并可以借助偽足的凹凸伸縮而變化形態(tài),且TRAP染色顯示為紅色。以上結(jié)果表明共培養(yǎng)15 d后,單核細(xì)胞前體中有一小部分轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞。見(jiàn)圖2。
圖2 破骨細(xì)胞轉(zhuǎn)化情況
2.2.3共培養(yǎng)時(shí)成骨樣細(xì)胞OPG、RANKL的表達(dá)情況共培養(yǎng)中,成骨樣細(xì)胞無(wú)論在第0、5、10、15天均一直有OPG表達(dá),且在第0、5、10天中,OPG的表達(dá)一直呈上升趨勢(shì),而在第15天OPG的表達(dá)明顯下降。成骨樣細(xì)胞在第0天無(wú)RANKL表達(dá), 而第5、10、15天均有RANKL表達(dá),且表達(dá)也一直呈上升趨勢(shì)(均P<0.05)。見(jiàn)表2。
表2 成骨細(xì)胞OPG、RAWKL表達(dá)情況
2.2.4共培養(yǎng)時(shí)破骨樣細(xì)胞OPG、RANKL的表達(dá)情況共培養(yǎng)中,破骨樣細(xì)胞無(wú)論在第0、5、10、15天,OPG、RANKL的實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)均仍為無(wú)或極其微弱。
3討論
動(dòng)脈鈣化是鈣磷在動(dòng)脈壁沉積的一種病理性表現(xiàn),與各種心血管事件發(fā)生率的增加直接相關(guān)。近年來(lái)許多研究證實(shí),動(dòng)脈鈣化的形成并非只是鈣磷的被動(dòng)沉積,而是與骨形成類似的一種高度可調(diào)控的主動(dòng)過(guò)程。其中破骨樣細(xì)胞因具有抑制動(dòng)脈局部鈣化發(fā)展的作用,從而在動(dòng)脈鈣化的防治方面具有很好的前景,闡明破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化調(diào)控的機(jī)制因此也具有重要意義〔7〕。目前認(rèn)為影響破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化最關(guān)鍵的是OPG/RANKL系統(tǒng),RANKL促進(jìn)破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化而OPG則相反。動(dòng)脈壁的一些細(xì)胞,主要是SMC,在發(fā)生鈣化轉(zhuǎn)化為成骨樣細(xì)胞的過(guò)程中會(huì)分泌出大量的OPG和RANKL,進(jìn)而調(diào)控局部的破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化〔8〕。
本實(shí)驗(yàn)首先構(gòu)建了破骨樣細(xì)胞單獨(dú)轉(zhuǎn)化的模型,發(fā)現(xiàn)此過(guò)程中并沒(méi)有明顯的OPG和RANKL的表達(dá)。雖然單獨(dú)培養(yǎng)時(shí)破骨樣細(xì)胞并沒(méi)有表達(dá)OPG和RANKL,但并不一定就意味著破骨樣細(xì)胞本身沒(méi)有分泌OPG和RANKL進(jìn)行自身轉(zhuǎn)化調(diào)節(jié)的可能。因?yàn)樵谌梭w中很可能存在著各種細(xì)胞之間相互作用的復(fù)雜機(jī)制。在動(dòng)脈鈣化發(fā)生的過(guò)程中,也許當(dāng)成骨樣細(xì)胞和破骨樣細(xì)胞兩者共存時(shí),成骨樣細(xì)胞分泌出的某些因子會(huì)影響破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化,使得后者可以分泌OPG、RANKL,參與自身轉(zhuǎn)化的調(diào)節(jié)。這正如在骨代謝中,單獨(dú)培養(yǎng)破骨細(xì)胞時(shí),即使加入足夠的轉(zhuǎn)化誘導(dǎo)劑,但是能轉(zhuǎn)化成熟的破骨細(xì)胞也往往較少;而當(dāng)把成骨細(xì)胞和破骨細(xì)胞放在一起共同培養(yǎng)時(shí),因兩者之間發(fā)生的復(fù)雜相互作用,最后就可以誘導(dǎo)出大量的成熟破骨細(xì)胞〔9〕。因此,本文又構(gòu)建了成骨樣細(xì)胞與破骨樣細(xì)胞兩者共培養(yǎng)的模型以模擬人體動(dòng)脈的微環(huán)境,并在培養(yǎng)液中加入了鈣化誘導(dǎo)劑以誘導(dǎo)SMC轉(zhuǎn)化為成骨樣細(xì)胞,以模擬動(dòng)脈發(fā)生鈣化的過(guò)程。本實(shí)驗(yàn)表明,破骨樣細(xì)胞的轉(zhuǎn)化調(diào)節(jié)可能主要受成骨樣細(xì)胞分泌的OPG、RANKL影響,本身并沒(méi)有進(jìn)行自我調(diào)節(jié)的機(jī)制存在。
