• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    藏茜草不同溶劑提取物的抗氧化活性研究

    2015-06-05 09:51:41景臨林馬慧萍范小飛楊貝貝彭曉霞賈正平
    食品工業(yè)科技 2015年1期
    關(guān)鍵詞:茜草螯合極性

    景臨林,馬慧萍,范小飛,2,楊貝貝,彭曉霞,賈正平,*

    (1.蘭州軍區(qū)蘭州總醫(yī)院藥劑科,甘肅蘭州 730050;2.蘭州大學(xué)藥學(xué)院,甘肅蘭州 730000;3.甘肅中醫(yī)學(xué)院,甘肅蘭州 730000)

    藏茜草不同溶劑提取物的抗氧化活性研究

    景臨林1,馬慧萍1,范小飛1,2,楊貝貝3,彭曉霞3,賈正平1,*

    (1.蘭州軍區(qū)蘭州總醫(yī)院藥劑科,甘肅蘭州 730050;2.蘭州大學(xué)藥學(xué)院,甘肅蘭州 730000;3.甘肅中醫(yī)學(xué)院,甘肅蘭州 730000)

    采用DPPH自由基清除法、ABTS自由基清除法、羥自由基清除法、超氧陰離子清除法、還原力測(cè)定法和螯合力測(cè)定法六種抗氧化模型對(duì)藏茜草95%乙醇提取物以及石油醚相,乙酸乙酯相,正丁醇相和水相等4個(gè)不同極性部位的抗氧化活性進(jìn)行評(píng)價(jià),同時(shí)分析抗氧化活性與總酚和總黃酮含量的關(guān)系。研究結(jié)果表明,除水提部位外,藏茜草其它4個(gè)極性部位提取物均表現(xiàn)出一定的抗氧化活性,其抗氧化活性與多酚和總黃酮含量呈顯著相關(guān)。其中,乙酸乙酯部位總黃酮和總多酚含量最高,抗氧化活性也最強(qiáng),其總黃酮和總多酚含量分別為(232.03±1.74)mg蘆丁當(dāng)量/g提取物和(173.53±1.75)mg 沒(méi)食子酸當(dāng)量/g 提取物,其清除DPPH自由基、超氧陰離子、羥自由基和ABTS自由基的EC50分別為0.06±0.01、0.17±0.01、(0.24±0.02)mg/mL和(1.75±0.23)μg/mL,對(duì)金屬離子螯合力的EC50為(0.11±0.01)mg/mL。藏茜草的乙酸乙酯極性部位具有顯著的抗氧化活性,是天然抗氧化活性化合物的良好來(lái)源。

    藏茜草,抗氧化活性,總黃酮,總多酚

    活性氧(ROS)是細(xì)胞有氧代謝過(guò)程中的產(chǎn)物,其在低濃度時(shí)參與機(jī)體的免疫過(guò)程,抵御外界刺激對(duì)機(jī)體的損害。但是過(guò)量ROS會(huì)誘導(dǎo)脂質(zhì)過(guò)氧化,破壞核酸、蛋白質(zhì)、DNA等生物大分子,導(dǎo)致細(xì)胞衰老或死亡[1]。研究表明:心腦血管疾病、神經(jīng)退行性疾病、癌癥和衰老的發(fā)生發(fā)展都有ROS代謝異常有關(guān)[2]。合理補(bǔ)充抗氧化劑能夠保護(hù)機(jī)體免受ROS誘導(dǎo)的氧化應(yīng)激損傷,延緩人體衰老,增強(qiáng)人體免疫能力,對(duì)多種疾病具有預(yù)防作用[3]。人工合成抗氧化劑,如丁基羥基茴香醚(BHA)、二丁基羥基甲苯(BHT)等,雖有一定抗氧化作用,但是可能會(huì)引起肝臟損傷,甚至誘導(dǎo)癌癥的發(fā)生[4]。因此,從食用及藥用植物中尋找廣譜、低毒、安全、有效的天然抗氧化劑已成為抗氧化劑發(fā)展的必然趨勢(shì)。

