王健楠,阮洪生,崔玉東,孫虎男
(黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科技學(xué)院,大慶 163319)
巨噬細(xì)胞活化過(guò)程中會(huì)產(chǎn)生一氧化氮(NO)和超氧陰離子等激進(jìn)分子,這些分子產(chǎn)生與釋放不僅對(duì)細(xì)胞有著一定毒性作用,同時(shí)還參與了許多細(xì)胞的氧化還原過(guò)程[1]。巨噬細(xì)胞存在于幾乎所有的組織當(dāng)中,是重要的免疫效應(yīng)細(xì)胞。巨噬細(xì)胞可以在機(jī)體損傷和感染時(shí)迅速作出反應(yīng),同時(shí)一些其他類(lèi)型的有害條件,如缺氧和代謝壓力也可以促進(jìn)巨噬細(xì)胞活化。NO 是由精氨酸在一氧化氮合成酶 [nitric oxide synthase(NO S)]的作用下合成的一種重要的生物信使分子[2-3],參與血流調(diào)節(jié)、信號(hào)傳導(dǎo)、免疫防御等多種生理及病理過(guò)程[3-5]。近年來(lái),在活化巨噬細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)NO 是一個(gè)主要的細(xì)胞毒分子,進(jìn)而引起了關(guān)于NO 在炎癥中及免疫疾病中作用的廣泛研究,體內(nèi)多種組織和細(xì)胞均能合成內(nèi)源性NO(如巨噬細(xì)胞)。巨噬細(xì)胞等在未受到致炎因子刺激時(shí)不表達(dá)iNOS,也無(wú)誘生型NO 的合成,但是在許多致炎因子,如TNFα,IL-1,INF-γ,LPS 等的作用下會(huì)使iNOS 過(guò)量表達(dá),引起炎癥反應(yīng)的發(fā)生[6-7]。LPS 主要被巨噬細(xì)胞表面LPS 結(jié)合蛋白(LBP)/CD14/ toll-like receptor-4(TLR-4)結(jié)合[8]從而誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞的活化,誘導(dǎo)NO的過(guò)度釋放、iNOS 的過(guò)表達(dá)及細(xì)胞內(nèi)活性氧(ROS)的水平升高[9-10],最終引起機(jī)體的敗血癥休克。
通過(guò)對(duì)廣泛文獻(xiàn)的學(xué)習(xí)和整理,在之前的報(bào)道中已經(jīng)闡述了身痛逐瘀湯具有活血化淤,通痹止痛的功效[12]。在臨床上以此方為基本的復(fù)方中藥常用于治療瘀血痹阻等疾病之外,還可用于治療類(lèi)風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎,腰間盤(pán)突出癥以及心血管疾病等[11-13],這些研究結(jié)果充分地展示出身痛逐瘀湯在各種炎癥治療過(guò)程中的重要作用。但是,目前為止身痛逐瘀湯在由LPS 誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞NO 分泌過(guò)程中的效果及其調(diào)控機(jī)理尚不清楚。研究結(jié)果顯示,身痛逐瘀湯通過(guò)選擇性地抑制P38 信號(hào)通路,進(jìn)而有效地抑制了由LPS 誘導(dǎo)的RAW264.7 巨噬細(xì)胞NO 的產(chǎn)生以及iNOS 的表達(dá),同時(shí)也降低了LPS 誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞內(nèi)ROS 水平。研究結(jié)果為進(jìn)一步了解和認(rèn)識(shí)身痛逐瘀湯對(duì)巨噬細(xì)胞誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng)提供新的理論依據(jù)。
脂多糖(LPS,from Escherichia coli serotype 0111:B4)購(gòu)自Sigma Aldrich 公司,身痛逐瘀湯由(按此藥味組成和劑量,共計(jì)75 g,加入10 倍藥物質(zhì)量的水煎煮0.5 h,煎煮液過(guò)濾。濾渣再加入10 倍藥物質(zhì)量的水煎煮0.5 h,煎煮液過(guò)濾。合并2 次濾液,濃縮至干膏狀。精密稱(chēng)取干膏粉1 g,加入10 倍質(zhì)量的水,超聲提取30 min,用0.45 μm 濾膜過(guò)濾,濾液為供試液),RAW264.7 小鼠巨噬細(xì)胞來(lái)自實(shí)驗(yàn)室細(xì)胞庫(kù)。
DMEM/高糖培養(yǎng)基購(gòu)自美國(guó)Hyclone 公司,胎牛血清購(gòu)自美國(guó)Gibco 公司,抗mouse anti-JNk、p-JNK、ERK、p-ERK、P38、p-P38 和α-tubulin 單克隆抗體購(gòu)自美國(guó)Santa Cruz 公司。多功能酶標(biāo)儀(TECAN);流式細(xì)胞儀(BD,F(xiàn)ACS Calibur);蛋白免疫印跡系統(tǒng)(Amersham Bioscience,美國(guó))。
RAW264.7 培養(yǎng)在完全培養(yǎng)基(DMEM;Invitrogen),含有10%的胎牛血清(FBS;HyClone,Logan,UT,USA),和1%的抗生素(青霉素和鏈霉素)并置于37 ℃,5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中傳代培養(yǎng)。
