余中華等
摘 要 為提高海洋微生物的可培養(yǎng)性,采用海水需求實(shí)驗(yàn)分離海洋細(xì)菌的方法,分離出9株嚴(yán)格依賴海水生長的細(xì)菌。通過16S rDNA測(cè)序及同源性分析發(fā)現(xiàn):菌株HB10001(=CGMCC 1.10781T)與Spongiibacter tropicus DSM19543T的16S rDNA序列同源性最高,為96.3%,其(G+C)含量為66.7 mol%;菌株HB10303與Paenibacillus. agaridevorans DSM1355T的16S rDNA序列同源性最高,為98.4%,其(G+C)含量為45.5 mol%。
關(guān)鍵詞 依賴海水;細(xì)菌;分離培養(yǎng)
分類號(hào) Q933
Isolation and Characterization of Seawater Required Bacteria
YU Zhonghua1,2) LIU Jiayang1) CHEN Fujia1) BAO Shixiang2)
(1 Huanghuai University, Zhengzhou, Henan 450000, China
2 Institute of Tropical Biosciences and Biotechnolog Key Laboratory of Ministry
of Agriculture for Tropical Biotechnology, CATAS, Haikou, Hainan 571101, China)
Abstract In order to increase the cultivability of seawater-required bacteria, 9 strains were isolated for their seawater requirements. strain HB10001(=CGMCC 1.10781T) had the highest sequence similarity with Spongiibacter tropicus DSM19543T(96.3%). The G+C content is 66.7 mol%. Strain HB10303 had the highest sequence similarity with Paenibacillus agaridevorans DSM1355T(98.4%). The G+C content is 45.5 mol%.
Keywords seawater required ; bacteria ; isolation
海洋微生物對(duì)海水中鹽的組分和濃度有不同程度的依賴性,因此,在設(shè)計(jì)培養(yǎng)基時(shí),需要考慮海鹽對(duì)海洋微生物生長的影響[1]。有些海洋微生物的培養(yǎng)離不開海水,所以在培養(yǎng)基中添加海水是必不可少的。Mincer[2]發(fā)現(xiàn)的海孢菌Marinospora spp.和鹽孢菌Salinispora spp.只能在海水配制的培養(yǎng)基上生長。Han等[3]從阿穆爾斯基海灣中分離到的Salinibacterium amurskyense gen. nov. sp. nov是Microbacteriaceae的一個(gè)新屬。這類菌株能耐受濃度高達(dá)10%的NaCl,不過NaCl對(duì)其生長則并非必需,說明該菌株對(duì)海洋環(huán)境有良好的適應(yīng)性。Tsueng等[4]對(duì)海水中的陽離子及離子強(qiáng)度對(duì)Salinispora的3個(gè)種S. pacifica,S. arenicola和S. tropica生長的影響進(jìn)行了初步研究,結(jié)果表明,鈣離子和二價(jià)鎂離子及某些特定的離子強(qiáng)度對(duì)于Salinispora spp.的生長是必需的。Zhang等[5]采用5種不同培養(yǎng)基,分別對(duì)5種海綿中可培養(yǎng)放線菌進(jìn)行分離,證明培養(yǎng)基對(duì)可培養(yǎng)微生物的數(shù)量有顯著影響;其中,在無機(jī)鹽成分最為豐富的M3培養(yǎng)基上分離到的菌群也具有最大的多樣性。
