賈 浩,郝建博,曹洪波,韓 艷,李 丹,陳海江
(河北農(nóng)業(yè)大學 園藝學院,河北保定071000)
葉綠素熒光技術是在無損情況下研究葉片光合機構的有效工具,已廣泛應用于植物逆境生理研究。快速葉綠素熒光技術可記錄下1s內(nèi)植物熒光的瞬間變化,并呈現(xiàn)出OJIP曲線形式。Strasser等[1]通過對生物膜能量流動原理[2]的研究,建立了針對快速葉綠素熒光誘導曲線的數(shù)據(jù)分析和處理方法——JIP-測定(JIP-test),這使得在光系統(tǒng)Ⅱ(PSⅡ)供體側和受體側電子傳遞方面的研究變得更為便捷。目前,關 于 植 物 在 高 溫[3-5]、低 溫[6]、干 旱[7]、鹽 脅迫[8-9]、缺素[10]和重金屬污染[11]等逆境條件下快速葉綠素熒光誘導動力學特征的研究已有相關報道,并且發(fā)現(xiàn)在不同的環(huán)境條件下,OJIP曲線呈現(xiàn)出不同的變化特點。
桃[Prunus persica(L.)Batsch]屬薔薇科落葉喬木果樹,原產(chǎn)于海拔高、日照長的地區(qū),形成了喜光的特性,對光照不足極為敏感。但喜光的桃樹在應對不同的光照條件時葉綠素熒光曲線的特征仍未有報道。當光強發(fā)生變化時,葉綠素熒光的變化可以在一定程度上反映光強對植物的影響,通過對不同光強下快速葉綠素熒光誘導動力學曲線的分析,可深入了解光照強弱對植物光合機構主要是PSⅡ的影響以及光合機構對環(huán)境的適應機制。因此,本試驗以喜光植物桃樹為研究對象,探討桃樹在遮蔭形成的不同光照環(huán)境下的葉綠素熒光曲線及其參數(shù)的變化特征和響應機制,旨在依據(jù)桃樹的喜光特性制定適宜的修剪管理技術提供理論依據(jù)。
試驗于2014年在河北省保定市順平縣南臺魚村與滿城縣坨南村交界地帶的桃園中進行,試材為3年生‘保佳紅’桃品種,株行距2m×5 m,樹形為Y 字形。植株生長正常,常規(guī)管理。選擇生長勢一致的桃樹45棵,分別在桃樹生長Ⅰ期(展葉后30~60d)、Ⅱ期(展葉后60~90d)、Ⅲ期(展葉后90~120d)搭棚架,每個時期用透光率分別為80%、60%、40%、20%(用T1、T2、T3、T4表示)的遮陽網(wǎng)進行遮陰處理,以各時期自然光下的桃樹作對照(CK)。各處理桃樹間留2株做保護株,單株小區(qū),3次重復。
1.2.1 快速葉綠素熒光誘導動力學曲線的測定 在各時期各遮陰處理20d后,利用Pocket PEA 植物效率儀(Hansatech,HK),選擇晴朗無風天氣,每個處理選取3棵樹,每棵樹選取3個新梢頂端起第5片完全展開葉為測定對象,在上午10:00 左右測定葉片快速葉綠素熒光誘導動力學曲線。將獲得的OJIP熒光誘導曲線進行JIP-test分析,可得到以下熒光參數(shù):最大光化學效率(Fv/Fm或φPo);捕獲的激子將電子傳遞到電子傳遞鏈中超過QA的其它電子受體的概率(ψo);反應中心吸收的光能用于電子傳遞的量子產(chǎn)額(φEo);用于熱耗散的量子比率(φDo);單位反應中心吸收的光能(ABS/RC);單位反應中心捕獲的用于還原QA的能量(TRo/RC);單位反應中心捕獲的用于電子傳遞的能量(ETo/RC);單位反應中心耗散掉的能量(DIo/RC)。測定前先將葉片在黑暗中充分適應15min,然后測定。
1.2.2 熒光參數(shù)Fv/Fm日變化的測定 在測定快速葉綠素熒光誘導動力學曲線的當天,采用同樣方法于6:00~18:00每隔2h測定PSⅡ最大光化學效率Fv/Fm的日變化。
采用Excel 2003 進行數(shù)據(jù)處理及繪圖,并用DPS 7.05版軟件Duncans新復極差法作差異顯著性比較。
