石登紅,蔣華梅,劉 燕,王向前
(1.貴陽學(xué)院 生物與環(huán)境工程學(xué)院,貴州 貴陽550005;2.貴陽學(xué)院 化學(xué)與材料工程學(xué)院,貴州 貴陽550005;3.貴陽學(xué)院圖書館,貴州 貴陽550005)
山莓(RubuscorchorifoliusL.F.)又名懸鉤子、三月泡、山拋?zhàn)?、四月泡、刺葫蘆、饅頭菠、高腳菠、泡兒刺,系薔薇科(Rosaceae)懸鉤子屬(Rubus)中的一種落葉灌木[1],野生資源除我國東北、甘肅、西藏、新疆、青海外,各省均有分布。山莓的根、莖、葉和果實(shí)均可入藥,有活血、解毒、止血等功效,是一種民間常用的苗族藥[2]。有關(guān)山莓果實(shí)的資源利用[3-5]、營養(yǎng)成分分析 等[6]研究已有文獻(xiàn)資料報(bào) 道。山莓栽培利用已成為傳統(tǒng)的重要水果[7-8]。但是,目前研究山莓葉的化學(xué)成分和藥用價(jià)值方面的文獻(xiàn)資料甚少[9-16],國內(nèi)外對(duì)山莓的研究仍集中在資源利用、葉的藥用及果實(shí)食品加工等方面。
懸鉤子屬植物中黃酮類化合物的提取研究已有相關(guān)研究報(bào)道[17-18],但是對(duì)山莓莖皮黃酮類物質(zhì)的提取和抗氧化性方面的研究尚未見報(bào)道。山莓資源在各地分布廣泛,為深入研究山莓莖皮的藥理活性物質(zhì),提高山莓的藥用價(jià)值,筆者以貴州野生山莓為試驗(yàn)材料,利用有機(jī)溶劑回流提取法,正交試驗(yàn)設(shè)計(jì),對(duì)山莓莖皮中的總黃酮進(jìn)行提取,并用分光光度法測(cè)定總黃酮含量,首次對(duì)山莓莖皮黃酮清除ABTS和DPPH自由基能力進(jìn)行研究,以期為貴州野生山莓莖皮提取物進(jìn)一步分離純化、抗氧化活性試驗(yàn)、單體分析等奠定基礎(chǔ),為挖掘山莓莖皮的藥理作用、充分開發(fā)利用山莓資源提供科學(xué)依據(jù)。
野生山莓莖皮采自貴州貴陽,采摘時(shí)間為3月,以當(dāng)年生嫩枝為主,分別采集山莓植株的上、中、下部位和四周,共采集20g,100℃恒溫干燥后研碎備用。
試劑為硝酸鋁Al(NO3)3、亞硝酸鈉(NaNO2)、無水乙醇(CH3CH2OH)、氫氧化鈉(NaOH),均為分析純,蘆丁為標(biāo)準(zhǔn)品≥97%(120℃干燥至恒重),ABTS和DPPH 均采自由Sigama公司提供。
儀器:UV-2550型紫外可見分光光度計(jì)(日本島津)、電子天平(美國奧豪斯)。
精密稱取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品2.5mg于10mL容量瓶中,用蒸餾水稀釋至刻度,濃度為0.25mg/mL。
采用Al(NO3)3法,參考文獻(xiàn)資料[16,19]精密移取上述蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液1 mL 于10 mL 比色管中,稀釋至2.40 mL,加5%亞硝酸鈉0.40 mL,搖勻,6min后加入10% Al(NO3)3水溶液0.40mL,搖勻放置6min,再加4% NaOH 4.00mL,用蒸餾水稀釋至刻度,搖勻,靜置15min。以不加NaNO2的溶液為空白,采用紫外-可見分光光度法,在波長(zhǎng)400~800nm掃描[16-17],以最大吸光度的波長(zhǎng)為測(cè)定波長(zhǎng)。
精密移取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液0.00mL、0.01mL、0.02mL、0.03mL、0.04mL、0.05mL和0.06mL分別置于10 mL 的比色管中,按照1.3 的步驟稀釋,搖勻,最后靜置15min,用紫外-可見分光光度計(jì)在506nm 波長(zhǎng)下測(cè)定上述溶液的吸光度,以吸光度A 為縱坐標(biāo),稀釋后各蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度C 為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算蘆丁標(biāo)準(zhǔn)溶液的回歸方程及相關(guān)系數(shù):C=0.0911×A-0.0025,R2=0.997 3。
準(zhǔn)確移取山莓莖皮提取液各0.5mL,按1.3的方法顯色,并測(cè)定吸光度,將吸光度值代入蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線方程求出待測(cè)樣品的濃度,根據(jù)公式:樣品總黃酮質(zhì)量(mg)=濃度×10×100/0.5,總黃酮含量(mg/g)=樣品總黃酮質(zhì)量/樣品質(zhì)量,計(jì)算各樣品總黃酮質(zhì)量和含量。