    藏茜草是一種傳統(tǒng)藏藥,藏藥名:佐,以茜草科植物西藏茜草(RubiatibeticaHook. F)的干燥根及根莖入藥,具有清熱涼血等功效,主治血病、擴(kuò)散傷熱、肺腎熱邪和大小腸熱[5]。藏茜草生長(zhǎng)于海拔3600m處河灘礫石上,主要產(chǎn)自西藏阿里札達(dá),通過(guò)千百萬(wàn)年的進(jìn)化選擇,適應(yīng)了高原缺氧、寒冷干燥的氣候環(huán)境,體內(nèi)含有的特殊產(chǎn)物可能具有很好的抗氧化活性,但是關(guān)于藏茜草抗氧化研究未見(jiàn)報(bào)道。本文采用DPPH、ABTS、羥自由基、超氧陰離子、還原力和螯合力六種體外抗氧化模型對(duì)藏茜草95%乙醇提取物以及石油醚相,乙酸乙酯相,正丁醇相和水相等4個(gè)極性部位的抗氧化活性進(jìn)行研究,并測(cè)定其總多酚和總黃酮含量,進(jìn)行相關(guān)性分析,為藏茜草資源開(kāi)發(fā)利用提供一定的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    藏茜草 購(gòu)自青海西寧三江寶商貿(mào)有限公司,并經(jīng)蘭州大學(xué)藥學(xué)院生藥研究所楊永健教授鑒定為西藏茜草(RubiatibeticaHook. F)。

    1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、2,2′-聯(lián)氮基雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)、菲啰嗪(Ferrozine) sigma公司;還原型輔酶I(NADH)、吩嗪硫酸甲酯(PMS)、抗壞血酸(VC)、鉬酸銨、硫代巴比妥酸(TBA) 阿拉丁試劑公司;蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品、水楊酸標(biāo)準(zhǔn)品 中國(guó)食品藥品檢定研究院;鎢酸鈉、鉬酸鈉、亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、過(guò)硫酸鉀磷酸鈉、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、三氯乙酸(TCA)、硫酸、鹽酸等均為市售分析純?cè)噭?/p>

    DJ-04B小型中藥粉碎機(jī) 上海鼎廣機(jī)械設(shè)備有限公司;Spectramax i3多功能酶標(biāo)儀 Molecular Devices公司;RE52CS型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;AE204型電子天平 梅特勒-托利多儀器有限公司;SK3300L超聲清洗器 上海精密儀器儀表有限公司;UV2800SPC紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 提取方法 藏茜草的提取按照文獻(xiàn)方法[6]進(jìn)行,具體步驟為:干藥材用粉碎機(jī)粉碎,準(zhǔn)確稱量100g藥材粉末,用500mL 95%乙醇浸泡12h,超聲提取30min,再回流提取2h,重復(fù)提取兩次,趁熱過(guò)濾,合并濾液,減壓濃縮得到淺棕色浸膏,為藏茜草95%醇提部位(15.61g)。提取物加5倍量的蒸餾水超聲30min后得到懸浮液,將其移置500mL分液漏斗中,依次用等體積的石油醚、乙酸乙酯、正丁醇分別萃取3次,合并各自萃取液并保留水相,減壓除去溶劑后,真空干燥至恒重,得到不同溶劑萃取物,分別為石油醚部位(0.77g),乙酸乙酯部位(4.18g),正丁醇部位(3.50g)和水提部位(3.16g)。

    1.2.2 抗氧化活性的測(cè)定

    1.2.2.1 DPPH自由基清除實(shí)驗(yàn) 不同質(zhì)量濃度(0.1~0.4mg/mL)的樣品和VC溶液125μL,分別加入125μL 0.1mmol/L DPPH 95%乙醇溶液中,暗處室溫反應(yīng)30min,以95%乙醇溶劑做空白對(duì)照,測(cè)量其在波長(zhǎng)517nm 處的吸光度(Ai)。測(cè)定125μL DPPH 95%乙醇溶液與125μL 95%乙醇混合后在波長(zhǎng)517nm 處的吸光度(A0);測(cè)定125μL 95%乙醇溶液與125μL樣品溶液在波長(zhǎng)517nm處的吸光度(Aj)[7]。按式(1)計(jì)算其清除率,并計(jì)算其EC50。

