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      敗醬皂苷對(duì)照品制備工藝研究△

      2015-09-25 12:59:16陸昊劉宏尉王增尚劉江云郝麗莉楊世林
      中國(guó)現(xiàn)代中藥 2015年6期
      關(guān)鍵詞:敗醬吡喃齊墩

      陸昊,劉宏尉,王增尚,劉江云,郝麗莉,楊世林

      (蘇州大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 蘇州 215123)

      ·中藥工業(yè)·

      敗醬皂苷對(duì)照品制備工藝研究△

      陸昊,劉宏尉,王增尚,劉江云*,郝麗莉,楊世林

      (蘇州大學(xué) 藥學(xué)院,江蘇 蘇州 215123)

      目的:對(duì)黃花敗醬總皂苷進(jìn)行分離,以獲得高純度的3種敗醬皂苷對(duì)照品。方法:綜合采用多種硅膠、反相硅膠、凝膠柱色譜和中壓、高壓制備色譜技術(shù),對(duì)敗醬總皂苷進(jìn)行分離純化,采用HPLC-ELSD檢測(cè)樣品含量。結(jié)果:制備獲得的化合物1~3峰純度均為98.9%以上。結(jié)論:該制備工藝簡(jiǎn)潔、高效,可獲得高純度的敗醬皂苷對(duì)照品。

      敗醬;皂苷;對(duì)照品;分離

      敗醬是傳統(tǒng)中藥,始載于《神農(nóng)本草經(jīng)》,列為中品,其性微寒,味苦、辛,歸肺、大腸、肝經(jīng)。具有清熱解毒,排膿破瘀之功能,可用于治療腸癰、下痢、赤白帶下、產(chǎn)后瘀滯腹痛、目赤腫痛、癰腫疥癬等癥?,F(xiàn)代研究證明敗醬具有鎮(zhèn)靜催眠、抗菌、抗病毒、抗腫瘤、保肝利膽等多種藥理作用,臨床上可用于治療神經(jīng)衰弱、肝炎、肝硬化、流行性腮腺炎、鼻竇炎和結(jié)腸炎等[1]。

      本課題組對(duì)黃花敗醬中的化學(xué)成分進(jìn)行系統(tǒng)分離,鑒定了主要的17種三萜皂苷及其他化合物[2-4]。進(jìn)一步研究及文獻(xiàn)[5]分析結(jié)果表明,齊墩果酸型皂苷具有較好的抗腫瘤活性。本文報(bào)道敗醬總皂苷中3種主要成分對(duì)照品的制備工藝,為黃花敗醬的后續(xù)研究與開(kāi)發(fā)提供參考。

      1 儀器、材料與試劑

      1.1 儀器

      高效液相色譜系統(tǒng)(LC-20AD輸液泵、SPD-M20A紫外檢測(cè)器、CTO-20A柱溫箱、LC-Solution色譜工作站,日本島津公司);ODS色譜柱(PAQ-C18,日本Cosmosil公司);BP-Purifier-100中壓液相系統(tǒng)(蘇州利穗有限公司);HB-DAC-100動(dòng)態(tài)軸向制備柱系統(tǒng)(江蘇漢邦科技有限公司);Agilent-6100系列LCMS系統(tǒng);Avance III plus 400 MHz核磁共振儀(德國(guó)Bruker Daltonics)。

      1.2 材料

      黃花敗醬的全草(云南蒙自縣,批次:PS121010)于2012年6~8月間采集,經(jīng)蘇州大學(xué)陸

      葉博士鑒定為敗醬科敗醬屬植物黃花敗醬PatriniascabiosaefoliaFisch.的全草。

      1.3 試劑

      大孔吸附樹(shù)脂LX60(西安藍(lán)曉科技有限公司);硅膠300~400目(青島海洋化工有限公司);反相C18硅膠(75 μm,日本Cosmosil公司);Sephadex LH-20凝膠(美國(guó)GE公司);甲醇(色譜純,上?;瘜W(xué)試劑有限公司);純凈水(杭州娃哈哈公司);去離子水(自制);其他試劑均為分析純。