ROS 的分析,用ROS 的指示劑(1 mM,CM2-DCFDA)與處理過(guò)的RAW264.7 細(xì)胞在37 ℃孵育15 min 后,用PBS 洗3 次,利用500 uL 的PBS 重懸,利用流式細(xì)胞儀分析10 000 個(gè)細(xì)胞內(nèi)所帶的ROS指示劑的熒光強(qiáng)度。NO 含量檢測(cè)是通過(guò)RAW264.7細(xì)胞培養(yǎng)上清液與10%格里斯試劑室溫下進(jìn)行反應(yīng)10 min 利用多功能酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)為540 nm 通過(guò)測(cè)定亞硝酸鹽的含量來(lái)檢測(cè)的。**P≤0.01 ,***P≤0.001,每組實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3 次。
回收細(xì)胞,加入蛋白質(zhì)裂解液4 ℃裂解細(xì)胞20 min。4 ℃,12 000 rpm 離心20 min,提取細(xì)胞總蛋白并定量,再用12%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺分離20 μg 的細(xì)胞總蛋白,電印跡轉(zhuǎn)移法將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到NC 膜(nitrocellulose membranes Millipore,USA)上。將膜用5% Skim milk 封閉1 h,TBST(含有15 mmol·L-1的NaCl 和0.2%Tween-20,10 mmol·L-1的Tris-HCl)洗滌5 次,5 min·次-1,隨后用一抗封閉,4 ℃孵育過(guò)夜。再用TBST 洗滌5 次,5 min·次-1,用與HRP 標(biāo)記的鼠或兔二抗,室溫孵育2 h。棄去二抗,TBST 洗滌5 次,5 min·次-1,即可進(jìn)行ECL 化學(xué)反應(yīng)發(fā)光顯影及結(jié)果分析。每組實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3 次。
采用SPSS 13.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。 多組均數(shù)比較采用t 檢驗(yàn)對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,P<0.01 為差異顯著,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
為了比較身痛逐瘀湯(F)與其12 種單方藥(秦艽、川芎、桃仁、紅花、甘草、羌活、沒(méi)藥、當(dāng)歸、香附、牛膝、地龍、靈脂,#1~#12)對(duì)LPS 誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞NO 產(chǎn)生的影響,同樣濃度的12 種單方藥與F 預(yù)處理RAW264.7 細(xì)胞30 min,再用1 μg·mL-1LPS 刺激處理24 h 結(jié)果顯示,只有F 組的處理明顯地抑制了LPS 誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞NO 的分泌(圖1)。
圖1 F 與十二種單方藥對(duì)LPS 誘導(dǎo)RAW264.7巨噬細(xì)胞NO 分泌的影響Fig.1 Effects of F and 12 monotherapy on LPS induced NO production in RAW264.7 macrophages
為了進(jìn)一步研究F 對(duì)LPS 誘導(dǎo)RAW264.7 巨噬細(xì)胞NO 分泌的抑制效果,RAW264.7 細(xì)胞在不同濃度(1、5、10、15 mg·mL-1)和不同時(shí)間段(0、6、12、24 h)用F 預(yù)處理30 min 后,再用1 μg·mL-1LPS 刺激細(xì)胞24 h,檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清液中的NO 含量和細(xì)胞內(nèi)iNOS 蛋白質(zhì)表達(dá)量。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,F(xiàn) 具有濃度和時(shí)間依賴(lài)性地抑制巨噬細(xì)胞NO 的分泌和iNOS 蛋白質(zhì)的表達(dá)(圖2 A、B、C、D)。另外,通過(guò)比較F 與已知的NO 抑制劑(SMT,硫酸甲基異硫脲)對(duì)NO 的抑制效果顯示,SMT(1 μg·mL-1)對(duì)NO 分泌和iNOS 蛋白的抑制效果要優(yōu)于F(圖2 E、F)。
圖2 F 對(duì)LPS 誘導(dǎo)RAW264.7 巨噬細(xì)胞NO 產(chǎn)生的抑制和對(duì)iNOS 表達(dá)的影響Fig.2 Effects of F on NO production and iNOS expression in LPS-stimulated RAW264.7 macrophages