    清除率(%)=(1-(Ai-Aj)/A0)×100

    式(1)

    1.2.2.2 ABTS+·清除實(shí)驗(yàn) 將等體積的7mmol/L ABTS 溶液與2.45mmol/L過(guò)硫酸鉀混合使之反應(yīng)并置于暗處12~16h,制備ABTS+·。用95%乙醇將ABTS+·溶液稀釋至其在波長(zhǎng)734nm處吸光度為0.70±0.02。將100μL不同質(zhì)量濃度(0. 025~0.4mg/mL)樣品和VC溶液加入3.9mL ABTS+·溶液中,室溫放置10min,測(cè)量其在波長(zhǎng)734nm處的吸光度(Ai)。測(cè)定3.9mL ABTS+·溶液與100μL 95%乙醇混合后在波長(zhǎng)734nm處的吸光度(A0);測(cè)定3.9mL 95%乙醇溶液與100μL樣品溶液在波長(zhǎng)734nm處的吸光度(Aj)[8]。按式(1)計(jì)算其清除率,并計(jì)算其EC50。

    1.2.2.3 超氧陰離子自由基清除實(shí)驗(yàn) 不同質(zhì)量濃度(0.2~1.6mg/mL)的樣品和VC溶液100μL,依次加入50μL 500μmol/L的NADH(溶解于0.2mol/L 磷酸鹽緩沖液,pH7.4)、50μL 200μmol/L的NBT和50μL 20μmol/L的PMS。置于25℃條件下反應(yīng)8min,測(cè)量其在波長(zhǎng)560nm 處的吸光度(Ai)。測(cè)定50μL NADH、50μL NBT和50μL PMS與100μL 95%乙醇混合后在波長(zhǎng)560nm處的吸光度(A0);測(cè)定50μL NADH、50μL NBT和50μL 水與100μL樣品溶液在波長(zhǎng)560nm處的吸光度(Aj)[9]。按式(1)計(jì)算其清除率,并計(jì)算其EC50。

    1.2.2.4 羥自由基清除實(shí)驗(yàn) 不同質(zhì)量濃度(0.0625~1.0mg/mL)樣品和VC溶液500μL,依次加入28mmol/L脫氧核糖(溶于pH7.0的0.2mmol PBS 磷酸緩沖液)中50μL、1mmol/L的EDTA 50μL、1mmol/L的氯化亞鐵50μL和1mmol/L的H2O250μL,最后加入1mmol/L的抗壞血酸50μL啟動(dòng)反應(yīng),37℃水浴孵育1h,加入10%三氯乙酸250μL終止反應(yīng),再加入0.5% TBA(溶于25mmol/L的NaOH溶液),105℃孵育0.5h,于532nm處測(cè)得吸光度(Ai),用500μL蒸餾水代替樣品溶液,測(cè)得吸光度(A0),用PBS代替脫氧核糖測(cè)得吸光度(Aj)[10]。按式(1)計(jì)算其清除率,并計(jì)算其EC50。

    1.2.2.5 金屬離子螯合能力實(shí)驗(yàn) 不同質(zhì)量濃度(0.03125~0.5mg/mL)的樣品和EDTA溶液1mL,加入1mmol/L 的FeCl2·4H2O 50μL和5mmol/L Ferrozine 40μL,振蕩混勻。37℃孵育10min后,測(cè)定波長(zhǎng)562nm處吸光度(Ai)。用水代替Ferrozine時(shí)測(cè)得吸光度(Aj),用95%乙醇代替樣品溶液時(shí)測(cè)得吸光度(A0)[11]。按式(1)計(jì)算其螯合率,并計(jì)算其EC50。

    1.2.2.6 還原力測(cè)定實(shí)驗(yàn) 不同質(zhì)量濃度(0.1~0.5mg/mL)的樣品和VC溶液1.0mL,加入0.2moL/L的磷酸鹽緩沖液(pH6.6)2.5mL和1%的鐵氰化鉀溶液2.5mL,50℃水浴孵育20min,快速冷卻,然后加入2.5mL 10%(w/v)三氯乙酸溶液,混合溶液3000r/min離心10min,精密吸取上清液2.5mL,加入2.5mL蒸餾水和0.5mL 0.1%的三氯化鐵溶液,在700nm處測(cè)吸光度A,吸光度值越大,還原力越強(qiáng)[12]。