      2 方法

      2.1 液相分析條件

      采用高效液相-蒸發(fā)光散射檢測(cè)(HPLC-ELSD)分析方法,液相分析條件:蒸發(fā)光散射檢測(cè)器的漂移管溫度為40 ℃;霧化氣壓力為350 kPa;氮?dú)饬魉贋?.5 L·min-1;流動(dòng)相為甲醇(A)-0.5%甲酸水溶液(B),梯度洗脫(0~30 min,70%→100%A);柱溫為35 ℃;流速為1 mL·min-1;進(jìn)樣量為20 μL。

      2.2 黃花敗醬總皂苷的制備

      筆者根據(jù)抗腫瘤藥理實(shí)驗(yàn)結(jié)果,研究建立了總皂苷精制工藝:取黃花敗醬全草20 kg,用10倍量75%乙醇回流提取兩次,每次2 h,合并提取液,濃縮,加水至40 L,用氫氧化鈉(NaOH)調(diào)節(jié)pH至11~13之間,保持微沸水解4 h,靜置放冷,以氯化氫(HCl)調(diào)節(jié)pH至10,加水至40 L,上大孔吸附樹(shù)脂(20 L·BV-1),以水(4 BV)、10%乙醇(4 BV)、80%乙醇(6 BV)洗脫;收集80%乙醇洗脫部位,濃縮,干燥,即得敗醬總皂苷(170 g)。見(jiàn)圖1。

      注:1~3.敗醬皂苷,結(jié)構(gòu)式參見(jiàn)圖2。圖1 敗醬總皂苷HPLC圖

      3 結(jié)果

      3.1 分離純化

      稱(chēng)取敗醬總皂苷20 g,經(jīng)減壓硅膠柱柱色譜,以三氯甲烷-甲醇(10∶1→5∶5)系統(tǒng)溶劑梯度洗脫,TLC檢測(cè),合并相同組分,獲得流分F1~F16。

      取F9(4.23 g)經(jīng)硅膠H柱分離,氯仿-甲醇(CHCl3-CH3OH)(9∶1→8∶2)梯度洗脫,獲得F9.1~F9.6,其中F9.3上中壓反相碳18硅膠(ODS)柱,以CH3OH-H2O 40∶60、60∶40、65∶35、100∶0分段洗脫,其中65%洗脫流分經(jīng)高效液相色譜法(HPLC)檢測(cè)合并,濃縮后經(jīng)Sephadex LH-20,以CHCl3-CH3OH(1∶1)純化,獲得化合物1(0.45 g),按液相相對(duì)峰面積計(jì)純度為99.1%。

      取F12(8.16 g)經(jīng)硅膠H柱分離,CHCl3-CH3OH(7∶3→5∶5)梯度洗脫,獲得F12.1~F12.9,合并F12.5~F12.7上中壓ODS柱,以CH3OH-H2O 40∶60、75∶25、100∶0分段洗脫,其中75%流分合并,進(jìn)一步經(jīng)反相動(dòng)態(tài)軸向柱色譜以CH3OH-H2O按70∶30(F12.5.1~F12.5.4)、75∶25(F12.5.5~F12.5.15)、100∶0(F12.5.16~F12.5.20)進(jìn)行分離,其中流分F12.5.8~F12.5.11、F12.5.13~F12.5.14分別經(jīng)HPLC檢測(cè)合并,經(jīng)Sephadex LH-20,以CHCl3-CH3OH(1∶1)純化,依次獲得化合物2(82 mg)、3(0.95 g),按液相相對(duì)峰面積計(jì)純度依次為98.9%、99.2%。

      3.2 結(jié)構(gòu)鑒定

      筆者采用HR-ESI-MS、1H-NMR、13C-NMR等譜學(xué)技術(shù),參考相關(guān)文獻(xiàn),對(duì)化合物1~3進(jìn)行結(jié)構(gòu)鑒定,各化合物結(jié)構(gòu)式見(jiàn)圖2。

