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    馬鈴薯光響應(yīng)StR2R3–MYB1 基因的克隆與表達(dá)分析

    2015-07-15 05:34:08秦玉芝邢錚潘妃熊興耀
    關(guān)鍵詞:擬南芥元件克隆

    秦玉芝,邢錚,潘妃,熊興耀,2*

    (1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝園林學(xué)院,湖南 長沙 410128;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,北京 100081)

    植物MYB 類轉(zhuǎn)錄因子以含有MYB 結(jié)構(gòu)域為共同特征[1]。每個MYB 結(jié)構(gòu)域以螺旋–轉(zhuǎn)角–螺旋(helix–tum–helix,HTH)的形式結(jié)合于目標(biāo)DNA 大溝處,調(diào)控目的基因的轉(zhuǎn)錄[2]。第1個植物myb 基因ZmMYBc1 是Paz–Ares 于1987年在玉米中發(fā)現(xiàn)的,ZmMYBc1 與動物myb 基因的同源性達(dá)40%[3]。不同作物中myb 基因的數(shù)量各異,在玉米中表達(dá)的myb 基因約有80個以上[4],擬南芥中MYB 類轉(zhuǎn)錄因子有129個[5],馬鈴薯中MYB 類轉(zhuǎn)錄因子有117個。MYB 類轉(zhuǎn)錄因子中以R2R3–MYB 的數(shù)量最多,其功能涉及植物次生代謝調(diào)控、細(xì)胞形態(tài)發(fā)生、激素刺激和環(huán)境脅迫應(yīng)答、分生組織形成及細(xì)胞周期控制等過程[6]。關(guān)于馬鈴薯MYB 類基因克隆和功能分析的報道尚少。在前期研究中,筆者發(fā)現(xiàn)了1個受光影響,并且對馬鈴薯花青素合成關(guān)鍵酶StCHS 基因表達(dá)具有明顯正向作用的MYB 轉(zhuǎn)錄因子(GenBank: DQ917781.1)[7],本研究中通過同源克隆,在馬鈴薯原始栽培種Yan 中獲得了該轉(zhuǎn)錄因子(StR2R3– MYB1)的完整CDS 序列,并運用現(xiàn)代生物信息學(xué)技術(shù)對馬鈴薯StR2R3–MYB1 基因序列和蛋白質(zhì)序列特征進(jìn)行了比對、分析和預(yù)測,對基因表達(dá)的亞細(xì)胞定位、組織表達(dá)特異性及光照應(yīng)答模式進(jìn)行了分析,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    馬鈴薯原始栽培種 Yan(S. tuberosum subsp. andigena var. yanacochense)由湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)馬鈴薯工程技術(shù)中心種質(zhì)資源庫提供。擬南芥原生質(zhì)體由湖南大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)研究院劉選明先生惠贈。表達(dá)載體pEGAD、pEGAD–MYC、PA7–YFP、大腸桿菌DH5α、農(nóng)桿菌菌種Agl–0 均由湖南大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)研究院劉選明先生惠贈;T 載體pGM–T 購自天根生化公司。

    1.2 方法

    1.2.1 基因的克隆

    根據(jù)表1 設(shè)計的引物,以由RNA 逆轉(zhuǎn)錄所得cDNA 為模板進(jìn)行RT–PCR 。

    表1 StR2R3–MYB1 克隆引物 Table 1 Primer sequences for StR2R3–MYB1 cloning

    1.2.2 序列生物信息學(xué)分析的相關(guān)網(wǎng)站和軟件

    馬鈴薯基因組數(shù)據(jù)庫網(wǎng)站:http://www. potatogenome.net/index.php/Main_Page。

    蛋白結(jié)構(gòu)域分析網(wǎng)站:http://www.Ncbi.nlm.nih.gov/。

    轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)域元件分析網(wǎng)站:PlantCARE (http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)。

    蛋白一級結(jié)構(gòu)預(yù)測網(wǎng)站:ProtParam(http://web. expasy.org/protparam/)。

    卷曲螺旋結(jié)構(gòu)預(yù)測網(wǎng)站:COILSServer(http: //embnet.vital–it.ch/software/COILS_form.html)。

    三級結(jié)構(gòu)預(yù)測網(wǎng)站:SWISS–MODEL(http:// swissmodel.expasy.org/)。

    跨膜區(qū)域分析網(wǎng)站:TMHMM(http://www.cbs. dtu.dk/services/TMHMM/)。

    信號肽分析工具網(wǎng)站:SignalIP3.0(http://www. cbs.dtu.dk/services/SignalP/)。

    親疏水性分析網(wǎng)站:http://www.expasy.ch/cgi– bin/protscale.pl。

    同源性分析采用GeneDoc 軟件。進(jìn)化樹構(gòu)建采用MEGA5.0 軟件。

    1.2.3 實時熒光定量PCR

    定量PCR 反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性10min,95℃變性30 s,58℃退火30 s,72℃延伸20 s, 45個循環(huán)。