    1.2.3 含量測(cè)定

    1.2.3.1 總黃酮含量測(cè)定 將0.5mL不同質(zhì)量濃度的蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液(0~140μg/mL)置于2mL離心管中,加入5% NaNO2溶液50μL,搖勻,靜置 6min,加入10% Al(NO3)3溶液50μL,搖勻,靜置 6min,最后加入的1mol/L NaOH溶液250μL,搖勻,靜置15min,510nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光值,重復(fù)三次,取平均值。以蘆丁的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。根據(jù)蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線,按照相同方法求得各樣品中總黃酮含量[13]。

    1.2.3.2 總酚含量的測(cè)定 將0.1mL不同質(zhì)量濃度的沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)品溶液(0~140μg/mL)置于4mL離心管中,加入1mL Folin-Ciocalteu試劑,振蕩5min后加入1mL 7% Na2CO3溶液充分混勻,室溫放置5h,760nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光值,重復(fù)三次,取平均值。以沒(méi)食子酸的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。根據(jù)沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線按照相同方法求得各樣品中總酚含量[14]。

    1.3 數(shù)據(jù)處理

    2 結(jié)果與分析

    2.1 藏茜草不同極性部位對(duì)DPPH自由基的清除作用

    圖1 藏茜草不同極性部位對(duì)DPPH自由基的清除率Fig.1 DPPH radical scavenging activity of different extract from R tibetica Hook. F

    由圖1和表1可知,不同極性部位對(duì)DPPH自由基清除能力存在顯著差異,且在0.0125~0.2mg/mL終濃度范圍內(nèi)呈明顯的量效關(guān)系。其中,乙酸乙酯部位的EC50為(0.06±0.01)mg/mL,隨顯著高于VC的EC50(0.013±0.002)mg/mL,但仍然表現(xiàn)出較高的自由基清除能力。正丁醇部位和95%醇提部位清除DPPH自由基能力相當(dāng),且活性較小,而水提部位對(duì)DPPH自由基幾乎沒(méi)有清除作用。

    2.2 藏茜草不同極性部位對(duì)ABTS自由基的清除作用

    由圖2和表1可知,除水提部位外,其它四個(gè)極性部位對(duì)ABTS+·均表現(xiàn)出一定的清除能力,且有明顯的量效關(guān)系。其中乙酸乙酯部位對(duì)ABTS+·清除能力最強(qiáng),在質(zhì)量終濃度10μg/mL時(shí),清除率可達(dá)97.89%。不同極性部位清除ABTS+·自由基的能力順序?yàn)?乙酸乙酯部位>石油醚部位>95%醇提部位>正丁醇部位>水提部位。

    圖2 藏茜草不同極性部位對(duì)ABTS自由基的清除率Fig.2 ABTS radical scavenging activity of different extract from R tibetica Hook. F

    圖3 藏茜草不同極性部位對(duì)·的清除率Fig.3 Superoxide radical scavenging activity of different extract from R tibetica Hook. F

    表1 藏茜草不同極性部位對(duì)5種抗氧化評(píng)價(jià)方法的清除率EC50Table 1 The EC50of different extracts from R tibetica Hook. F by five antioxidant assays

    2.4 藏茜草不同極性部位對(duì)羥自由基(OH·)清除作用

    Fenton反應(yīng)產(chǎn)生的羥自由基能將脫氧核糖降解為丙二醛,丙二醛與硫代巴比妥酸反應(yīng)生成的紅色物質(zhì)在532nm處有最大吸收,通過(guò)檢測(cè)吸光度值的變化可以反映羥自由基清除能力。從圖4和表1可知,在測(cè)試濃度范圍內(nèi),藏茜草不同極性部位清除羥基自由基的能力隨樣品濃度增大而逐漸增強(qiáng),但均弱于VC。各極性部位對(duì)羥基自由基的清除能力的順序?yàn)檎〈疾课?95%醇提部位>乙酸乙酯部位>石油醚部位>水提部位