本研究針對(duì)海洋細(xì)菌的特殊生存進(jìn)化環(huán)境,通過在R2A寡營養(yǎng)培養(yǎng)基中添加海水、純水及NaCl溶液模擬海洋環(huán)境,提高海洋微生物的可培養(yǎng)性,最大程度地分離培養(yǎng)依賴海水的細(xì)菌,并分離出新的未培養(yǎng)細(xì)菌。同時(shí),利用多相分類方法對(duì)分離出來的細(xì)菌進(jìn)行系統(tǒng)分類和鑒定,探明它們的種屬特性和系統(tǒng)發(fā)育學(xué)地位,進(jìn)一步豐富海洋微生物資源庫,以期為后期新基因、新化合物研究奠定基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 海洋細(xì)菌分離培養(yǎng)基
R2A培養(yǎng)基(海水):0.05 g細(xì)菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL海水,pH 6.8。
R2A培養(yǎng)基(純水):0.05 g細(xì)菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g 酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL純水,pH 6.8。
R2A培養(yǎng)基(NaCl):0.05 g細(xì)菌學(xué)蛋白胨,0.05 g酵母粉,0.05 g可溶性淀粉,0.05 g葡萄糖,0.05 g 酸水解酪素,0.03 g丙酮酸鈉,1.5 g瓊脂粉,100 mL 2%NaCl溶液,pH 6.8。
1.1.2 待測(cè)菌株
HB10001,HB10303分離自海南省三亞市三亞灣海水和海南省昌江縣海泥(表1)。
1.2 方法
1.2.1 海水、海綿、海泥樣品采集
于2011年9~10月分別在海南省和廣東省采集樣品用于海洋微生物分離。樣品信息詳見表1。
1.2.2 依賴海水細(xì)菌的分離方法
將采回的海綿、海底沉積泥樣品加入一定比例的無菌海水,勻漿后,備用。配制R2A海水和R2A純水平板培養(yǎng)基。將處理好的樣品稀釋至10-3涂布在R2A海水平板上,培養(yǎng)7 d后,首先進(jìn)行菌落形態(tài)和菌落個(gè)數(shù)統(tǒng)計(jì),然后將R2A海水平板上長出的可見菌落挑出在新的R2A海水平板培養(yǎng)基上重新劃線培養(yǎng),以獲得純菌株。再將獲得的純菌株進(jìn)行進(jìn)一步的海水需求試驗(yàn)。
1.2.3 海水需求試驗(yàn)
純化后的細(xì)菌測(cè)定步驟:用滅菌接種環(huán)從R2A(海水)培養(yǎng)基上挑取一定量的菌落,分別接種于R2A(純水),R2A(海水)以及R2A(NaCl)3種培養(yǎng)基中培養(yǎng)1~4周。采用顯微鏡觀察其生長情況。如果只在海水R2A培養(yǎng)基中觀察到菌落生長,則說明其需要海水才能正常生長。
統(tǒng)計(jì)R2A(純水),R2A(海水)以及R2A(NaCl)平板培養(yǎng)基分離海水、海綿樣品的菌落數(shù);統(tǒng)計(jì)海水需求試驗(yàn)結(jié)果,記錄嚴(yán)格依賴海水和不需要依賴海水的菌株數(shù),并統(tǒng)計(jì)其在總體分離細(xì)菌中所占比例。將嚴(yán)格需求海水的細(xì)菌作為目標(biāo)菌,進(jìn)行下一步測(cè)序研究。
1.2.4 培養(yǎng)特征分析
采用R2A(海水)培養(yǎng)基,將純化的于對(duì)數(shù)生長期的成熟菌株HB10001,重新接種在R2A(海水)培養(yǎng)基上,于25℃溫箱中培養(yǎng)7~14 d,并觀察記錄菌落形態(tài)、大小、干濕情況、顏色特征和生長狀況等。
1.2.5 顯微形態(tài)特征分析
將接種純化后的待測(cè)菌培養(yǎng)7~14 d后,選取生長較好的菌落,用滅菌接種環(huán)將菌落挑取到無菌離心管中,冷凍干燥。再將凍干呈粉狀的待測(cè)菌貼于有導(dǎo)電膠帶的電鏡樣品底座上,鍍膜處理(純金膜)。最后采用掃描電鏡觀察,并選取較好的待測(cè)菌密度以及清晰的視野進(jìn)行拍照保存。
1.2.6 生理特征分析
均參考Smibert和Krieg[6]的方法,包括革蘭氏染色,菌株運(yùn)動(dòng)性試驗(yàn),耐鹽范圍,生長pH值范圍,生長溫度范圍。
1.2.7 分子分類研究