    內(nèi)參為ActinB。所有檢測樣品均設(shè)置3次重復(fù)。定量引物見表2。

    表2 StR2R3–MYB1 實時熒光定量PCR 引物 Table 2 qPCR primer sequences for StR2R3–MYB1

    1.2.4 擬南芥原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化

    取20μg 重組質(zhì)粒,加入100 μL 擬南芥原生質(zhì)體和110 μL PEG 溶液,混勻,放置30min。加入440 μL W5 溶液,23℃、750 r/min 離心1min。

    1.2.5 光處理

    新繼代的組培苗置于黑暗、22℃培養(yǎng)箱中生長12 d,形成白化苗。將白化苗分別置于白光、藍(lán)光、紅光、遠(yuǎn)紅光培養(yǎng)箱中,于放置后0、0.5、1、2、4、8、12、24 h 取樣,–80℃保存。藍(lán)光、紅光、遠(yuǎn)紅光和白光光源分別為LED–藍(lán)光(波長為 470 nm),LED–紅光(波長為 660 nm),LED–遠(yuǎn)紅光(波長為740 nm)和白色熒光燈。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 馬鈴薯StR2R3–MYB1 基因的克隆與同源性分析

    經(jīng)RT–PCR 擴增,獲得1 條800 bp 的特異性片段。該片段包含1個全長798 bp 的CDS 序列,編碼265個氨基酸長度的蛋白質(zhì),命名為StR2R3– MYB1。馬鈴薯StR2R3–MYB1 蛋白序列與番茄、茄子的同源性高達(dá)99%,與擬南芥MYB113 的同源性也在70%以上(圖1~3)。

    圖1 StR2R3–MYB1 氨基酸序列系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果 Fig. 1 Homology analysis for amino acid sequence of StR2R3 – MYB1

    圖2 StR2R3–MYB1 cDNA 序列與其氨基酸序列預(yù)測結(jié)果 Fig. 2 Prediction for cDNA and amino acid sequence of StR2R3–MYB1

    圖3 StR2R3–MYB1 氨基酸序列同源性分析的結(jié)果 Fig.3 Homology analysis for amino acid sequence of StR2R3–MYB1

    2.2 StR2R3–MYB1 蛋白序列結(jié)構(gòu)的分析

    StR2R3–MYB1 蛋白全長265 aa,主要氨基酸為天冬氨酸(9.8%)、亮氨酸(9.4%)、甘氨酸(7.5%)和谷氨酸(6.8%),正/負(fù)電荷殘基數(shù)分別為32 和32,相對分子質(zhì)量為30.23,分子式為C1316H2072N386O399S17,等電點為6.95,不穩(wěn)定系數(shù)為47.52(>40),穩(wěn)定性弱,沒有跨膜信號,蛋白氨基酸序列不存在卷曲螺旋。StR2R3–MYB1 蛋白的疏水區(qū)域分布比較均衡,疏水性氨基酸多于親水性氨基酸,但其N 端具有明顯的親水區(qū)域(圖4)。

    2.3 StR2R3–MYB1 核酸序列的結(jié)構(gòu)

    StR2R3–MYB1 基因位于馬鈴薯10 號染色體的51 749 197~51 750 359 bp,基因全長1 163 bp,由3個外顯子和2個內(nèi)含子構(gòu)成。CDS 序列中含有2個DNA–結(jié)合結(jié)構(gòu)域,分別位于第21~71 aa 和第74~122 aa,屬于R2R3 類MYB 轉(zhuǎn)錄因子,將該基因命名為StR2R3– MYB1。對啟動子順式作用元件[8]進(jìn)行分析的結(jié)果表明,StR2R3–MYB1 基因的調(diào)控區(qū)域存在大量與光相關(guān)的元件,如G–Box、Box4、BoxⅡ、I–Box、MNF1 等,還存在脫落酸誘導(dǎo)相關(guān)元件ABRE、生物鐘相關(guān)元件Circadian 和茉莉酸甲酯相關(guān)元件CGTCA– motif (圖5)。

    圖4 StR2R3-MYB1 蛋白疏水性/親水性預(yù)測結(jié)果 Fig. 4 StR2R3-MYB1 protein hydrophobic/hydrophilic prediction

    2.4 StR2R3–MYB1 蛋白的亞細(xì)胞定位分析

    將構(gòu)建好的StR2R3–MYB1 與YFP 融合蛋白表達(dá)載體轉(zhuǎn)化擬南芥原生質(zhì)體,在激光共聚焦掃描顯微鏡下觀察基因的亞細(xì)胞定位情況,可見StR2R3–MYB1∷YFP 融合蛋白定位在細(xì)胞核內(nèi) (圖6)。

