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金納米粒子由于其獨(dú)特的理化性質(zhì),在納米生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用。病毒結(jié)構(gòu)蛋白具有自組裝能力,能把外源納米粒子通過(guò)自組裝包覆到病毒樣顆粒(virus like particles,VLP)的內(nèi)腔中,形成病毒蛋白-納米材料復(fù)合物,并具有粒徑均一、生物相容性好、表面具有豐富的化學(xué)基團(tuán)可供修飾等特點(diǎn),在納米科學(xué)領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景[1]。
在病毒的內(nèi)殼結(jié)構(gòu)蛋白中,與病毒基因組相互作用的肽鏈氨基末端會(huì)伸展出一段帶正電荷的氨基酸,能把很長(zhǎng)的基因組壓縮折疊后包覆到病毒中[2]。利用這種能力,可以把外源治療性基因裝載到VLP中構(gòu)建基因治療載體[3]。除治療性核酸外,人們嘗試了裝載其它具有診療功能的外源物質(zhì)到VLP中,構(gòu)建藥物治療或造影載體,Lewis 等[4]和Leong等[5]利用羧基化熒光基團(tuán)Alexa Fluor 555 與豇豆花葉病毒(cowpea mosaic virus,CPMV)交聯(lián),構(gòu)建了新生血管的靶向造影系統(tǒng);Zhao等[6]利用重組表達(dá)的輪狀病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP6交聯(lián)阿霉素后進(jìn)行體外組裝,構(gòu)建了肝癌細(xì)胞的靶向藥物輸運(yùn)體系;Everts等[7]通過(guò)共價(jià)交聯(lián)的方式,將金納米粒子交聯(lián)到腺相關(guān)病毒上,構(gòu)建了腫瘤靶向熱療體系;Sun等[8]研究發(fā)現(xiàn),不同粒徑的金納米粒子能誘導(dǎo)雀麥草花葉病毒(brome mosaic virus,BMV)組裝,誘導(dǎo)病毒蛋白形成不同對(duì)稱結(jié)構(gòu)的VLP。
在將外源性的納米粒子裝載進(jìn)VLP的過(guò)程中,靜電相互作用、納米粒子的形貌和尺寸對(duì)裝載效率影響較大。目前,除金納米粒子外,量子點(diǎn)[9]、四氧化三鐵納米粒子[10]等均是對(duì)納米粒子進(jìn)行仿基因組的負(fù)電修飾,誘導(dǎo)外殼蛋白進(jìn)行組裝,形成納米復(fù)合材料[11-14]。鑒于此,作者采用原核重組表達(dá)的方法,獲得輪狀病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP6,利用其內(nèi)腔表面帶負(fù)電荷的特點(diǎn)[15],用聚乙酰亞胺(polyetherimide,PEI)還原法合成表面帶正電荷的金納米粒子,通過(guò)靜電相互作用誘導(dǎo)VP6進(jìn)行自組裝,獲得VP6包覆的金納米復(fù)合材料,有望為靶向診療、病毒基礎(chǔ)研究等方面提供新思路。
輪狀病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP6基因(GenBank accession number:AY787645),全長(zhǎng)1 356bp,編碼397個(gè)氨基酸,分子量45kDa,來(lái)源于人類A 組輪狀病毒TBChen株;限制性內(nèi)切酶、T4DNA 連接酶,大連寶生物公司。
氯金酸、聚乙烯亞胺(PEI),阿爾法公司。
透射電鏡,F(xiàn)EI公司;檢測(cè)型凝膠電泳儀(7cm×12cm),上海六一儀器廠;聚丙烯酰胺凝膠電泳儀(20 cm×20cm)、紫外可見光譜儀,PE 公司;恒溫?fù)u床,上海一恒;低溫高速離心機(jī),Thermo;滅菌高壓鍋;細(xì)胞超聲粉碎儀,新芝。