為了研究F 對(duì)LPS 誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞產(chǎn)生ROS 的影響,F(xiàn)(10 mg·mL-1)預(yù)處理RAW264.7 細(xì)胞30 min,LPS(1 μg·mL-1)分別處理細(xì)胞(0、6、12、24 h)。結(jié)果顯示,F(xiàn) 能夠有效地抑制LPS 誘導(dǎo)的RAW264.7 細(xì)胞活性氧水平(圖3A、B)。為了進(jìn)一步檢測(cè)F 對(duì)MAPK信號(hào)通路的影響,RAW264.7 細(xì)胞用F 預(yù)處理30 min,之后用LPS 處理不同時(shí)間段(0、15、30、45 min)。結(jié)果顯示,F(xiàn) 選擇性的抑制了P38 的磷酸化,而對(duì)ERK,JNK MAPKs 信號(hào)通路并沒(méi)有影響(圖3C、D、E)。
圖3 F 對(duì)LPS 誘導(dǎo)的RAW264.7 巨噬細(xì)胞ROS 水平和P38 信號(hào)通路的影響Fig.3 Effects of F on LPS induced RAW264.7 cell ROS levels and P38 signaling pathway
在炎性反應(yīng)過(guò)程中巨噬細(xì)胞通過(guò)分泌不同的細(xì)胞炎癥介質(zhì)間接或直接參與各種炎癥性疾病的反應(yīng)過(guò)程。脂多糖(LPS)誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞NO 分泌以及ROS產(chǎn)生,進(jìn)一步導(dǎo)致炎癥的擴(kuò)大[14-15]。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,單味藥物對(duì)LPS 誘導(dǎo)的RAW264.7 細(xì)胞NO 分泌的抑制作用不明顯,與對(duì)照組比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。單味中藥作用效果不明顯的原因可能與藥物的提取、精制方法有關(guān)。提取時(shí)采用水煎煮的方法脂溶性成分沒(méi)有溶出,溶出的大多是糖、蛋白質(zhì)、苷類(lèi)等水溶性成分,由于沒(méi)有采用進(jìn)一步的精制工藝,雜質(zhì)多,影響了藥效成分的作用效果。傳統(tǒng)水煎獲得的提取物在抗炎方面的活性不及乙醇提取物,可能中藥抗炎類(lèi)活性成分以脂溶性小分子居多,水煎制劑可能通過(guò)體內(nèi)代謝才能發(fā)揮較強(qiáng)功效[16],此種闡述與實(shí)驗(yàn)中單味藥物對(duì)LPS 誘導(dǎo)RAW264.7 細(xì)胞釋放NO 的量抑制作用不明顯的原因分析一致。
活性氧可以激活多種下游的信號(hào)分子,如蛋白激酶C,細(xì)胞分裂素活化蛋白激酶(MAPK)以及核轉(zhuǎn)錄因子(NF-κB),從而調(diào)節(jié)各種各樣的促炎癥因子的表達(dá)。MAPKs 廣泛存在于真核細(xì)胞內(nèi),是一組保守的絲蘇氨酸蛋白激酶。目前已知的MAPKs 家族的主要成員中ERK1/2、JNK1/2、P38 均可參與對(duì)炎癥的調(diào)控。當(dāng)巨噬細(xì)胞受到LPS 刺激時(shí),細(xì)胞內(nèi)ROS 水平明顯就會(huì)上升,引起ROS 依賴(lài)性MAPKs 信號(hào)通路的活化,誘導(dǎo)炎性介質(zhì)的過(guò)度表達(dá)進(jìn)而引起自身免疫疾病以及炎癥性疾病。研究中利用LPS 刺激RAW264.7 巨噬細(xì)胞后,可以活化MAPKs 信號(hào)通路,這與前人的實(shí)驗(yàn)研究相吻合[17-18]。F 可以有效地抑制LPS 誘導(dǎo)的RAW264.7 細(xì)胞內(nèi)ROS 水平(圖2A、B),因此,認(rèn)為F 必然對(duì)ROS 依賴(lài)性的MAPKs 信號(hào)通路具有調(diào)控作用。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,F(xiàn) 選擇性地抑制了P38 MAPK 信號(hào)通路,說(shuō)明F 是通過(guò)抑制P38 信號(hào)通路起到抑制NO 分泌地效果。
綜上所述,身痛逐瘀湯可以有效地抑制LPS 誘導(dǎo)的巨噬細(xì)胞NO 分泌和細(xì)胞內(nèi)ROS 水平,同時(shí)還可以說(shuō)明這種抑制效果是通過(guò)選擇性地抑制P38 MAPK 信號(hào)通路來(lái)完成的。研究結(jié)果為身痛逐瘀湯在臨床上進(jìn)一步的應(yīng)用與開(kāi)發(fā)提供有價(jià)值的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)與理論依據(jù)。
[1]Bernhard B,Nathalie D,Nina G,et al.Redox Control of Inflammation in Macrophages[J].Antioxid Redox Signal,2013,19(6):595-637.