另外,本實(shí)驗(yàn)還發(fā)現(xiàn):在兩者共培養(yǎng)的模型中,當(dāng)SMC發(fā)生鈣化轉(zhuǎn)化為成骨樣細(xì)胞時(shí),只有一小部分的單核細(xì)胞前體轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞。這也和許多學(xué)者在臨床實(shí)踐和動(dòng)物模型中發(fā)現(xiàn)的結(jié)果一致:即在發(fā)生鈣化的動(dòng)脈壁上,往往可以檢測(cè)到大量的鈣化細(xì)胞(即成骨樣細(xì)胞),卻只有很少量的破骨樣細(xì)胞存在〔10〕。分析造成這種現(xiàn)象的原因很可能是在正常狀態(tài),鈣化的早期以及中期,成骨樣細(xì)胞中都有大量的OPG表達(dá),卻沒(méi)有或僅有少量的RANKL表達(dá),RANKL的含量相對(duì)于OPG處于明顯劣勢(shì),致使此時(shí)RANKL促破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化的功能完全被OPG所抑制,局部的單核細(xì)胞前體得不到RANKL的誘導(dǎo),因此不能轉(zhuǎn)化為破骨樣細(xì)胞;只有到了鈣化晚期,此時(shí)成骨樣細(xì)胞OPG的表達(dá)已經(jīng)明顯下降,而RANKL的表達(dá)則比以前明顯升高,因此RANKL促破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化的功能開(kāi)始可以有所發(fā)揮。單核細(xì)胞前體有了RANKL的誘導(dǎo),于是出現(xiàn)少量的破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化。本文認(rèn)為,之所以無(wú)論在細(xì)胞共培養(yǎng)的模型還是宏觀動(dòng)物模型中都只發(fā)現(xiàn)少量的破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化,是因?yàn)榇蠖鄶?shù)情況下局部微環(huán)境中OPG的含量超過(guò)了RANKL的含量,使得RANKL促破骨樣細(xì)胞轉(zhuǎn)化的功能無(wú)法發(fā)揮出來(lái)所致。
4參考文獻(xiàn)
1Rennenberg RJ,Schurgers LJ,Kroon AA,etal.Arterial calcifications〔J〕.J Cell Mol Med,2010;14(9):2203-10.
2陳雯,郭進(jìn),馬隆佰,等.老年人骨質(zhì)疏松與冠狀動(dòng)脈鈣化的關(guān)系〔J〕.中國(guó)老年學(xué)雜志,2004;34(6):487-9.
3D'Amelio P,Isaia G,Isaia GC.The osteoprotegerin/RANK/RANKL system:a bone key to vascular disease〔J〕.J Endocrinol Invest,2009;32(4):6-9.
4Roodman GD,Ibbotson KJ,MacDonald BR,etal.1,25-Dihydroxyvitamin D3 causes formation of multinucleated cells with several osteoclast characteristics in cultures of primate marrow〔J〕.Proc Natl Acad Sci USA,1985;82(23):8213-7.
5劉銘,楊康,廖克龍,等.SD大鼠自體平滑肌細(xì)胞的獲取和體外培養(yǎng)〔J〕.重慶醫(yī)學(xué),2004;33(12):1784-5.
6Goto H,Osaki M,Fukushima T,etal.Human bone marrow adipocytes support dexamethasone-induced osteoclast differentiation and function through RANKL expression〔J〕.Biomed Res,2011;32(1):37-44.
7Zhao Y,Urganus AL,Spevak L,etal.Characterization of dystrophic calcification induced in mice by cardiotoxin〔J〕.Calcif Tissue Int,2009;85(3):267-75.
8Valdivielso JM.Vascular calcification:types and mechanisms〔J〕.Nefrologia,2011;31(2):142-7.
9史風(fēng)雷,王海彬,楊勇,等.建立成骨與破骨細(xì)胞共育體系的一種方法〔J〕.中國(guó)矯形外科雜志,2003年;11(22):1550-2.
10Massy ZA,Mentaverri R,Mozar A,etal.The pathophysiology of vascular calcification:are osteoclast-like cells the missing link〔J〕? Diabetes Metab,February 1,2008;34(1):16-20.
〔2015-02-15修回〕
(編輯袁左鳴)