      圖2 敗醬皂苷1~3結(jié)構(gòu)式

      化合物1:白色無(wú)定形粉末(甲醇)。HR-ESI-MS給出[M-H]-準(zhǔn)分子離子m/z881.480 2(計(jì)算值為881.484 5),相應(yīng)分子式為C46H72O16。1H-NMR(400 MHz,C5D5N)和13C-NMR(100 MHz,C5D5N)數(shù)據(jù)與文獻(xiàn)[4]報(bào)道的3-O-β-D-吡喃木糖基-(1→3)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-β-D-吡喃木糖基-11α,12α-環(huán)氧齊墩果烷-28,13β-交酯一致。

      化合物2:白色粉末(甲醇),在TLC板上用10%硫酸-乙醇顯色為紫紅色,HR-ESI-MS給出[M-H]-準(zhǔn)分子離子m/z 1 028.552 5(計(jì)算值為1 028.56),相應(yīng)分子式為C52H84O20。1H-NMR(400 MHz,C5D5N)δ:6.38(1H,br s,H-1 of Rha),5.26(1H,d,J=8.0 Hz,H-1′ of Xyl′),5.12(1H,d,J=8.0 Hz,H-1 of Glc),4.86(1H,d,J=7.0 Hz,H-1 of Xyl),5.26(1H,br s,H-12),1.42(3H,d,J=6.0 Hz,CH3-6 of Rha),1.15(3H,s,CH3-23),1.10(3H,s,CH3-27),1.05(3H,s,CH3-24),1.01(3H,s,CH3-26),0.81(3H×3,s,CH3-29,30,25);13C-NMR(100 MHz,C5D5N)數(shù)據(jù)見(jiàn)表1。以上數(shù)據(jù)與文獻(xiàn)[3,6]報(bào)道的3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→4)-β-D-吡喃木糖基-(1→3)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-β-D-吡喃木糖基-齊墩果酸-28-O-β-D-吡喃葡萄糖苷比較,為該化合物經(jīng)堿水解脫去28-葡萄糖基的次生皂苷,鑒定其為齊墩果酸-3-O-β-D-吡喃葡萄糖基-(1→4)-β-D-吡喃木糖基-(1→3)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-β-D-吡喃木糖苷。

      化合物3:白色粉末(甲醇),HR-ESI-MS給出[M-H]-準(zhǔn)分子離子m/z 865.497 1(計(jì)算值為865.498 0),相應(yīng)分子式為C46H74O15。1H-NMR(400 MHz,C5D5N)δ:6.59(1H,s,H-1 of Rha),5.45(1H,d,J=7.5 Hz,H-1′ of Xyl′),5.01(1H,d,J=7.0 Hz,H-1 of Xyl),5.39(1H,br s,H-12),1.63(3H,d,J=6.0 Hz,CH3-6 of Rha),1.39(3H,s,CH3-23),1.30(3H,s,CH3-27),1.21(3H,s,CH3-24),0.99(3H,s,CH3-26),0.96(3H,s,CH3-29),0.94(3H,s,CH3-30),0.82(3H,s,CH3-25);13C-NMR(100 MHz,C5D5N)數(shù)據(jù)見(jiàn)表1。以上數(shù)據(jù)與文獻(xiàn)[4,6]報(bào)道的3-O-β-D-吡喃木糖基-(1→3)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-β-D-吡喃木糖基-齊墩果酸-28-O-β-D-吡喃葡萄糖苷比較,為該化合物經(jīng)堿水解脫去28-葡萄糖基的次生皂苷,鑒定其為齊墩果酸-3-O-β-D-吡喃木糖基-(1→3)-α-L-吡喃鼠李糖基-(1→2)-β-D-吡喃木糖苷。

      表1 化合物2和3的13C-NMR數(shù)據(jù)(100 MHz,C5D5N)