輪狀病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP6 的內(nèi)腔是負(fù)電性的[15],不和基因組直接相連,而直接接觸結(jié)構(gòu)蛋白VP2?;诖?,作者采用了和其它文獻(xiàn)不同的誘導(dǎo)組裝方式,首先對(duì)金納米粒子進(jìn)行PEI正電修飾,然后誘導(dǎo)VP6圍繞金納米粒子進(jìn)行組裝,如圖1所示。
圖1 VP6組裝修飾金納米粒子示意圖Fig.1 Schematic diagram of gold nanoparticles modified by VP6
1.2.1 金納米粒子的合成[16]
將25 mL 氯金酸(純度99.99%,1.4 mmol·L-1)分別與0.9mL、0.7mL、0.5mL PEI(質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%)混合,得到不同粒徑的金納米粒子,在80 ℃下劇烈攪拌2h,12 000r·min-1離心,水洗2遍,再離心,即得到水溶性的帶正電荷的金納米粒子。金納米粒子的粒徑由反應(yīng)體系的PEI的量控制。
1.2.2 VP6的重組表達(dá)
質(zhì)粒的構(gòu)建和蛋白的表達(dá)[6]:培養(yǎng)的病毒經(jīng)RTPCR 獲得VP6 的編碼基因。在正向引物(5′-ATCATATGGATGTTTGTATTCA-3′)和反向引物(5′-ATCCGCGGAGCTCCACCGCGGTGGC-3′)中分別引入限制性核苷酸內(nèi)切酶位點(diǎn)NdeⅠ和SacⅠ(下劃線)。VP6基因的PCR 產(chǎn)物經(jīng)純化后,用NdeⅠ/SacⅠ雙酶切,制備插入基因片段。插入基因片段和載體基因片段經(jīng)T4DNA 連接酶連接后,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞。經(jīng)酶切鑒定,篩選陽(yáng)性菌落,制備攜帶VP6編碼基因的重組表達(dá)質(zhì)粒pET-VP6,并對(duì)其進(jìn)行核苷酸序列測(cè)定。核苷酸序列測(cè)定證明準(zhǔn)確無(wú)誤后,將pET-VP6轉(zhuǎn)化至大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,挑選陽(yáng)性菌落接種于LB培養(yǎng)液(含200μg·mL-1氨芐青霉素)于37 ℃(12~16h)培養(yǎng)。8 000r·min-1離心10min,收集菌體,用超聲裂解緩沖溶液(200mmol·L-1NaCl,50 mmol·L-1Tris,5%glycerol,5%Triton X-100,2mmol·L-1EDTA)懸浮,于冰水浴中超聲破碎20 min(超聲5s,暫停5s,功率400 W,超聲探頭直徑10mm),12 000r·min-1離心15min,收集上清,沉淀(主要是包涵體蛋白)先用2 mol·L-1尿素洗滌,然后用8mol·L-1尿素溶解后,分裝保存于-20 ℃冰箱,SDS-PAGE電泳檢測(cè)表達(dá)產(chǎn)物。
蛋白的純化:利用切膠的方法對(duì)蛋白進(jìn)行純化。在裂解產(chǎn)物的沉淀中檢測(cè)到目標(biāo)蛋白,所以可以判斷蛋白以包涵體的形式表達(dá)。包涵體洗滌純化后,溶解在8mol·L-1尿素中。溶解的蛋白經(jīng)SDS-PAGE 凝膠分離(5%濃縮膠,10%分離膠),用150mmol·L-1的KCl顯色,切下VP6所在的條帶,裝入透析袋(截留分子量8 000~14 000kDa)中,透析袋中加入不含SDS的電泳緩沖溶液。電泳(電壓120 V,電流160 mA,4 ℃,3h)透析回收蛋白。電泳完后從透析袋中吸出透析液,裝入另一透析袋中,用聚乙二醇20000濃縮蛋白。Bradford 法測(cè)定蛋白的濃度。甲醇沉淀法除去蛋白中的SDS:取100μL 1mg·mL-1純化蛋白,加甲醇400μL、氯仿100μL、去離子水300μL,漩渦混勻。在12 000r·min-1條件下離心15min,此時(shí)蛋白在氯仿和甲醇/水相的分界處。輕輕吸去上清,加400μL甲醇,混勻,12 000r·min-1離心5min。此時(shí)蛋白沉降到管底,棄上清,加400μL 甲醇漂洗,12 000 r·min-1離心15 min。打開管蓋,使甲醇自然揮發(fā)干,用8mol·L-1尿素溶解蛋白。