總DNA提取、16S rDNA基因擴(kuò)增與系統(tǒng)發(fā)育分析:采用Saito和Miura[7]報(bào)道的方法提取和純化細(xì)菌DNA。PCR擴(kuò)增條件:93℃、預(yù)變性2 min;再于93℃變性30 s,52℃退火60 s,72℃延伸2 min,共35個(gè)循環(huán):72℃ 延伸10 min。采用1%瓊脂糖凝膠對(duì)PCR產(chǎn)物電泳檢測(cè)。將PCR擴(kuò)增產(chǎn)物交給上海生工工程有限公司測(cè)序后,獲得的菌株16S rDNA序列,通過GenBank中的Blast程序與核酸數(shù)據(jù)進(jìn)行對(duì)比,分析得出相似性(http://ncbi.nlm.nih.gov/blast)[8]。選取系統(tǒng)中比對(duì)結(jié)果相似性高的菌株及其序列,采用Clustal X2.0軟件包進(jìn)行多序列匹配排列,Mega3.1軟件包中的Kimura-parameter 方法計(jì)算進(jìn)化距離,neighbor-joining[9]方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,100次隨機(jī)抽樣,以自引導(dǎo)值(Bootstrap)評(píng)估系統(tǒng)發(fā)育樹的置信度[10]。
(G+C)mol%含量的測(cè)定:采用Mesbah報(bào)道的方法,用高效液相色譜分析基因組DNA(G+C)mol%[11]。
2 結(jié)果與分析
2.1 依賴海水細(xì)菌的分離培養(yǎng)
2.1.1 菌落計(jì)數(shù)
在稀釋梯度為10-3的情況下,通過平板計(jì)數(shù)發(fā)現(xiàn),R2A海水培養(yǎng)基,無論是在菌落形態(tài)多樣性上,還是菌落個(gè)數(shù)的統(tǒng)計(jì)上,都較其他2種培養(yǎng)基更優(yōu)(圖1,表2)。結(jié)果表明,R2A海水培養(yǎng)基上的菌落直徑在0.2~2 mm,形狀以圓形為主,邊緣規(guī)則,顏色以白色和透明無色為主,有黃色,藍(lán)色和綠色的菌落。
2.1.2 海水需求實(shí)驗(yàn)
結(jié)果表明,經(jīng)過劃線純化后的267株細(xì)菌中,有9株嚴(yán)格依賴海水的細(xì)菌(圖2),編號(hào)分別為:HB09009,HB09010,HB09012,HB10001,HB10301,HB10302,HB10303,HB10304,HB10305。觀察菌株HB10001、HB10303在海水、純水及NaCl 3種R2A培養(yǎng)基上的生長狀況發(fā)現(xiàn):HB10001、HB10303在最適溫度25℃下,經(jīng)過1~4周培養(yǎng),HB10001在純水及2% NaCl的R2A培養(yǎng)基上無生長,只在海水R2A培養(yǎng)基上生長,且生長狀況良好;HB10303僅能在海水R2A培養(yǎng)基上生長,且生長狀況不好,說明培養(yǎng)基有待進(jìn)一步優(yōu)化。
2.2 菌株HB10001和HB10303的鑒定
2.2.1 培養(yǎng)特征分析
菌株HB10001培養(yǎng)特征:生長緩慢,在R2A固體培養(yǎng)基平板上劃線培養(yǎng)6 d左右可見菌落,培養(yǎng)10 d左右可見成熟、清晰的菌落形態(tài)為扁平的圓形小菌落,菌落直徑為0.1~0.3 mm;菌落成乳黃色、半透明、表面光滑、邊沿不規(guī)則,無基內(nèi)菌絲。
菌株HB10303培養(yǎng)特征:生長緩慢,在R2A固體培養(yǎng)基劃線培養(yǎng)10~15 d可見菌落,培養(yǎng)20 d以上可見成熟、清晰的菌落形態(tài)為扁平的圓形小菌落,直徑為0.5 mm;菌落呈白色半透明狀,表面光滑,邊沿規(guī)則,無基內(nèi)菌絲 。
2.2.2 顯微形態(tài)特征分析
菌株HB10001顯微形態(tài)特征:兩頭尖的長桿狀,不產(chǎn)生孢子,無鞭毛。大小范圍:長徑為100~300 μm,短徑為10 μm。
菌株HB10303顯微形態(tài)特征:長桿狀。大小范圍:短徑0.5~1.4 μm,長徑2~8 μm(圖3)。
2.3 生理特征
菌株HB10001為革蘭氏陰性細(xì)菌,無運(yùn)動(dòng)性。在海水存在的情況下,能在0~4% NaCl范圍內(nèi)生長,最適為3%。能在pH值5.5~7.5的范圍內(nèi)生長,最適pH 6.8。能在溫度為8~38℃的范圍內(nèi)生長,最適生長溫度為25~38℃。
菌株HB10303為革蘭氏陰性細(xì)菌,無運(yùn)動(dòng)性。在海水存在的情況下,能在0~3% NaCl范圍內(nèi)生長,最適為1%。能在pH值5.5~7.5的范圍內(nèi)生長,最適pH 7.2。能在溫度為8~45℃的范圍內(nèi)生長,最適生長溫度為15℃。