植物快速葉綠素熒光誘導動力學曲線(OJIP)可以反映出大量關于PSⅡ反應中心原初光化學反應的信息。由圖1,A~C 可以看出,各時期各處理的OJIP曲線在O 點差異不大。在J點處(2 ms),Ⅰ期T4處理的熒光值高于該時期其他處理的熒光值,而該時期其他處理的熒光值差異不大;Ⅱ期T3、T4處理的熒光值差異不大,但都高于T1、T2處理,而CK 的熒光值最低;Ⅲ期T4處理的熒光值偏高于T3處理,并且都高于CK、T1、T2處理,而后三者間差異不大。在1點處(30ms),Ⅰ期T4處理的熒光值明顯高于T1~T3處理,而CK 的熒光值明顯低于其他處理;Ⅱ期除T2和T3處理差異不大外,其他處理間差異較大,熒光值大小表現(xiàn)為:T4>T3、T2>T1>CK;Ⅲ期除T1和T2處理差異不大外,其他處理間差異較大,熒光值大小表現(xiàn)為:T4>T3>T2、T1>CK。在最大熒光P 點處,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期的熒光值變化規(guī)律一致,均隨著遮陰程度的增加(CK>T1>T2>T3>T4)而依次升高??傮w觀察分析可知,各遮陰處理桃樹葉片的OJIP曲線從O 點變化差異不大,經(jīng)過J、I點差異的積累,到達P點時,差異逐漸增大;Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期的OJIP曲線變化規(guī)律大體相同。
圖1 各時期遮蔭條件桃樹葉片快速葉綠素熒光誘導動力學曲線的變化A.Ⅰ期,展葉后30~60d;B.Ⅱ期,展葉后60~90d;C.Ⅲ期,展葉后90~120d;CK、T1、T2、T3、T4 分別為100%、80%、60%、40%、20%的自然光照處理;下同F(xiàn)ig.1 Effects of shading on fast chlorophyll fluorescence induction dynamics of peach leaves at different period A.First period,30-60days after leaves unfolding;B.Second period,60-90days after leaves unfolding;C.Third period,90-120days after leaves unfolding;CK,T1,T2,T3,T4indicate 100%,80%,60%,40%and 20%of full sunlight;The same as below.
φPo反映了吸收的光能被反應中心捕獲的量子產(chǎn)額,其實際上意義與Fv/Fm相同。由圖2,A 可知,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期的φPo均隨遮陰程度的加深而呈現(xiàn)先上升后下降的變化規(guī)律,并在T3處理最高,比同期CK 分別顯著升高了10.2%、8.3%、4.0%;T4處理各時期的φPo比同期T3處理有所降低,但差異不顯著。由此說明,隨著遮陰程度的增加,葉片吸收的光能被反應中心捕獲的概率逐漸提高。
ψo反映了激子被反應中心捕獲后,用于推動電子傳遞到電子傳遞鏈中超過QA的其他電子受體的激子占用于推動QA還原激子的比率。由圖2,B可知,ψo 在Ⅰ期從CK 到T4處理而依次升高,并與CK 的差異均達顯著水平;ψo 在Ⅱ、Ⅲ期從CK 到T3處理逐漸升高,到T4處理開始下降,且顯著低于同期T3處理。由此說明,隨著遮陰程度的增加,電子傳遞到電子傳遞鏈中QA-下游的電子受體的概率逐漸提高,但該概率在相對光強降低到20%時反而有所下降。
φEo反映了反應中心吸收的光能用于電子傳遞的量子產(chǎn)額。由圖2,C 可知,隨著遮陰程度的加強,φEo在Ⅰ期逐漸升高,并與CK 的差異均達顯著水平,而在Ⅱ、Ⅲ期表現(xiàn)出先升高后下降的趨勢。其中,φEo在Ⅱ期以T3處理最高,并與T1、T2處理的差異不顯著,而與CK、T4處理的差異顯著;在Ⅲ期則以T2處理最高,除與T3處理的差異不顯著外,均顯著高于其他處理。由此說明,當光強降低較少時,反應中心吸收的光能將電子傳遞到電子傳遞鏈中超過QA的其他電子受體的概率逐漸升高,而當光強降低較多時,φEo會有所降低。
φDo反映了用于熱耗散的量子比率。圖2,D 顯示,φDo在Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期均隨遮陰程度的增強而呈依次下降的變化規(guī)律;雖然T4處理的φDo比T3處理的有所升高,但同時期兩處理間差異不顯著??梢?,在遮陰條件下,桃樹葉片吸收的光能用于熱耗散的比率減少。
通過快速葉綠素熒光誘導動力學曲線OJIP可以分析出PSⅡ反應中心的活性,具體體現(xiàn)于4個活性參數(shù):單位有活性反應中心吸收的光能ABS/RC、捕獲的光能TRo/RC、用于電子傳遞的能量ETo/RC 和熱耗散的光能DIo/RC。
