豬傳染性胸膜肺炎的綜合防治措施

袁芳艷等

摘要：豬傳染性胸膜肺炎是由豬胸膜肺炎放線桿菌引起的一種高度接觸性呼吸道傳染病。豬胸膜肺炎放線桿菌特異性地寄生在豬體內(nèi)，傳染性強，傳播速度快，給養(yǎng)豬業(yè)的健康發(fā)展構(gòu)成極大的威脅。對豬傳染性胸膜肺炎的病原學(xué)、流行病學(xué)、診斷及綜合防治措施進行了詳細(xì)分析，以期對臨床防控該病提供參考。

關(guān)鍵詞：豬傳染性胸膜肺炎；流行病學(xué)；診斷方法；綜合防治

中圖分類號：S858.28 文獻標(biāo)識碼：B 文章編號：1007-273X（2015）08-0023-02

豬傳染性胸膜肺炎的主要病原菌是豬胸膜肺炎放線桿菌（Actinobacillus Pleuropneumoniae，APP），該病以飛沫和接觸性傳播為主，主要臨床特征有急性出血性肺炎和亞急性慢性壞死性肺炎。隨著集約化養(yǎng)豬業(yè)的發(fā)展，國家及地區(qū)間引種頻繁，該病發(fā)病率及死亡率大大高于以前。我國自1987年首次發(fā)現(xiàn)該病，現(xiàn)該病已經(jīng)成為育肥豬和種豬死亡的主要原因之一，血清型也越來越復(fù)雜，給養(yǎng)豬業(yè)造成了巨大的經(jīng)濟損失。

1 病原學(xué)

豬胸膜肺炎放線桿菌是豬傳染性胸膜肺炎的致病菌。最早是Pattison于1957 年在英國首次發(fā)現(xiàn)并報道[1]。曾稱為胸膜肺炎嗜血桿菌（Hemophilus pleura pneumonia）或副溶血嗜血桿菌（Haemophilus parahaemolytics）或豬胸膜肺炎嗜血桿菌。APP是一種兼性厭氧的革蘭氏陰性菌，呈短桿菌或球桿菌，具有莢膜，不產(chǎn)生芽孢，沒有運動性。APP生長條件要求苛刻，在巧克力瓊脂培養(yǎng)基呈不透明圓形菌落，在瓊脂血平板上呈β溶血，在金黃色葡萄球菌周圍有衛(wèi)星現(xiàn)象。

根據(jù)莢膜多糖血清學(xué)反應(yīng)的不同，迄今為此，已報道的APP血清型共有15種。根據(jù)生長是否依賴v因子（煙酰胺腺嘌呤二核苷酸，或輔酶I，NAD），又可將APP分為2種生物型。生物I型（血清型1-12、15型）依賴NAD，而生物II型（血清型13、14）則不依賴[2]。其中，APP生物I型具有毒力。

豬胸膜肺炎放線桿菌的毒力因子主要有RTX毒素、莢膜多糖、脂多糖、外膜蛋白等，在APP抗原的識別及保護性免疫中具有重要作用。

2 流行病學(xué)

豬傳染性胸膜肺炎只感染豬，不感染人。豬傳染性胸膜肺炎對豬的感染范圍很廣，各種年齡及性別的豬都可感染，尤其以斷奶仔豬最易感。發(fā)病速度快，死亡率高，損失較大。

發(fā)病豬和慢性感染帶菌豬是豬傳染性胸膜肺炎的傳染源，主要通過飛沫或接觸傳播，病原菌可通過呼吸、咳嗽、噴嚏等方式，經(jīng)呼吸道直接傳播，也可以通過運輸車輛、飼養(yǎng)或免疫用器具、工作人員等間接傳播。

3 診斷方法

3.1 臨床診斷

根據(jù)病程的發(fā)展，在臨床上一般可將豬傳染性胸膜肺炎分為最急性型、急性型、慢性型三種類型。

最急性型豬傳染性胸膜肺炎發(fā)病突然且病程短，體溫可高達41.5 ℃以上，精神抑郁，食量急劇下降甚至廢絕；病豬的口周圍、鼻、眼、耳皮膚發(fā)紺；隨著病情的發(fā)展，病豬呼吸出現(xiàn)障礙，張口喘息；站立困難，常常呈犬臥姿勢；口鼻流出帶血樣液體，氣管和支氣管腔內(nèi)有大量泡沫樣血色分泌物；肺出現(xiàn)充血、出血、壞死等病變。一般于出現(xiàn)臨床癥狀后1～3 d內(nèi)死亡，死亡率高達80%～100%。