2.4 分子指征分析
2.4.1 基因組DNA(G+C)mol%含量
對(duì)2株新分離的菌落進(jìn)行(G+C)mol%含量分析發(fā)現(xiàn),菌株HB10001的(G+C)mol%為66.7%,菌株HB10303的(G+C)mol%為45.5%。
2.4.2 16S rDNA序列測(cè)定及系統(tǒng)發(fā)育分析
菌株HB10001和菌株HB10303 16S rDNA序列全長分別為1 424 、1459 bp,將16S rDNA序列拼接后的結(jié)果與EzTaxon server(http://www.eztaxon.org/)(Chun et al.,2007)中相關(guān)菌進(jìn)行Blast比對(duì),并將該結(jié)果在Genbank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行登陸注冊(cè),菌株HB10001的登錄號(hào)為HM068370。參照序列比對(duì)后的結(jié)果,選取同源性高的標(biāo)準(zhǔn)菌株,利用ClustalX(Version1.8)軟件進(jìn)行排序,選用Mega 3.1軟件中的neighbor-joining方法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖4、5)
3 討論與結(jié)論
現(xiàn)今有關(guān)真正的海洋微生物的定義仍有爭論,普遍認(rèn)為,分離自海洋環(huán)境,正常生長需要海水,并可在寡營養(yǎng)、低溫條件下生長的微生物可視為嚴(yán)格的海洋微生物。然而,有些分離自海洋的微生物,其生長不一定需要海水,只需要加入適當(dāng)?shù)柠}離子,就可產(chǎn)生不同于陸棲微生物的代謝產(chǎn)物,或者擁有某些特殊的生理性質(zhì),也被視為海洋微生物。與陸棲細(xì)菌相比,海洋細(xì)菌普遍耐鹽,最適鹽度在2%~4%,也可以利用海洋微生物的特殊耐鹽度篩選真正的海洋細(xì)菌。本研究采用的分離依賴海水細(xì)菌的方法,是用于篩選出嚴(yán)格需求海水的細(xì)菌。此類細(xì)菌在普通的淡水寡營養(yǎng)培養(yǎng)基或者加入一定量Na+的情況下,都不能正常生長。本研究發(fā)現(xiàn),在傳統(tǒng)的寡營養(yǎng)培養(yǎng)基中,添加海水可提高海洋微生物的可培養(yǎng)性。所獲得的9株菌則是常規(guī)傳統(tǒng)培養(yǎng)基分離所忽略的類群。
細(xì)菌的多相分類研究經(jīng)歷了長期不斷的發(fā)展和提高。早期主要以形態(tài)特征、培養(yǎng)特征及生理生化特征等分類學(xué)特征對(duì)其進(jìn)行描述分類。但傳統(tǒng)分類系統(tǒng)不能確切說明遺傳進(jìn)化地位和關(guān)系。現(xiàn)今分子生物學(xué)技術(shù)在現(xiàn)代分類學(xué)中已占主導(dǎo)地位。一般認(rèn)為,16S rDNA 序列同源性大于95%的菌可歸為同一屬,大于97% 可視為同一種。因此,在菌株鑒定時(shí),16S rDNA 序列同源性低于 95%的菌可考慮建立新屬,低于 97% 的建立新種時(shí)必須測(cè)定DNA-DNA 雜交率。本實(shí)驗(yàn)得到的菌株HB10001,與其16S rDNA序列同源性最高的是Spongiibacter tropicus DSM19543T(96.3%),因此需要測(cè)定 DNA-DNA 雜交率來確定是否為新種。HB10303與Paenibacillus. agaridevorans DSM1355T(98.4%)的16S rDNA序列同源性最高,則需要通過進(jìn)一步的多相分類來鑒定。
同時(shí),菌株HB10001、HB10303分離自中國南海,都只能在海水培養(yǎng)基中形成正常的菌落,離開海水,均不能生長。此外,通過耐鹽試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),HB10001耐鹽范圍為0~4%,HB10303耐鹽范圍為0~3%。綜合菌株來源、低溫適應(yīng)性、菌株嚴(yán)格依賴海水生長、鹽耐受性,認(rèn)為菌株HB10001,HB10303為海洋細(xì)菌。
參考文獻(xiàn)