首先,ABS/RC 在Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期的CK、T1、T2、T3處理下,隨著遮陰程度的增加而依次降低;除了Ⅲ期的T1和T2處理間差異不顯著外,同時期的其他處理間差異均達到顯著性水平。T4處理的ABS/RC 在Ⅰ期雖然顯著低于CK,但卻顯著高于同時期的T3處理;其在Ⅱ期也高于同時期的T3處理,但其差異不顯著;在Ⅲ期與T3處理相近(圖3,A)。
圖2 遮蔭條件下桃樹葉片φPo、ψo、φEo和φDo的變化同時期不同字母表示不同遮陰處理之間在0.05 水平上有顯著性差異;下同F(xiàn)ig.2 TheφPo,ψo,φEoandφDoof peach leaves under shading condition The different normal letters within the same period indicate significant difference among shading treatments at 0.05level;The same as below.
圖3 遮蔭條件下桃樹葉片ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC和DIo/RC的變化Fig.3 The ABS/RC,TRo/RC,ETo/RC and DIo/RC of peach leaves under shading condition
其次,隨著遮陰程度的增加,TRo/RC 在Ⅰ、Ⅱ期呈現(xiàn)先降低后升高的變化趨勢,而在Ⅲ期表現(xiàn)出逐漸降低的趨勢(圖3,B)。其中,TRo/RC 在Ⅰ期的T3處理下最低,并顯著低于其他處理,比同期CK 顯著降低了11.0%;TRo/RC 在Ⅱ期的T2處理下最低,與同期T3處理無顯著差異,而顯著低于其他處理,比同期的CK 顯著降低了10.5%;TRo/RC在Ⅲ期的T4處理下最低,與同期T3處理無顯著差異,而顯著低于其他處理,比同期的CK 顯著降低了11.2%。
再次,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期的ETo/RC 均隨著遮陰程度的增加呈現(xiàn)逐漸降低的變化趨勢(圖3,C)。其中,Ⅰ期的ETo/RC 在T1、T2、T3、T4處理下分別比同期CK 顯著降低了5.5%、7.2%、11.9%、17.7%;Ⅱ、Ⅲ期的ETo/RC 在T1處理下與CK 差異不顯著,但T2、T3、T4處理下均顯著低于CK。同時,各時期CK、T1、T2處理的DIo/RC 依次下降,且差異達顯著性水平,其中T1、T2各時期的DIo/RC 平均值分別比CK 降低了13.8%、25.5%;各期T3、T4處理間的DIo/RC 均無顯著差異,但它們在Ⅰ期顯著低于T2處理,而在Ⅱ、Ⅲ期均與T2無顯著差異(圖3,D)。
通過以上分析可以看出,桃葉PSⅡ單位反應中心吸收的光能(ABS/RC)和捕獲的光能(TRo/RC)在不同光強條件下均會隨著遮陰程度的增加而逐漸降低,但當降低到20%相對光強時該能力會有所提升,以適應其遮陰環(huán)境;同時,PSⅡ單位反應中心用于電子傳遞的能量(ETo/RC)隨著逐漸降低的光強而明顯降低;PSⅡ單位反應中心用于熱耗散的能量在遮陰條件下減少,而自然光或強光下相對增加。
葉綠素熒光參數(shù)Fv/Fm是指開放的PSⅡ反映中心捕獲激發(fā)能的效率,即最大光化學效率。由圖4可知,Ⅰ期各處理的Fv/Fm日變化均呈現(xiàn)先降低后升高的變化趨勢,即Fv/Fm在6:00開始下降,在12:00降到一天中的最低值,而在18:00時又恢復到與6:00 大致相同的水平。各處理的Fv/Fm在10:00~14:00時下降幅度較大,且降幅的大小與光照的強弱呈現(xiàn)相同的變化規(guī)律,即“光強越高,降幅越大”,如CK、T1、T2、T3、T4的Fv/Fm在12:00分別比6:00 下 降 了12.5%、9.7%、7.9%、4.6%、4.2%。Ⅱ、Ⅲ期各處理的Fv/Fm日變化有與Ⅰ期相似的變化規(guī)律。所不同的是,Ⅱ、Ⅲ期各處理Fv/Fm在10:00和14:00的降幅比Ⅰ期各處理相應時間點的降幅要大;Ⅲ期各處理Fv/Fm在8:00 和16:00也有較大的降幅,同時也表現(xiàn)為“光強越高,降幅越大”。