蛋白的復(fù)性:利用稀釋-透析法對(duì)蛋白進(jìn)行復(fù)性。將純化的VP6蛋白溶液稀釋到2mg·mL-1,加入到篩選出的復(fù)性液中,8 ℃復(fù)性24h,依次在1 mol·L-1、0.5mol·L-1和0mol·L-1(含50mmol·L-1Tris-HCl)的尿素復(fù)性液中進(jìn)行透析復(fù)性,每次24h,最后用水進(jìn)行透析,除去Tris-HCl。復(fù)性結(jié)束后將透析袋放入聚乙二醇20000中濃縮,12 000r·min-1離心去除沉淀。用蛋白分析試劑盒(Pierce)計(jì)算復(fù)性效率。
1.2.3 VP6包覆的金納米復(fù)合材料的誘導(dǎo)組裝
室溫下,按n(金)∶n(VP6)=1∶20在碳酸鈉-碳酸緩沖溶液(0.02mol·L-1,pH 值5.5)中誘導(dǎo)16h進(jìn)行組裝。
組裝完成后于12 000r·min-1離心30min,水洗2次,用2%磷鎢酸染色,進(jìn)行透射電鏡表征。
25mL氯金酸分別與0.9 mL、0.7 mL、0.5 mL PEI混合得到不同粒徑的金納米粒子,其紫外可見光譜見圖2。
由圖2 可知,隨著PEI用量的減少,金納米粒子的最大紫外吸收峰從528nm 紅移到了533nm。
圖2 不同粒徑金納米粒子的紫外可見光譜Fig.2 UV-Vis Spectra of gold nanoparticles with different particle sizes
采用SDS-PAGE檢測(cè)表達(dá)和純化的VP6,結(jié)果見圖3。
圖3 表達(dá)(a)和純化(b)的VP6的SDS-PAGE電泳圖譜Fig.3 SDS-PAGE Electrophorogram of expressed(a)and purified(b)VP6
由圖3可看出,VP6蛋白在大腸桿菌BL21(DE3)中獲得了高效表達(dá)(條帶2),主要以包涵體的形式存在(條帶3)。用SDS-PAGE 電泳對(duì)洗滌后的包涵體進(jìn)行進(jìn)一步的純化,將目的條帶從膠上切下,經(jīng)電泳回收后,用SDS-PAGE電泳檢測(cè)純化結(jié)果(條帶4)。經(jīng)復(fù)性后,采用Bradford法,通過(guò)蛋白分析試劑盒對(duì)復(fù)性效率進(jìn)行計(jì)算:先用蛋白分析試劑盒制作牛血清白蛋白(BSA)的標(biāo)準(zhǔn)曲線并得到擬合方程,測(cè)定復(fù)性后的蛋白濃度,計(jì)算得到復(fù)性效率為32.38%。
將紫外吸收波長(zhǎng)為533nm 的金納米粒子與VP6混合,使VP6以金納米粒子為核進(jìn)行組裝,組裝完成后進(jìn)行TEM 表征,結(jié)果見圖4。
由圖4可看出,金納米粒子成功地對(duì)VP6進(jìn)行了誘導(dǎo)組裝,該組裝方式主要是靠靜電相互作用完成,即VP6上的負(fù)電荷和金納米粒子表面的正電荷作用后進(jìn)行組裝。
圖4 金納米粒子(a)及VP6自組裝修飾金納米粒子(b)的TEM 照片F(xiàn)ig.4 TEM Images of gold nanoparticles(a)and VP6 self-assembly modified gold nanoparticles
通過(guò)輪狀病毒結(jié)構(gòu)蛋白VP6自組裝的方式對(duì)金納米粒子進(jìn)行了修飾,獲得了VP6包覆的金納米復(fù)合材料。一方面,VP6蛋白的修飾可以改善金納米粒子的生物相容性、分散性,并使其表面攜帶上豐富的化學(xué)基團(tuán)(如氨基、羧基、巰基),方便進(jìn)一步的化學(xué)修飾;另一方面,功能化的金納米粒子也可以改變VP6蛋白的組裝方式,如打破病毒的天然組裝,使其組裝成其它對(duì)稱結(jié)構(gòu)的VLP,這樣的改變可能不止在癌癥的診斷和治療中有著潛在應(yīng)用,在病毒本身的機(jī)制研究方面,如組裝、感染途徑、疫苗研究等方面也有可能帶來(lái)潛在運(yùn)用。
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