急性型病豬體溫升高，精神抑郁，食欲減少，咳嗽或張口呼吸，喉頭充滿血樣液體；病豬喜臥，常呈犬臥或犬坐姿勢；耳、鼻、四肢末端發(fā)紺，常于發(fā)病后3～5 d死亡。若豬能耐過，癥狀逐漸消退，則可康復(fù)或轉(zhuǎn)為慢性型，此時病豬呈間歇性咳嗽，生長遲緩。肺病灶區(qū)呈大理石樣的花紋；胸腔有混濁的積液。

慢性型病豬多由急性轉(zhuǎn)變而來。病豬體溫正?；蚵愿?，食量不大，有程度不一的間歇性咳嗽，具有輕微的呼吸障礙。若病豬耐過，也會生長緩慢，且是潛在的病原菌攜帶者，存在散毒的危險?；虬l(fā)生繼發(fā)感染或混合感染，使損失明顯加大。剖檢可見肺臟有壞死區(qū)、大小不等的結(jié)節(jié)；肺臟與胸膜發(fā)生纖維素性粘連；心臟內(nèi)有大量心包液及菜花樣贅生物；關(guān)節(jié)腫大，有黃色積液。

3.2 實驗室診斷

包括直接鏡檢、細(xì)菌的分離鑒定和血清學(xué)診斷。

從豬鼻或口腔分泌物、氣管、扁桃體、肺，淋巴結(jié)、胸膜及胸積液、關(guān)節(jié)液等處采集病料，采集病料時最好在無菌操作臺內(nèi)。

（1）鏡檢：從氣管、肺臟、關(guān)節(jié)液等取樣涂片，革蘭氏染色后鏡檢，選取呈現(xiàn)小球桿或線桿狀的革蘭氏陰性菌做進一步鑒定。

（2）培養(yǎng)基分離：將革蘭氏染色鏡檢后細(xì)菌劃線接種于表皮葡萄球菌的TSA平板（含5%綿羊血），于CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)24 h后，選取表面光滑、圓形、邊緣整齊、針尖大小的菌落，進一步開展生化特性、溶血性、CAMP試驗等。

（3）血清學(xué)診斷：包括2-巰基乙醇試管凝集試驗、乳膠凝集試驗、瓊脂擴散試驗和酶聯(lián)免疫吸附試驗等方法。PCR和ELISA因具有特異、敏感、快速、操作方便等特征而被廣泛應(yīng)用。DA等[3]利用a p xⅣA建立了Southern印跡檢測方法，李樹清等[4]根據(jù)apxⅣ毒素基因和16S rRNA序列，建立了檢測APP的復(fù)合PCR方法。張志妮等[5]利用apxⅣ毒素基因序列的保守區(qū)域設(shè)計特異性引物，建立檢測APP標(biāo)準(zhǔn)菌株血清型1-12的 PCR方法，可最低檢出 DNA 含量為9 pg/μL ，而副豬嗜血桿菌、豬放線桿菌、豬源多殺性巴氏桿菌、豬霍亂沙門氏菌、豬源支氣管敗血波氏菌、豬丹毒桿菌的PCR檢測結(jié)果都為陰性。

4 綜合防治措施

防治豬傳染性胸膜肺炎的重點是生物安全管理，牽涉到引種，飼養(yǎng)管理、免疫和治療等方面。

4.1 嚴(yán)把引種關(guān)

規(guī)范引種檢疫，杜絕病原傳播。堅持自繁自養(yǎng)原則，盡量減少引種或采取人工授精的方式來減少病原傳入。豬售出或轉(zhuǎn)欄時，采取全進全出的方式。應(yīng)選擇非疫病區(qū)豬進行引種，并嚴(yán)格按照引種檢疫規(guī)定執(zhí)行。