圖4 各時期遮蔭條件下桃樹葉片最大光化學效率(Fv/Fm)日變化A.Ⅰ期,展葉后30~60d;B.Ⅱ期,展葉后60~90d;C.Ⅲ期,展葉后90~120dFig.4 The diurnal variations of the maximum photochemical efficiency(Fv/Fm)peach leaves under shading condition at different periods A.First period,30-60days after leaves unfolding;B.Second period,60-90days after leaves unfolding;C.Third period,90-120days after leaves unfolding
以上結果說明,Ⅲ期各處理Fv/Fm在一天中出現(xiàn)大幅下降的時間提前,恢復的時間推遲,即下降持續(xù)時間較長。同時,各時期各處理Fv/Fm的日變化曲線之所以呈“單谷”曲線型,是因為葉片吸收的光能在光強較弱的早晨和傍晚可最大限度地用于光化學反應,但隨著光強的增加葉片把光能較多地分配到熱耗散中。同理,中午時遮陰處理的Fv/Fm大于自然光或強光下的Fv/Fm,也是因為遮陰下的葉片盡可能的吸收光能進行光化學反應,而強光下的葉片雖然吸收的光能較多,但分配到光化學反應的能量比例減少。
典型的快速葉綠素熒光動力學曲線在熒光上升階段有O、J、I、P 相,對應光化學反應階段,并對植物生長的光強要求特別敏感[12]。光強對葉綠素熒光曲線的改變主要反映的是對QA的影響[13-14]。曲線J點處的熒光強度升高,通常反映了PSⅡ反應中心受體側QA-瞬時大量積累[15]。J-I階段和I-P 階段熒光強度的變化則與QB和PQ 庫的還原情況有關[16]。本研究中Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期20%的相對遮陰使桃葉熒光動力學曲線J點熒光強度升高,說明電子在PSⅡ受體側的傳遞受到阻礙;而各時期遮陰下的J-I階段和I-P階段的熒光強度隨著光強減弱而依次升高,又說明遮陰使得桃葉PSⅡ的QB 和PQ 被還原的能力受到限制。
φPo、ψo、φEo和φDo是4 個與能量分配比率相關的熒光參數(shù)。本實驗中遮陰下的φPo、ψo、φEo有所升高,而φDo有所下降,這說明桃葉在不同光強下調(diào)整了能量在PSⅡ反應中心的分配比率,即提高了用于電子傳遞的量子比率,降低了用于熱耗散的的量子比率。這可能也是桃樹葉片在遮陰下的一種適應性調(diào)節(jié)機制。ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC 和DIo/RC 反映了在QA可還原的狀態(tài)時,單位PSⅡ反應中心的活性。ABS/RC 可以作為衡量天線色素的大小的指標,當該值和TRo/RC 均減小時,說明天線色素尺寸減?。?7]。本試驗遮陰下ABS/RC 和TRo/RC 均下降說明桃葉片天線色素吸收和捕獲的光能減少,從而導致用于電子傳遞的能量較少。同時,與自然光相比,遮陰下的葉片也減少了熱耗散的能量損失。
Fv/Fm下降是植物受到光抑制的重要指標[18]。本試驗的研究表明,Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期桃葉各處理的Fv/Fm在中午會出現(xiàn)不同程度的下降,且光照越強下降幅度越大。有研究發(fā)現(xiàn),植物在強光下發(fā)生的光抑制可能與D1 蛋白的凈損失和光合器官的損傷有關,也可能與PSⅡ對吸收的光能的分配有關[19]。植物在受到光脅迫時,會加劇D1蛋白的降解,導致電子傳遞體,特別是QB容易從蛋白復合體上脫落下來,造成受體庫的減少[20]。同時,一些PSⅡ反應中心失去活性可以耗散掉多余的能量,從而使其他PSⅡ反應中心免受到光損害[21-22]。這些損害光合機構功能的行為都會降低光能轉化效率,最終限制光合作用的正常進行。