[2]Nathan C.Nitric oxide as a secretory product of mammalian cells[J].FASEB J.,1992,6(12):3051-3064.
[3]Hierholzer C,Harbrecht B,Menezes J M,et al.Essential role of induced nitric oxide in the initiation of the inflammatory response after hemorrhagic shock[J].J Exp Med,1998,187:917-928.
[4]Hibbs J B,Taintor R R,Vavrin Z.Macrophage cytotoxicity:role for L-arginine deiminase and imino nitrogen oxidation to Nitrite[J].Science,1987,235:473-476.
[5]Griffith O W,Stuehr D J.Nitric oxide synthases:properties and catalytic mechanism[J].Annu Rev Physiol,1995,57:707-734.
[6]盧秀紅,鄧祝新,黃維義,等.一氧化氮在免疫效應(yīng)機(jī)制中的作用及其細(xì)胞因子的調(diào)控[J].河南畜牧獸醫(yī),2009,12(3):10-12.
[7]劉建國(guó),王憲,陳明哲.一氧化氮與細(xì)胞因子之間的相互調(diào)節(jié)作用[J].生理科學(xué)進(jìn)展,2000,31(1):61-64.
[8]P?lsson-McDermott E M,O’Neill L A.Signal transduction by the lipopolysaccharide receptor,Toll- like receptor-4[J].Immunology ,2004,113,153-162.
[9]周忠江,葉海燕,吳賽珠.NO 前體-左旋精氨酸相關(guān)肽對(duì)大鼠血小板聚集、血栓形成及血漿NO、cGMP、PGI-2 的影響[J].第一軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),1999,19(6):540-542.
[10]Wang J,Mazza G.Inhibitory effects of anthocyanins and other phenolic compounds on nitric oxideproduction in LPS/IFN-γ-Activated RAW 264.7 Macrophages [J].J Agric Food Chem,2002,50(4):850-857.
[11]阮洪生,劉樹(shù)民.身痛逐瘀湯治療骨傷科疾病臨床研究進(jìn)展[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2011,17(9):275-277.
[12]Zhang Y,Tang Y,Guo J,et al.Dose-effect relationship of traditional Chinese medicine formula for promoting blood circulation to remove stasis on ADP-induced platelet aggregation and rabbit plasma thrombin time[J].China Journal of Chinese Materia Medica ,2009,34 (21):2821-2826.
[13]朱輝軍,黃勝光,譚寧,等.身痛逐瘀湯合黛力新治療風(fēng)濕性多肌痛臨床觀察[J].天津中醫(yī)藥,2010,27(3):197-198.
[14]董婷,嵇源源,王劍文.活性氧參與多壁碳納米管誘導(dǎo)的RAW264.7 細(xì)胞毒性[J].生態(tài)毒理學(xué)報(bào),2013,8(1):55-60.
[15]Guachalla LM,Rudolph K L.ROS induced DNA damage and checkpoint responses[J].Cell Cycle,2010,20(9):4058-4060.
[16]何維.醫(yī)學(xué)免疫學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2010.
[17]Karahashi H,Nagata K,Ishii K,et al.A selectiveinhibitor of p38 MAP kinase,SB202190,induced apoptotic cell death of a lipopolysaccharide (LPS)-treated macrophage-like cell line,J774.1 [J].Biochim Biophys Acta,2000,1502(2):207.
[18]徐曉露,張乃博,陳志寶,等.蟲(chóng)草素對(duì)OVA 免疫小鼠的體內(nèi)免疫抑制活性研究[J].黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào),2014,26(4):33-35.
黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報(bào)2015年3期