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      GRIM-19蛋白在taurolidine誘導(dǎo)宮頸癌細胞凋亡中的作用

      2015-12-29 03:31:43孫寶勝,孟凡旭,于士龍
      中國老年學(xué)雜志 2015年2期
      關(guān)鍵詞:宮頸癌誘導(dǎo)實驗組

      GRIM-19蛋白在taurolidine誘導(dǎo)宮頸癌細胞凋亡中的作用

      孫寶勝孟凡旭于士龍郎志國孫世龍1劉林林2劉士新

      (吉林省腫瘤醫(yī)院,吉林長春130000)

      摘要〔〕目的探討GRIM-19蛋白在taurolidine誘導(dǎo)人宮頸癌Hela細胞凋亡中的作用。方法應(yīng)用四甲基偶氮唑藍(MTT)法檢測不同劑量組宮頸癌細胞(Hela細胞系)存活率的影響;采用流式細胞術(shù)檢測不同劑量組Hela細胞的凋亡數(shù)據(jù);采用Western印跡法檢測各實驗組中Hela細胞中GRIM-19蛋白的表達變化;同時采用酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)法檢測半胱氨酸蛋白酶(caspase)9的活性。結(jié)果MTT結(jié)果顯示,taurolidine對Hela細胞生長有顯著的抑制作用,流式細胞術(shù)結(jié)果顯示出實驗組Hela細胞凋亡比例顯著上升,并呈現(xiàn)出明顯的時程和量效關(guān)系(P<0.05)。Western印跡分析顯示,與對照組相比,GRIM-19蛋白在各實驗組Hela細胞中的表達顯著提高(P<0.05),同樣顯示出了一定的時程和量效關(guān)系。ELISA檢測結(jié)果顯示,caspase-9在各實驗組Hela細胞中的表達顯著增加,與GRIM-19蛋白的表達顯示出了相當?shù)囊恢滦?。結(jié)論Taurolidine可通過促進GRIM-19蛋白的表達誘導(dǎo)Hela細胞的凋亡,且線粒體凋亡很可能是taurolidine誘導(dǎo)Hela細胞凋亡的重要途徑。

      關(guān)鍵詞〔〕宮頸腫瘤;基因表達;細胞凋亡;Taurolidine;GRIM-19

      中圖分類號〔〕R730.53〔

      基金項目:吉林省發(fā)改委資助項目(No.2013C033)

      通訊作者:劉士新(1964-),男,教授,主要從事腫瘤放射治療研究。

      1吉林大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院2吉林大學(xué)第二臨床醫(yī)院

      第一作者:孫寶勝(1972-),男,副主任醫(yī)師,主要從事婦科腫瘤放射治療研究。

      最近研究發(fā)現(xiàn),taurolidine具有明顯的抑制腫瘤細胞生長和誘導(dǎo)細胞凋亡的作用〔1~4〕。然而,taurolidine在不同的腫瘤細胞中,誘導(dǎo)凋亡的分子生物學(xué)機制不同。有研究報道,taurolidine通過提高線粒體中細胞色素c等凋亡因子的表達,激活半胱氨酸蛋白酶-9(caspase-9)和caspase-3,誘導(dǎo)前列腺癌細胞凋亡〔5〕;也有文獻報道,taurolidine通過激活線粒體途徑誘導(dǎo)凋亡的同時,還通過激活Fas-liand,啟動死亡受體途徑,誘導(dǎo)腦神經(jīng)膠質(zhì)癌細胞凋亡〔2〕。GRIMs是Kalvakolanu等發(fā)現(xiàn)的一群參與干擾素(IFN)/維甲酸(RA)聯(lián)合誘導(dǎo)細胞凋亡的基因。Seo等〔6〕發(fā)現(xiàn),GRIM-19與病毒感染密切相關(guān),指出乳頭瘤病毒(HPV)-E6可與GRIM-19直接結(jié)合,誘導(dǎo)對宮頸癌及其癌前病變的發(fā)生。本研究旨在觀察taurolidine對人宮頸癌Hela細胞是否具有誘導(dǎo)凋亡的特性,以及誘導(dǎo)凋亡的分子生物學(xué)機制。

      1材料與方法

      1.1試劑細胞培養(yǎng)液、小牛血清、青鏈霉素、谷氨酰胺、胰酶和磷酸鹽緩沖液(PBS)均購買于Invitrogen公司(Paisley,Scotland,UK)。taurolidine(Taurolin)溶劑由Geistlich Pharm AG(Wolhusen,Switzerland)贈送。除了在文章中具體指出,所有其他的化學(xué)試劑均購買于Sigma-Aldrich公司(St.Louis,MO)。