綜上可知,20%的相對遮陰會在一定程度上降低桃樹葉片電子在PSⅡ受體側的傳遞能力,而不同程度地遮陰會限制PSⅡ的QB和PQ 被還原的能力;遮陰下生長的桃葉由于天線色素含量的減少,導致所吸收的、捕獲的光能和電子傳遞的能量都隨之減少;但是植物為適應遮陰環(huán)境,通過提高電子傳遞的量子比率和降低熱耗散的量子比率的方式調(diào)整能量分配,以充分實現(xiàn)對光能的利用。桃樹葉片各時期中午時段的強光會引起光抑制現(xiàn)象的發(fā)生,從而影響了其光合作用的順利進行。
[1] STRASSER R J,STRASSER B J.Measuring Fast Fluorescence Transients to Address Environmental Questions:the JIP Test.[C]//:MATHIS P.Photosynthesis:from Light to Biosphere.Dordrecht:KAP Press,1995,5:977-980.
[2] STRASSER R J.The grouping Model of Plant Photosynthesis:heterogeneity of Photosynthetic Units in Thylakoids[M]//AKOYUNOGLOU G.PhotosynthesisⅡ.Structure and Molecular Organization of the Photosynthetic Apparatus.Philadelphia:BISS Press,1981:727-737.
[3] LIU CH Y(劉春英),CHEN D Y(陳大印),GAI SH P(蓋樹鵬),et al.Effects of high-and low temperature stress on the leaf PSⅡfunctions and physiological charac-teristics of tree peony[J].Chinese Journal of Applied Ecology(應用生態(tài)學報),2012,23(1):133-139(in Chinese).
[4] SU X Q(蘇曉瓊),WANG M Y(王美月),SHU SH(束 勝),et al.Effects of exogenous Spd on the fast chlorophyll fluorescence induction dynamics in tomato seedlings under high temperature stress[J].Acta Horticulturae Sinica(園藝學報),2013,40(12):2 409-2 418(in Chinese).
[5] ZHANG M(張 謐),WANG H J(王慧娟),YU CH Q(于長青).The examination of high temperature stress of Ammopiptanthus mon-golicusby chlorophyll fluorescence induction parametersJ.Ecology and Environmental Sciences生態(tài)環(huán)境學報20091862 272-2 277(in Chinese).
[6] SUN Y P(孫永平),ZHANG ZH P(張治平),XU CH X(徐呈祥),et al.Effect of ALA on fast chlorophyll fluorescence induction dynamics of watermelon leaves under chilling stress[J].Acta Horticulturae Sinica(園藝學報),2009,36(5):671-678(in Chinese).
[7] OUKARROUMA A,MADIDI S,SCHANSKER G,et al.Probing the responses of barley cultivars(Hordeum vulgare L.)by chlorophyll a fluorescence OLKJIP under drought stress and rewatering[J].Environmental and Experimental Botany,2007,60:438-446.