1.6.1 乙醇濃度 稱取1g的山莓莖皮粉末4份分裝入250mL燒瓶中,分別加入60%、70%、80%、90%的乙醇溶液各30mL,70℃回流提取2h,抽濾,收集濾液,同樣條件下重復(fù)提取1次,合并濾液,用相應(yīng)濃度的乙醇定容到100mL的容量瓶中,按1.5的方法進(jìn)行總黃酮的測(cè)定(下同)。
1.6.2 料液比 稱取1g山莓莖皮粉末4份分裝于250mL 燒瓶中,分別加入料液比(g/mL)為1∶20、1∶30、1∶40、1∶50的70%乙醇溶液,80℃回流提取2h,抽濾,收集濾液,同樣條件下重復(fù)提取1次,合并濾液,定容到100mL的容量瓶中。
1.6.3 回流溫度 稱取1g山莓莖皮粉末4份分裝于250mL燒瓶中,加入70%乙醇溶液各30mL,分別在50℃、60℃、70℃、80℃回流提取2h,抽濾,收集濾液,同樣條件下重復(fù)提取1次,合并濾液,定容到100mL的容量瓶中。
1.6.4 提取時(shí)間 稱取1g山莓莖皮粉末4份分裝于250mL燒瓶中,加入70%乙醇溶液各30mL,于80℃分別回流提取2h、3h、4h、5h,抽濾,收集濾液,同樣條件下重復(fù)提取1次,合并濾液,定容到100mL的容量瓶中。
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,以乙醇濃度(A)、料液比(B)、回流溫度(C)和提取時(shí)間(D)為考察因素,以山莓莖皮總黃酮含量為指標(biāo),采用L9(34)進(jìn)行正交試驗(yàn),其因素水平見表1。
表1 山莓莖皮總黃酮提取的L9(34)正交試驗(yàn)因素及水平Table 1 Factors and levels for L9(34)orthogonal test fromR.corchorifolius stem barks
1.8.1 清除ABTS自由基 精密稱取0.096 0g ABTS,蒸餾水溶解、定容至25 mL 容量瓶,濃度7mmol/L,記為試劑1。稱取0.378 4g K2S2O8(過硫酸鉀),蒸餾水溶解、定容至10 mL 容量瓶,濃度140mmol/L,記為試劑2。精密吸取5 mL 試劑1于10mL容量瓶,加入88μL 試劑2,搖勻,避光放置12~16h,即為ABTS儲(chǔ)備液。移取一定體積的ABTS 儲(chǔ) 備 液,用75% 乙 醇 溶 液 稀 釋100 倍,732nm測(cè)吸光值在0.7±0.0。按上述1∶100的比例配制ABTS溶液用于清除ABTS自由基試驗(yàn)。
樣品溶液:吸取正交試驗(yàn)中總黃酮含量較高的溶液0.5mL,用75%乙醇稀釋至3 mL,即為樣品溶液。
分別取樣品溶液5μL、10μL、15μL、20μL、25μL、30μL、35μL、40μL、45μL、50μL、55μL、60μL和65μL,用75%乙醇將樣液稀釋至0.5mL,每管中加入0.3mmol/L的ABTS溶液2.5mL,振搖10s以上,避光靜置10min,用75%乙醇作空白對(duì)照,于742nm 下測(cè)吸光度值,計(jì)算清除率。BHT樣品溶液 濃度1.5 mmol/L,分別取BHT 溶液5μL、10μL、15μL、20μL、25μL、30μL、35μL、40μL、45μL和50μL按上述步驟進(jìn)行清除ABTS試驗(yàn),計(jì)算清除率。
式中,A0為空白對(duì)照吸光度,A樣為樣品吸光度。根據(jù)濃度與清除率求出一元線性方程、相關(guān)系數(shù),計(jì)算半數(shù)清除率IC50值。
1.8.2 清除DPPH 自由基 分別吸取正交試驗(yàn)總黃酮含量較高的樣品溶液0.02 mL、0.04 mL、0.06mL、0.08 mL、0.10 mL、0.12 mL、0.14 mL、0.16mL和0.18mL于10mL比色管中,用75%乙醇溶液定容至4 mL,振蕩搖勻,分別加入0.3mmol/L的DPPH 溶液4 mL,振蕩搖勻,空白對(duì)照為75% 乙醇,常溫避光反應(yīng)60 min 后于523nm測(cè)吸光度值,采用以下公式計(jì)算清除率[11]。BHT 樣品溶液濃度7.5 mmol/L,分別取BHT 溶液0.02 mL、0.04 mL、0.06 mL、0.08 mL、0.10mL、0.12mL、0.14mL、0.16mL、0.18mL和0.20mL按上述步驟進(jìn)行清除DPPH 試驗(yàn),計(jì)算清除率。
由表2可知,不同乙醇濃度、料液比、回流溫度、提取時(shí)間對(duì)山莓莖皮中總黃酮提取率均有影響。