    2.5 StR2R3–MYB1 基因表達(dá)模式的分析

    實時熒光定量PCR 分析結(jié)果顯示,StR2R3– MYB1 在根、莖、葉的相對表達(dá)量依次升高(表3)。

    表3 StR2R3–MYB1 基因在不同組織部位的相對表達(dá)量 Table 3 Gene expression pattern analysis for StR2R3–MYB1

    2.6 光調(diào)節(jié)StR2R3–MYB1 基因的表達(dá)

    黑暗培養(yǎng)12 d 的馬鈴薯白化苗轉(zhuǎn)移至白光下生長0、0.5、2、4、8、12、24 h 的StR2R3–MYB1基因表達(dá)量隨光處理時間的延長呈上升趨勢(圖7), StR2R3–MYB1 的表達(dá)受到了白光的誘導(dǎo)。分別用紅、藍(lán)和遠(yuǎn)紅光處理白化苗后,3 種單色光都能誘導(dǎo)StR2R3–MYB1 的表達(dá),其中遠(yuǎn)紅光、藍(lán)光誘導(dǎo)4 h 時,StR2R3–MYB1 的表達(dá)量出現(xiàn)第1個峰值,隨后下降,在12 h 后回升。紅光對StR2R3–MYB1 的誘導(dǎo)作用在8 h 后開始顯現(xiàn)(圖7)。

    圖7 光調(diào)節(jié)StR2R3–MYB1 基因的表達(dá) Fig. 7 Expression of light regulationgene of StR2R3–MYB1

    3 結(jié)論與討論

    在植物響應(yīng)逆境脅迫的信號傳導(dǎo)系統(tǒng)中,轉(zhuǎn)錄因子起著重要的作用。序列分析結(jié)果表明,馬鈴薯StR2R3–MYB1 與其他MYB家族轉(zhuǎn)錄因子在DNA 結(jié)合域具有高度保守性,屬于典型的R2R3 類型MYB 轉(zhuǎn)錄因子。核苷酸序列和氨基酸序列分析結(jié)果表明,StR2R3–MYB1 的調(diào)控區(qū)域存在大量與光相關(guān)的元件,如G–Box、Box4、BoxⅡ、I–Box、MNF1等,還存在脫落酸誘導(dǎo)相關(guān)元件ABRE、生物鐘相關(guān)元件Circadian、茉莉酸甲酯相關(guān)元件CGTCA。StR2R3–MYB1 的轉(zhuǎn)錄很可能受光信號及環(huán)境脅迫的誘導(dǎo)。StR2R3–MYB1 氨基酸序列上沒有跨膜信號,不存在卷曲螺旋,具有明顯的親水區(qū)域,氨基酸殘基與水分子的相互作用較強,表明該蛋白的穩(wěn)定性較低。亞細(xì)胞定位分析發(fā)現(xiàn)StR2R3–MYB1 蛋白在細(xì)胞核中表達(dá),這正符合轉(zhuǎn)錄因子的亞細(xì)胞定位特征。系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果表明,StR2R3–MYB1 與擬南芥AtMTB113、AtMTB90 和茄子SmMYB 及番茄SlCMYB1 同屬于1個亞族。該亞族MYB 轉(zhuǎn)錄因子的功能多數(shù)與花青素合成相關(guān),如AtMTB113 與花青素積累有關(guān)[8–9],而AtMTB90 與色素合成相關(guān)[10],SmMYB 與花青素合成相關(guān)[11],SlCMYB1 則與冷誘導(dǎo)、低溫脅迫相關(guān)[12]。筆者的前期研究[7]中運用多因子及其互作逐步回歸法建立光照度、溫度和處理時間影響基因表達(dá)的模式,發(fā)現(xiàn)環(huán)境溫度與StR2R3–MYB1 和StPAL、StDFR 基因的表達(dá)量呈負(fù)相關(guān),環(huán)境光照度與StR2R3–MYB1 和StCHS、StDFR的表達(dá)呈正相關(guān)。馬鈴薯StR2R3–MYB1 轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子對StCHS 基因的表達(dá)具有明顯正向影響。本研究中StR2R3–MYB1 蛋白結(jié)構(gòu)分析、蛋白功能預(yù)測、基因組織表達(dá)特性分析及光處理后基因表達(dá)特性分析等研究結(jié)果,使前期研究中的推斷StR2R3–MYB1 與受光和低溫調(diào)節(jié)的馬鈴薯花青素合成相關(guān)[7]得到了進(jìn)一步的印證。

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