    圖4 藏茜草不同極性部位對(duì)OH·的清除率Fig.4 Hydroxyl radical scavenging activity of different extract from R tibetica Hook. F

    2.5 藏茜草不同極性部位對(duì)金屬的螯合能力測(cè)定

    測(cè)定亞鐵離子螯合能力的大小是評(píng)價(jià)氧化劑抗氧化性能常用的方法之一,金屬離子螯合后可降低其在自由基氧化過(guò)程中催化作用,減少自由基生成。螯合能力越強(qiáng)被評(píng)價(jià)的抗氧化劑潛在的抗氧化性就愈強(qiáng)。Ferrozine能夠與Fe2+形成紫紅色的螯合物,當(dāng)其他有競(jìng)爭(zhēng)力的螯合劑存在時(shí),紫紅色會(huì)變淺。通過(guò)螯合物顏色的變化,可以評(píng)價(jià)物質(zhì)對(duì)Fe2+的螯合能力。圖5和表1所示的結(jié)果表明,EDTA具有極強(qiáng)的金屬螯合活性;除水提部位外,藏茜草不同極性部位均具有很強(qiáng)的螯合作用,在低濃度(0.125mg/mL)時(shí),各極性部位對(duì)Fe2+的螯合率順序?yàn)橐宜嵋阴ゲ课?正丁醇部位>石油醚部位>95%醇提部位,但是在高濃度(0.5mg/mL)時(shí),各極性部位對(duì)Fe2+的螯合率差別不大,分別為95%醇提部位(89.36%)、正丁醇部位(86.12%)、乙酸乙酯部位(81.13%)、石油醚部位(75.58%)。

    圖5 藏茜草不同極性部位對(duì)金屬離子的螯合率Fig.5 Chelating ability of different extract from R tibetica Hook. F

    2.6 藏茜草不同極性部位的還原力測(cè)定

    物質(zhì)的還原能力與其抗氧化活性之間有一定的相關(guān)性,鐵氰化鉀被抗氧化物質(zhì)還原成亞鐵氰化鉀,亞鐵氰化鉀與三價(jià)鐵離子反應(yīng),生成的普魯士藍(lán)在700nm有最大吸收峰。吸光度越大,還原能力越強(qiáng)。從圖6可以看出:乙酸乙酯部位還原能力最強(qiáng),石油醚部位、正丁醇部位和95%醇提部位的還原能力相當(dāng),表現(xiàn)出弱的還原力,而水提部位幾乎沒(méi)有還原能力。

    圖6 藏茜草不同極性部位的還原力Fig.6 Reduce power of different extract from R tibetica Hook. F

    2.7 藏茜草不同極性部位總黃酮含量測(cè)定

    樣品中的總黃酮含量由蘆丁標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=6.9399X-0.0023(R2=0.9998)換算得來(lái),各極性部位的總黃酮含量如表2所示:乙酸乙酯部位中總黃酮含量最高,為(232.03±1.74)mg蘆丁當(dāng)量/g提取物,水提部位的含量最低,僅(1.87±0.11)mg蘆丁當(dāng)量/g提取物;石油醚部位中總黃酮含量較多,為(84.59±1.26)mg蘆丁當(dāng)量/g提取物,然后依次是正丁醇部位和95%醇提部位,分別是(63.96±0.77)和(48.78±1.40)mg蘆丁當(dāng)量/g提取物。

    2.8 藏茜草不同極性部位總多酚含量測(cè)定

    樣品中的多酚含量由沒(méi)食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=5.8343X+0.0086(R2=0.9988)換算得來(lái),各提取部位的多酚含量如表2所示:乙酸乙酯部位中總多酚含量最高,為(173.53±1.75)mg 沒(méi)食子酸當(dāng)量/g提取物,然后依次是石油醚部位、正丁醇部位和95%醇提部位,分別是42.29±0.89、39.89±1.03、(36.29±0.72)mg沒(méi)食子酸當(dāng)量/g提取物。水提部位多酚含量最低,僅為(3.25±1.04)mg沒(méi)食子酸當(dāng)量/g提取物。