4.2 加強飼養(yǎng)管理

保持適當(dāng)飼養(yǎng)密度，密度越高，豬群發(fā)生豬傳染性胸膜肺炎的可能性越大。嚴(yán)格按照全進全出的方式。母豬進產(chǎn)房前，要徹底清洗干凈，再反復(fù)消毒并且空置幾天。仔豬盡量保證產(chǎn)后吃上足夠的初乳。仔豬斷奶轉(zhuǎn)欄時盡量減少溫度等環(huán)境應(yīng)激、按體重分開飼養(yǎng)，盡量維持同一欄內(nèi)的仔豬體重和采食量相似。提高豬群飼料的質(zhì)量，保證充足的蛋白質(zhì)和能量，適當(dāng)添加維生素、微量元素等。

4.3 疫苗免疫

根據(jù)疫苗的最佳免疫時機制定并完善免疫程序，可免疫2次，35～40日齡仔豬第1次免疫接種，首免后4周加強免疫1次。目前常用的豬傳染性胸膜肺炎疫苗為滅活疫苗，可以降低病豬死亡率，起到一定的保護效果，但不能降低發(fā)病率和慢性感染機率，且APP血清型眾多及地流行型有別，不同血清型之間交叉保護效果有限，導(dǎo)致免疫效果不理想。臨床感染APP后存活的豬具有對所有血清型菌株的保護力，表明弱毒活疫苗具有良好的應(yīng)用前景。張倩等[6]等構(gòu)建了APP血清7型菌株突變株WF83ΔapxⅡC/apxⅠAN/apxⅠAC，與親本菌株相比，突變株體外培養(yǎng)無溶血活性，小鼠試驗表明毒性也顯著降低，為開發(fā)成弱毒活疫苗打下了基礎(chǔ)。

4.4 藥物治療

豬傳染性胸膜肺炎病情發(fā)展迅速，要適當(dāng)采用抗生素治療。臨床豬放線桿菌耐藥性較強，而且因為不同豬場用藥情況差異，因此其耐藥性也存在差異，在使用抗生素前要做藥敏試驗。根據(jù)本研究室近幾年的藥敏試驗結(jié)果，氟苯尼考、磺胺類及頭孢類敏感性較高，對病豬可采取口服或肌肉注射的方式治療，如果病豬群還混合感染病毒病，則需要添加抗病毒藥物治療。

5 小結(jié)

豬傳染性胸膜肺炎是嚴(yán)重影響?zhàn)B豬業(yè)的呼吸道疾病，豬傳染性胸膜肺炎的防控工作是一項關(guān)聯(lián)到引種、消毒、飼料、疫病防治等多個方面的綜合措施，而且要根據(jù)豬場的實際情況對癥下藥。現(xiàn)代科學(xué)技術(shù)的飛速發(fā)展，加快了人們對APP致病機理的研究，也有助于更加簡便靈敏的檢測方法和更環(huán)保而高效的疫苗的研發(fā)。

參考文獻：

[1] NICOLET J. Actinobacillus pleuropneumoniae[C]. In：Leman A D， straw B， Mengeling W L， et al.Diseases of swine[M]. Lowa stare university Press， Ame， 1992.401-408.

[2] BLACKALL P J， KLAASEN H L， VAN DEN BOSCH H， et al. Proposal of a new serovar of Actinobacillus pleuropneumoniae： sreovar 15[J]. Vet Microbiol， 2002， 84（1-2）： 47-52.

[3] DA COSTA M M， KLEIN C S ， BALESTRIN R， et al. Evaluation of PCR based on gene apxⅣA associated with 16S rDNA sequencing for the identification of Actinobacillus pleuropneumoniae and related species [J]. Curr Microbiol，2004，48 （3）：189-195.

[4] 李樹清，易建平，陳志飛，等.復(fù)合 PCR 鑒定胸膜肺炎放線桿菌方法的建立及初步應(yīng)用[J].微生物學(xué)報，2005，45（6）：966-969.

[5] 張志妮，顧萬軍，黃良宗，等.豬胸膜肺炎放線桿菌致病性生物Ⅰ型PCR 診斷方法的建立[J] .揚州大學(xué)學(xué)報 （農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版），2010，3（1）：6-9.

[6] 張 倩，陳廣力，文心田，等.胸膜肺炎放線桿菌復(fù)合減毒突變株WF83ΔapxⅡC/apxⅠAN/apxⅠAC的構(gòu)建[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報，2015，23（7）：841-850.