1)乙醇濃度。隨乙醇濃度升高總黃酮提取率逐漸降低,當(dāng)乙醇濃度超過90%以后提取率下降最明顯。因此,選擇60%、70%、80%的乙醇濃度作為正交試驗(yàn)的3個(gè)水平。
2)料液比。在同等條件下,料液比與總黃酮提取率成正比,當(dāng)料液比在1∶20~1∶40時(shí),提取率增加顯著,超過1∶50后提取率增加緩慢??紤]到實(shí)際生產(chǎn)的效益,選擇料液比1∶30、1∶40、1∶50作為正交試驗(yàn)的3個(gè)水平。
3)提取溫度。提取溫度在50~70℃,總黃酮提取率隨溫度的升高而顯著增大,但溫度為80℃時(shí)提取率降低。因此,選擇提取溫度60℃、70℃、80℃作為正交試驗(yàn)的3個(gè)水平。
4)提取時(shí)間??傸S酮提取率隨提取時(shí)間的增加而增大,可見提取時(shí)間越長(zhǎng),總黃酮提取越充分,但當(dāng)時(shí)間超過3h時(shí),提取率明顯下降。同樣,考慮實(shí)際生產(chǎn)的效益,選擇提取時(shí)間2h、3h、4h作為正交試驗(yàn)的3個(gè)水平。
對(duì)山莓莖皮總黃酮提取的正交試驗(yàn)結(jié)果(表3)進(jìn)行極差分析(表4)可知,極差RA>RC>RB>RD,4個(gè)因素對(duì)山莓莖皮中總黃酮提取率的影響大小依次為乙醇濃度(A)>回流溫度(C)>料液比(B)>提取時(shí)間(D)。4個(gè)因素中,乙醇濃度和回流溫度的影響作用最顯著,其次是料液比,影響最小的是提取時(shí)間。根據(jù)4 個(gè)因素的k1、k2和k3值大小可知,A因素A1>A2>A3,B因素B1>B2>B3,C因素C3>C1>C2,D 因素D3>D2>D1。因此,乙醇回流提取山莓莖皮總黃酮的最佳工藝條件為A1B1C3D3,即乙醇濃度60%、料液比1∶30、回流溫度80℃、提取時(shí)間4h,經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn)得總黃酮提取量為28.811 mg/g。
表2 不同乙醇濃度、料液比、提取溫度和提取時(shí)間的山莓莖皮總黃酮含量Table 2 Total flavonoids extracted fromR.corchorifolius stem barks with various ethanol concentration,solid-liquid ratio,extraction temperature and time
表3 山莓莖皮L9(34)正交試驗(yàn)各處理的總黃酮含量Table 3 Total flavonoids contents of different L9(34)orthogonal test treatments of R.corchorifolius stem barks
表4 山莓莖皮正交試驗(yàn)各因素水平總黃酮含量的均值與極差Table 4 The average and range of total flavonoids in the stem bark of R.corchorifolius at different conditions
圖示 山莓莖皮黃酮和BHT不同濃度對(duì)ABTS和DPPH 自由基的清除率Fig.ABTS and DPPH free radical-savenging rates of flavonoids from the bark of R.corchorifolius and BHT
BHT 是人工合成的抗氧化劑,具有提高產(chǎn)品穩(wěn)定性和保持品質(zhì)等效果,但是有對(duì)人體造成潛在傷害的弊端[20]。由圖示可見,山莓莖皮黃酮的提取液對(duì)ABTS和DPPH 自由基具有明顯的清除效果,清除能力比BHT 高,且隨著質(zhì)量濃度的增加,清除率也隨著增大,但增加到一定的質(zhì)量濃度時(shí),清除率增大幅度趨于平緩。在黃酮、BHT 抗氧化劑的質(zhì)量濃度較低時(shí),2種溶液對(duì)ABTS和DPPH 自由基的清除率(y)與質(zhì)量濃度(x)之間呈近似線性關(guān)系(表5)??梢?,山莓莖皮黃酮的提取液具較強(qiáng)的抗氧化性,山莓黃酮提取液對(duì)ABTS和DPPH 自由基清除率達(dá)50%時(shí),IC50值均低于合成抗氧化劑BHT 的IC50值,因此有望成為一種天然抗氧化劑。
表5 清除率與抗氧化劑加入量的線性關(guān)系及抗氧化劑IC50值Table 5 Relationship between scavenging rate and antioxidant concentration and IC50of antioxidants