    表2 藏茜草不同極性部位中總黃酮和總酚含量測(cè)定Table 2 Total flavonoid and phenolic content in different extracts from R tibetica Hook. F

    2.9 抗氧化活性間相關(guān)性分析

    表3 藏茜草抗氧化活性測(cè)定方法間相關(guān)系數(shù)(r)Table 3 Correlation coefficient(r) of five models of antioxidant activity

    注:*表示在0.05水平上顯著相關(guān),**表示在0.01水平上顯著相關(guān);表4同。

    2.10 多酚、黃酮含量與抗氧化活性相關(guān)性分析

    研究表明:植物的抗氧化活性與其多酚和黃酮含量有密切相關(guān)[15],通過(guò)對(duì)藏茜草不同極性部位的總多酚和總黃酮含量進(jìn)行測(cè)定和相關(guān)性分析,通過(guò)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析藏茜草產(chǎn)生抗氧化活性的物質(zhì)基礎(chǔ),為進(jìn)一步提取分離有效成分提供依據(jù)。

    表4 藏茜草抗氧化活性與其總黃酮含量 和多酚含量的相關(guān)系數(shù)(r)Table 4 Correlations between the antioxidant activity and total phenolics and flavonoids content of R tibetica Hook F

    3 結(jié)論

    [1]Circu M L,Aw T Y. Reactive oxygen species,cellular redox systems,and apoptosis[J]. Free Radic Biol Med,2010,48:749-762.

    [2]Halliwell B,Gutteridge J M. Role of free radicals and catalytic metal ions In human disease:an overview[J]. Methods Enzymol,1990,186:1-85.

    [3]Gordon M H. Significance of dietary antioxidants for health[J].Int J Mol Sci,2012,13:173-179.

    [4]Grice H C. Safety evaluation of butylated hydroxyanisole from the perspective of effects on forestomach and oesophageal squamous epithelium[J]. Food Chem Toxicol,1988,26:717-723.

    [5]才讓草.十種中藏藥的辨析[J].中國(guó)民族民間醫(yī)藥,2011,22:5.

    [6]馬合木提·買買提明,賽力慢·哈得爾,瑪爾哈巴·吾斯?jié)M. 蕪菁籽不同溶劑提取物體外抗氧化活性研究[J]. 化學(xué)研究與應(yīng)用,2013,6:829-833.

    [7]Blois M S. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical[J]. Nature,1958,26:1199-1200.

    [8]Re R,Pellegrini N,Proteggente A,etal. Rice-Evans C:Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolourisation assay[J]. Free Rad Biol Med,1999,26:1231-1237.

    [9]Shukla S1,Mehta A,Mehta P,etal. Antioxidant ability and total phenolic content of aqueous leaf extract of Stevia rebaudiana Bert[J]. Exp Toxicol Pathol,2012,64(7-8):807-811.

    [10]Halliwell B,Gutteridge J M C,Amoma O L. The deoxyribose method:a simple test tube assay for the determination of rate constant for reaction of hydroxyl radical[J]. Anal Bio chem,1987,165:215-9.

    [11]Dinis T C P,Madeira V M C,Almeida L M. Action of phenolic derivates(acetoaminophen,salycilate and 5-aminosalycilate)as inhibitors of membrane lipid peroxidation and as peroxyl radical scavengers[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics,1994,315:161-169.

    [12]Gulcin I,Sat I G,Beydemir S,etal. Comparison of antioxidant activity of clove(Eugenia caryophylata Thunb)buds and lavender(LavandulastoechasL.)[J]. Food Chemistry,2004,87(3):393-400.

    [13]Athukorala Y,Jeon Y,Kim K. Antiproliferative and antioxidant properties of an enzymatic hydrolysate from brown alga,Eckloniacava[J]. Food and Chemical Toxicology,2006,44:1065-1074.

    [14]Silva J K,Cazarin C B B,Colomeu T C,etal. Antioxidant activity of aqueous extract of passion fruit(Passiflora edulis)leaves:Invitroandinvivostudy[J]. Food Research International. 2013,53(2):882-890.