[8] YAO G(姚 廣),WANG X(王 鑫),GAO H Y(高輝遠).Effects of salt-stress on photosystem activity in leaves of Festuca arundinacea[J].Chinese Journal of Grassland(中國草地學報),2009,31(2):46-52(in Chinese).
[9] LI X X(李旭新),LIU B X(劉炳響),GUO ZH T(郭智濤),et al.Effects of NaCl stress on photosynthesis characteristics and fast chlorophyll fluorescence in-duction dynamics of Pistacia chinensis leaves[J].Chinese Journal of Applied Ecology(應用生 態(tài) 學 報).2013,24(9):2 479-2 484(in Chinese).
[10] LIN ZH H(林鄭和),ZHONG Q SH(鐘秋生),CHEN CH S(陳常頌),et al.Effect of potassium deficiency on chlorophyll fluorescence in leaves of tea seedlings[J].Plant Nutrition and Fertilizer Science(植物營養(yǎng)與肥料學報).2012,18(4):974-980(in Chinese).
[11] XIA J R,TIAN Q R.Early stage toxicity of excess copper to photosystem Ⅱof Chlorella pyrenoidosa-OJIP chlorophyll a fluorescence analysis[J].Journal of Environmental Sciences,2009,21:1 569-1 574.
[12] STRASSER R J,STRYVASTAVA A,GOVINDGEE.Polyphasic chlorophyll a fluorescence transient in plants and cyanobacteria[J].Photochemistry and Photobiology,1995,61:32-42.
[13] SAMSON G,PRASIL O,YAAKOUBD B.Photochemical and thermal phases of chlorophyll a fluorescence[J].Photosynthetica,1999,37:163-182.
[14] LAZAR D.The polyphonic chlorophylls a fluorescence rise measured under high intensity of exciting light[J].Functional Plant Biology,2006,33:9-30.
[15] STRASSER R J,SRIVASTAVA A,TSIMILLI-MICHAEL M.The Fluorescence Transient as a Tool to Characterize and Screen Photosynthetic Samples[M]//YUNUS M,PATHRE U,MOHANTY P.Probing Photosynthesis:Mechanism,Regulation and Adaptation.London:Taylor and Francis Press,2000:445-483.
[16] LI P M(李鵬民),GAO H Y(高輝遠),STRASSER R J.Application of the fast chlorophyll fluorescence induction dynamics analysis in photosynthesis study[J].Journal of Plant Physiology and Molecular Biology(植物生理與分子生物學學報),2005,31(6):559-566(in Chinese).
[17] BRESTIC M,ZIVCAK M,KALAJI H M,et al.Photosystem Ⅱthermostability in situ:environmentally induced acclimation and genotype-specific reactions in Triticum aestivum L.[J].Plant Physiology and Biochemistry,2012,57:93-105.
[18] WANG B L(汪炳良),XU M(徐 敏),SHI Q H(史慶華),et al.Effect of temperature stress on antioxidant systems chlorophyll and chlorophyll fluorescence parameters in early cauliflower leaves[J].Sceientia Agriultura Sinicea(中國農(nóng)業(yè)科學),2004,37(8):1 245-1 250(in Chinese).
[19] SONG T(宋 婷),ZHANG M(張 謐),GAO J X(高吉喜),et al.Fast chlorophyll fluorescence kinetics and its application in plant physiology research[J].Journal of Biology(生物學雜志),2011,28(6):81-86(in Chinese)
[20] JIANG C D,JIANG G M,WANG X Z,et al.Increased photosynthetic activities and thermostability of photosystem Ⅱwith leaf development of elm seedlings(Ulmus pumila)probed by the fast fluorescence rise OJIP[J].Environmental and Experimental Botany,2006,58:261-268.
[21] CAI S Q,XU D Q.Light intensity-dependent reversible down regulation and irreversible damage of PSⅡin soybean leaves[J].Plant Science,2002,163:847-853.
[22] STRASSER R J,STRIVASTAVA A,GOVINDGEE.Polyphasic chlorophyll a fluorescence transients[J].Photosynthesis Research,1997,52:147-155.