      1.2細胞及培養(yǎng)人宮頸癌Hela細胞購買于美國細胞庫(Manassas,VA)。Hela細胞均在含有10%小牛血清、青霉素(100 U/ml)和谷氨酰胺(2 mmol/L)的DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng),并在37℃、5% CO2孵箱中貼壁生長。

      1.3細胞存活實驗待Hela細胞生長為指數(shù)期,調(diào)細胞濃度為1×105/ml。將Hela細胞種植在96孔培養(yǎng)板(100 μl/well)中,24 h后,分別給予不同濃度的taurolidine(0,10,25,50,100,200 μmol/L)。腫瘤細胞在37℃,CO2孵箱中培養(yǎng)24 h和48 h后,給予100 μl噻唑藍(MTT,5.0 mg/ml)。3 h后,吸去上清,每孔加入150 μl二甲基亞砜,振蕩10 min在酶聯(lián)免疫吸附儀上測量各孔光吸收值(CPM)。細胞生長抑制率(%)=(1-實驗組CPM值/對照組CPM值)×100%。

      1.4細胞凋亡的檢測待Hela細胞接近對數(shù)生長期,常規(guī)消化細胞,制成2.5×105細胞懸液,接種于6孔培養(yǎng)板中。24 h 后,分別給予不同濃度的taurolidine,并確定最終藥物濃度分別為0,10,25,50,100,200 μmol/L。Hela細胞在37℃,CO2孵箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h和48 h,將貼壁及懸浮的細胞離心,收集后震蕩、混勻在碘化丙啶(PI)混合溶液中(50 μg/ml propidium iodide、3.4 mmol/L sodium citrate、1.0 mmol/L Tris、0.1 mmol/L EDTA、0.1% Triton X-100),并在4℃環(huán)境中避光培養(yǎng)4~6 h。流式細胞儀(BD biosciences,Mountain View,CA)進行檢測,Cell Guest軟件(BD Biosciences)收集并分析結(jié)果。

      1.5GRIM-19蛋白表達變化的檢測待Hela細胞生長為指數(shù)期,將5×106細胞懸液種植在25 cm2培養(yǎng)瓶中貼壁、過夜后,用含有taurolidine的培養(yǎng)液調(diào)為理想的藥物濃度和作用時間。用磷酸鹽緩沖液(PBS)漂洗上述細胞3次,棄去洗液并吸凈殘余的PBS液體。在培養(yǎng)皿中加入200 μl細胞裂解液混勻、冰浴30 min。15 000 r/min離心10 min后,通過Lowry method進行總蛋白定量分析。將樣品上清液分裝,-20℃保存。制備12%分離膠、5%積層膠。按計算好的樣品量上樣,使各組上樣量相等,在8 V/era電壓條件下開始進行十二烷基硫酸鈉(SDS)聚丙烯酰胺凝膠電泳分離目的蛋白,待溴酚藍進入分離膠時,將電壓提高到15 V/era,繼續(xù)電泳直至溴酚藍到達凝膠底部。電泳結(jié)束后,將SDS聚丙烯酰胺分離出的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜上(Millipore,Bedford,MA,USA)。用含有5 %脫脂奶粉的Tris鹽酸緩沖液(TrBS)(150 mmol/L NaCl、Tris、0.1% Tween20,pH 7.5)對上述硝酸纖維素濾膜進行封閉2 h,一抗GRIM-19(cell signal)室溫孵育2 h,相應(yīng)的二抗室溫孵育1.5 h,增強化學(xué)發(fā)光法(ECL)試劑盒顯色(Perkin Elmer),拍照。

      1.6caspase-9活性的檢測caspase-9的活性由ApoTarget 試劑盒(BioSource International Inc,CA)檢測。Hela細胞(5×106)接種于25 cm2培養(yǎng)瓶中貼壁;過夜后,給予含有taurolidine的培養(yǎng)液,并調(diào)定taurolidine藥物終濃度為0、25、50和100 μmol/L。37℃、CO2孵箱中培養(yǎng)24 h后,提取細胞總蛋白,并進行定量分析。將100 μg蛋白同200 μmol/L底物混勻,在37℃、CO2孵箱中培養(yǎng)3 h之后通過酶標儀檢測其吸光度值A(chǔ)值,490 nm。

      2結(jié)果

      2.1Taurolidine對Hela細胞存活率的影響當50 μmol/L的taurolidine作用于Hela細胞48 h時,導(dǎo)致了58%的細胞壞死,并顯示明顯的時效和量效關(guān)系。見表1。

      2.2Taurolidine對Hela細胞凋亡的影響對照組的Hela細胞在培養(yǎng)48 h后,僅僅產(chǎn)生了<5%的細胞凋亡,當50 μmol/L的taurolidine作用于Hela細胞48 h后,可導(dǎo)致8.97 %的細胞凋亡,100 μmol/L的taurolidine作用于Hela細胞48 h后,可導(dǎo)致22.37 %的細胞凋亡,顯示了明顯的時效和量效的關(guān)系。見表2。