    [15]Riceevans C A,Miller N J,Paganga G. Structure-antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids[J]. Free Radical Biology and Medicine,1996,20(7):933-956.

    Study on the antioxidant activity of different extracts fromRubiatibeticaHook. F.

    JING Lin-lin1,MA Hui-ping1,FAN Xiao-fei1,2,YANG Bei-bei3,PENG Xiao-xia3,JIA Zheng-ping1,*

    (1. Department of Pharmacy,Lanzhou General Hospital,Lanzhou Command of CPLA,Lanzhou 730050,China;2.Department of Medicinal Chemistry,Lanzhou University,Lanzhou 730000, China;3.Gansu college of Traditional Chinese Medicine,Lanzhou 730000,China)

    The present study was carried out to evaluate the antioxidant capacity of the 95% ethanol crude extracts and their four solvent fractions(petroleum ether,ethyl acetate,normal butyl alcohol and aqueous)ofRubiatibeticaHook. F. The extracts of theRubiatibeticaHook. F. were evaluated for their total phenols,total flavonoids and antioxidant activity(DPPH radical,ABTS radical,hydroxyl radical,superoxide scavenging effect,reducing power and ferrous ions chelating activities). The relationship between the antioxidant activity and the content of total phenolics and total flavonoids was analysed. The results showed that all the fraction except water fraction had great antioxidant activity and the content of total phenolics and total flavonoids had a highly significant correlation with the activity. The ethyl acetate fraction was the most effective fraction with the highest content of total phenolics and total flavonoids and the content of them were(232.03±1.74)mg rutin equivalent/g extract and(173.53±1.75)gallic acid equivalent mg/g extract,respectively. The EC50values of ethyl acetate fraction based on DPPH,superoxide,hydroxyl radical and ABTS was 0.06±0.01,0.17±0.01,(0.24±0.02)mg/mL and(1.75±0.23)μg/mL. The EC50of ethyl acetate fraction on ferrous ions chelating activities was(0.11±0.01)mg/mL. Ethyl acetate fraction ofRubiatibeticaHook. F,a strong ability to act as antioxidant,may be considered as a natural source of active compounds.

    RubiatibeticaHook. F;antioxidant activity;total flavonoids;total phenolics

    2014-03-18

    景臨林(1982-),男,博士,研究方向:天然產(chǎn)物化學(xué)。

    國(guó)家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(81202458);全軍醫(yī)藥科研“十二五”面上項(xiàng)目(CLZ12JA04);中國(guó)博士后科學(xué)基金(2012M521926)。

    TS255.1

    A

    1002-0306(2015)01-0091-06

    10.13386/j.issn1002-0306.2015.01.011

    猜你喜歡
    茜草螯合極性
    茜草炭的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提升研究
    玉米低聚肽螯合鐵(II)的制備和結(jié)構(gòu)表征
    基于3D技術(shù)和偏光技術(shù)的茜草鑒別研究
    茜草與入骨丹(東南茜草)質(zhì)量比較研究
    不同結(jié)構(gòu)的烏鱧螯合肽對(duì)抗氧化活性的影響
    跟蹤導(dǎo)練(四)
    表用無(wú)極性RS485應(yīng)用技術(shù)探討
    3種茜草科植物的抗寒特性
    一種新型的雙極性脈沖電流源
    螯合型洗滌助劑檸檬酸一氫鈉與Ca2+離子螯合機(jī)理的理論研究
    绥滨县| 三门峡市| 讷河市| 肇州县| 辽中县| 汾西县| 康定县| 泸西县| 长阳| 增城市| 麻城市| 连平县| 旺苍县| 日土县| 同德县| 镇巴县| 曲水县| 延长县| 新疆| 读书| 斗六市| 东乡族自治县| 灵寿县| 温宿县| 凯里市| 江永县| 江陵县| 义乌市| 南开区| 吐鲁番市| 陕西省| 资源县| 宿迁市| 华亭县| 乐陵市| 遵化市| 习水县| 临泉县| 镇安县| 光泽县| 商南县|