[1] Azam F. Microbial control of oceanic carbon flux: the plotthickens [J]. Science, 1998, 280(5 364): 694-696.
[2] Mincer T J, Jensen P R, Kauffman C A, et al. Widespread and persistent populations of a major new marine actinomycete taxon in ocean sediments [J]. Appl Environ Microbiol, 2002, 68 (10): 5 005-5 011.
[3] Han S K, Nedashkovskaya O I, Mikhailov V V, et al. Salinibacterium amurskyense gen. nov.,sp. nov.,a novel genus of the family Microbacteriaceae from the marine environment[J]. Int J Syst Evol Microbiol, 2003, 53: 2 061-2 066.
[4] Tsueng G,Lam K S. A preliminary investigation on the growth requirement for monovalent cations,divalent cations and medium ionic strength of marine actinomycete Salinispora[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2010, 86 (5): 1 525-1 534
[5] Zhang H, Zhang W, Jin Y, et al. A comparative study on the phylogenetic diversity of culturable actinobacteria isolated from five marine sponge species[J]. Antonie van Leeuwenhoek,2008, 93(3): 241-248
[6] Minnikin D E, Collins M D, ,Goodfellow M. Fatty acid and polar lipid composition in the classification of Cellulomonas, Oerskovia and related taxa[J]. J Appl Bacteriol, 1979, 47: 87-95.
[7] Saito H, Miura K. Preparation of transforming deoxyribonucleic acid by phenol treatment[J]. Biochim Biophys Acta, 1963, 72: 619-629.
[8] Thompson J D, Gibson T J, Plewniak F, et al. The CLUSTAL X windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools[J]. Nucleic Acids Res, 1997, 25: 4 876-4 882.
[9] Saitou N, Nei M. The neighbor-joining methods: a new method for reconstructing phylogenetic trees[J]. Mol Biol Evol, 1987, 4: 406-425.
[10] Kumar S, Tamura K, Jakobsen I B, et al. MEGA2: molecular evolutionary genetics analysis software[J]. Bioinformatics, 2001, 17: 1 244-1 245.
[11] Mesbah M, Premachandran U, Whitman W B. Precise measurement of the G+C content of deoxyribonucleic acid by high-performance liquid chromatography[J]. Int J Syst Bacteriol, 1989, 39: 159-167.