      表1 不同濃度taurolidine作用于Hela細胞24 h和

      表2 不同濃度taurolidine作用于Hela細胞24 h和48 h

      2.3Western印跡法檢測GRIM-19蛋白的表達變化由于taurolidine(50 μmol/L)在24 h能夠顯著的誘導(dǎo)Hela細胞凋亡,所以選擇50 μmol/L的taurolidine作用于Hela細胞0、3、6、12和24 h后,觀察其對GRIM-19蛋白的影響,結(jié)果顯示:taurolidine能明顯促進GRIM-19蛋白的表達,并具有明顯的時效關(guān)系。見圖1。

      圖1 Taurolidine作用于Hela細胞在不同時間點對 GRIM-19表達的影響

      2.4caspase-9活性的測定0、25、50和100 μmol/L的taurolidine作用于Hela細胞24 h后,caspase-9活性(A490 nm)分別為0.05、0.15、0.30和0.50,結(jié)果顯示了明顯的劑量依賴效應(yīng)。

      3討論

      近幾年許多文獻報道,taurolidine可誘導(dǎo)多種腫瘤細胞凋亡,并且在體內(nèi)動物實驗中證實其抑制腫瘤局部生長及遠距離轉(zhuǎn)移作用〔1,3,4〕。本實驗結(jié)果顯示,taurolidine具有明顯的誘導(dǎo)Hela細胞凋亡以及抑制細胞生長的特性,并且顯示了明顯的時間與量效依賴關(guān)系。

      高危型HPV持續(xù)感染是宮頸癌發(fā)生的主要病因,有研究發(fā)現(xiàn),GRIM-19與病毒感染密切相關(guān),指出HPV-E6可與GRIM-19直接結(jié)合,且高危型HPV的結(jié)合作用強于低危型,GRIM-19可能對宮頸癌的治療和預(yù)后有提示作用〔6〕。Chidambaram等〔7〕研究表明,GRIM-19基因在人體多種正常組織中可被檢測,參與IFN/RA誘導(dǎo)的腫瘤細胞凋亡。周穎等〔8〕采用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法將GRIM-19重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到宮頸癌Hela細胞,發(fā)現(xiàn)GRIM-19基因在宮頸癌Hela/GRIM-19細胞中表達顯著升高,抑制細胞增殖,使腫瘤生長速度減慢,在一定程度上控制腫瘤細胞的惡性生物學(xué)行為〔8〕。

      綜上所述,本實驗結(jié)果為taurolidine誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡的信號傳導(dǎo)提供理論依據(jù),并且為在體內(nèi)觀察該化學(xué)藥物的抗腫瘤作用提供理論支持。

      4參考文獻

      1McCourt M,Wang JH,Sookhai S.Taurolidine inhibits tumor cell growth in vitro and in vivo〔J〕.Ann Surg Oncol,2000;7(9):685-791.

      2Stendel R,Scheurer L,Stoltenburg-Didinger G,etal.Enhancement of Fas-ligand-mediated programmed cell death by taurolidine〔J〕.Anticanser Res,2003;23(3B):2309-14.

      3Calabresi P,Goulette FA,Darnowski JW.Taurolidine:cytotoxic and mechanistic evaluation of a novel antineoplastic agent〔J〕.Cancer Res,2001;61(18):6816-21.

      4Shrayer DP,Lukoff H,King T,etal.The effect of taurolidine on adherent and floating subpopulations of melanoma cells〔J〕.Anticancer Drugs,2003;14(4):295-303.

      5Darnowski JW,Goulette FA,Cousens LP,etal.Mechanistic and antineoplastic evaluation of taurolidine in the DU145 model of human prostate cancer〔J〕.Cancer Chemother Pharmacol,2004;54(3):249-58.

      6Seo T,Lee D,Shim YS,etal.Viral interferon regulatory factor 1 of Kaposi′s sarcoma-associated herpesvirus interacts with a cell death regulator,GRIM-19,and inhibits interferon/retinoic acid-induced cell death〔J〕.J Virol,2002;76(17):8797-807.

      7Chidambaram NV,Angelle JE,Ling W,etal.Chromosomal localization of human GRIM-19,a novel IFN-β and retinoic acid-activated regulator of cell death〔J〕.J Interferon Cytokine Res,2000;20(7):661-5.

      8周穎,衛(wèi)瑩,李敏,等.GRIM-19表達對子宮頸癌Hela細胞增殖的影響〔J〕.腫瘤,2009;29(10):940-3.

      〔2013-06-17修回〕

      (編輯袁左鳴)

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