      4 結(jié)論

      敗醬中的化學(xué)成分復(fù)雜,對(duì)照品分離較為困難。本文首先采用大孔樹(shù)脂精制技術(shù),能夠有效富集總皂苷;對(duì)其中的主要成分,先采用減壓硅膠柱色譜進(jìn)行快速分段,再采用硅膠和反相硅膠柱色譜,分離純化各化合物;對(duì)難以分離的2個(gè)化合物PSH-2和PSH-3,采用反相高壓制備柱色譜技術(shù)進(jìn)行分離;終端純化采用Sephadex凝膠柱色譜,進(jìn)一步除去其他殘余雜質(zhì),提高產(chǎn)品純度。通過(guò)上述分離純化技術(shù)的綜合應(yīng)用,最終成功獲得3種目標(biāo)產(chǎn)物對(duì)照品。結(jié)果表明該分離方法較為簡(jiǎn)潔、高效,為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)利用黃花敗醬提供參考。

      植物藥化學(xué)成分復(fù)雜,成分相對(duì)含量不一,因?yàn)橘|(zhì)量研究中所需的特定對(duì)照品純度要求高,標(biāo)定用量大,所以對(duì)其分離純化工作量大,獲取難度高。近年來(lái),隨著多種分離填料以及制備用中壓和高壓液相色譜儀器的普及,分離工作帶得到了很大改善。本課題組研究表明,上述對(duì)照品制備技術(shù)作為一種通用流程,也可為其他高純度成分的制備提供借鑒[7-8]。

      [1] 劉明生,陳英杰,卜月華,等.黃花敗醬研究進(jìn)展[J].沈陽(yáng)藥學(xué)院學(xué)報(bào),1993,10(4):301-304.

      [2] 高亮,張琳,劉江云,等.黃花敗醬的化學(xué)成分研究[J].中草藥,2011,42(8):1477-1480.

      [3] Gao L,Zhang L,Li N,et al.New triterpenoid saponins fromPatriniascabiosaefolia[J].Carbohyd Res,2011,346(18):2881-2885.

      [4] Gao L,Zhang L,Wang L M,et al.New triterpenoid saponins fromPatriniascabiosaefolia[J].J Asian Nat Prod Res,2012,14(4):333-341.

      [5] Xu Q M,SHU Z,HE W J,et al.Antitumor activity ofPulsatillachinensis(Bunge)Regel saponins in human liver tumor 7402 cells in vitro and in vivo[J].Phytomedicine,2012,19(3-4):293-300.

      [6] Tian J,Wu F E,Qiu M H,et al.Triterpenoid saponins fromPterocephalushookeri[J].Phytochemistry,1993,32(6):1535-1538.

      [7] WANG L,Xu Q,Su S,et al.Simultaneous purification of Pulchinenoside B4and B5fromPulsatillachinensisusing macroporous resin and preparative high performance liquid chromatography[J].Ind Eng Chem Res,2012,51(45):14859-14866.

      [8] 劉慧璐,馮建勇,王增尚,等.高色價(jià)梔子黃的精制工藝研究[J].中國(guó)現(xiàn)代應(yīng)用藥學(xué),2013,30(12):1315-1319.

      SeparationofReferenceCompoundsfromTotalSaponinofPatriniascabiosaefolia

      LUHao,LIUHongwei,WANGZengshang,LIUJiangyun*,HAOLili,YANGShilin

      (CollegeofPharmaceuticalSciences,SoochowUniversity,Jiangsu,Suzhou,215123,China)

      Objective:This study managed to develop an efficient separation process to afford 3 saponins as reference compounds fromPatriniascabiosaefoliaFisch.Methods:The process was conducted using multiple column chromatographies including silica gel,reversed-phase silica gel,sephadex gel columns,and preparative middle-/high-pressure liquid chromatography.The HPLC/ELSD method was applied for purity analysis of samples.Results:Three saponins1-3were obtained with their purities above 98.9%.Conclusion:The separation process developed was highly efficient and compact,which resulted in target compounds with high purities.

      Patriniascabiosaefolia;saponin;reference compound;separation

      10.13313/j.issn.1673-4890.2015.6.015

      2014-11-17)

      江蘇省科技支撐計(jì)劃社會(huì)發(fā)展項(xiàng)目(BE2012649)

      *

      劉江云,副教授,研究方向:天然藥物化學(xué);Tel:(0512)65884301,E-mail:liujiangyun@suda.edu.cn

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