1)正交試驗(yàn)結(jié)果表明,乙醇回流提取山莓莖皮總黃酮最佳提取工藝條件為:乙醇濃度60%、料液比1∶30、回流溫度80℃、提取時(shí)間4h,在此提取條件下,山莓莖皮中總黃酮的含量可達(dá)28.811mg/g。
2)貴州春季野生山莓莖皮中總黃酮的含量高達(dá)28.811mg/g,高于文獻(xiàn)報(bào)道的山莓葉春季總黃酮含量1.463 7mg/g[16]。說明,黔產(chǎn)野生山莓莖皮蘊(yùn)含豐富的總黃酮資源。
3)經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn),山莓莖皮黃酮提取液對(duì)ABTS和DPPH 自由基清除率達(dá)50%時(shí),IC50值均低于合成抗氧化劑BHT 的IC50值,因此具較好的抗氧化性,有望成為一種天然抗氧化劑,為進(jìn)一步開發(fā)與利用野生山莓資源提供科學(xué)依據(jù)。
[1]李永康,葉能干.貴州植物志:第七卷[M].成都:四川民族出版社,1988:155.
[2]王世清,潘文剛,張志勇.苗族藥三月泡的品種鑒定和成分研究[J].中國民族民間醫(yī)藥雜志,2002(1):42-45.
[3]石登紅,楊秀群,蔣華梅,等.貴州喀斯特山區(qū)山莓的開發(fā)與利用[J].貴陽學(xué)院學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2012,7(4):1-3.
[4]陳炳華,劉劍秋,黃曉明.福建省山莓營養(yǎng)成分分析及利用價(jià)值[J].福建師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,1999,15(3):79-83.
[5]陳建華,陳明皋,李忠海,等.湘西樹莓資源研究[[J].湖南林業(yè)科技,1994,21(1):22-25.
[6]蔣華梅,石登紅,王向前,等.三月泡果實(shí)營養(yǎng)成分及安全性評(píng)價(jià)[J].食品工業(yè),2013,34(12):232-236.
[7]張 敏.湘西山莓葉有效成分提取分離結(jié)構(gòu)鑒定及活性研究[D].長(zhǎng)沙:湖南大學(xué),2006.
[8]朱深海,曹 庸,鄧治邦.山莓抗腹瀉機(jī)制初步研究[J].中獸醫(yī)醫(yī)藥雜志,2005(2):7-11.
[9]鄔美玉.山莓化學(xué)成分研究[J].藥學(xué)實(shí)踐雜志,2011,29(4):287-290.
[10]陳炳華.余 望.劉劍秋.山莓莖葉香豆素成分的初步研究[J].福建師范大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2001,17(3):81-83.
[11]朱深海,曹 庸,鄧治邦.山莓抗腹瀉機(jī)制初步研究[J].中獸醫(yī)醫(yī)藥雜,2005(2):7-10.
[12]陳雪香.山莓葉抑菌活性成分分離、鑒定及抑菌效果研究[D].長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.
[13]董振生,李 丹,程天印,等.山莓葉的藥用價(jià)值研究現(xiàn)狀及前景分析[J].現(xiàn)代中藥研究與實(shí)踐,2008,22(1):60-62.
[14]張 敏.山莓葉有效成分分離、解析及其生物活性研究[D].長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2012.
[15]周雙德,陳雪香,曹庸于,等.山莓葉揮發(fā)油成分分析及抑菌活性研究[J].中藥材,2009,32(10):1547-1550
[16]李 丹.山莓葉總黃酮的提取、純化及降血糖作用研究[D].長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.
[17]蔣華梅,王向前,石登紅,等.回流提取插田泡葉總黃酮的條件優(yōu)化[J].貴州農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(5):144-146.
[18]包玉敏,康大偉,張 力,等.蒙藥材懸鉤子木中黃酮類化合物含量測(cè)定及體外抗氧化性研究[J].內(nèi)蒙古民族大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2011,26(1):14-16.
[19]張吉祥,歐來良.正交試驗(yàn)法優(yōu)化超聲提取棗核總黃酮[J].食品科學(xué),2012,33(4):18-21.
[20]孟慶煥,王 化,王洪政,等.牡丹種皮黃酮提取及對(duì)ABTS自由基清除作用[J].植物研究,2013,33(4):504-507.