常規(guī)抗生素會改變正常腸道菌群的數(shù)量和復(fù)雜性,進(jìn)而會降低這些具有保護(hù)作用的微生物在胃腸道內(nèi)的競爭性定植的能力。因此,容易導(dǎo)致艱難梭菌感染(Clostridium Difficile Infection,CDI)。一旦在結(jié)腸中定植,艱難梭菌會產(chǎn)生毒素A(Clostridium difficile Toxin A,TcdA)和毒素B(Clostridium difficile Toxin B,TcdB),引起包括腹瀉、偽膜性結(jié)腸炎、中毒性巨結(jié)腸及可能致命的多系統(tǒng)器官衰竭等臨床癥狀。
治療CDI公認(rèn)的方法是使用對艱難梭菌敏感的抗生素。在大約80 %的病例中,這種治療方法會完全康復(fù),而在剩余病例中,會發(fā)生遷延性CDI(rCDI),這是因?yàn)橥S眉紫踹蚩股睾笪茨苤亟ㄕN改c道菌群,導(dǎo)致對艱難梭菌敏感人群復(fù)發(fā)或再發(fā)生CDI。
雖然對TcdA和TcdB在CDI發(fā)病機(jī)制中的作用了解較多,但對其在艱難梭菌腸道定植中的作用了解甚少。不過,有跡象表明,艱難梭菌的確在哺乳動物胃腸道中定植。比如定植艱難梭菌的無癥狀患者表現(xiàn)出發(fā)生CDI風(fēng)險(xiǎn)下降,以克林霉素治療的倉鼠預(yù)定植不產(chǎn)毒艱難梭菌可保護(hù)動物不受隨后野生型產(chǎn)毒菌株感染的影響。此外,CDI患者恢復(fù)期血清含有艱難梭菌細(xì)胞壁相關(guān)成分的抗體(如FliC、FliD、Fbp68、SlpA、Cwp66和Cwp84),在體外研究中發(fā)現(xiàn)這些成分與微生物定植有關(guān)。
本研究使用了三種公認(rèn)的艱難梭菌定植因子(CFs)特異性卵黃抗體(IgY)和候選疫苗,即鞭毛的結(jié)構(gòu)蛋白(鞭毛蛋白)FliC、鞭毛帽蛋白FliD及84 kDa細(xì)胞壁相關(guān)半胱氨酸蛋白酶Cwp84(參與表面層蛋白SlpA的正確加工和組裝)。有充分證據(jù)表明,在通過多種哺乳動物的胃腸道后,純化的IgG及IgY抗體仍保持其抑菌活性。CF-特異性IgY制劑可促進(jìn)CDI患者清除腸道中的艱難梭菌,同時保護(hù)正常胃腸道菌群,降低rCDI的發(fā)病率。
1 方法
1.1 艱難梭菌菌株及培養(yǎng)方法
艱難梭菌630菌株承蒙韋爾科姆基金會桑格研究所的Trevor Lawley博士提供。艱難梭菌VPI 10463(ATCC 43255)菌株從美國典型菌種保藏中心獲得。艱難梭菌菌株常規(guī)培養(yǎng)在源于冷凍原液的Y瓊脂平板培養(yǎng)基中[腦心浸液(BHI)瓊脂,含5 %綿羊血、5 mg血紅素和1 mg的維生素K1],并在Bactron III型厭氧培養(yǎng)箱中37 ℃厭氧培養(yǎng)48 h。在黏附試驗(yàn)中,將單個菌落接種于BHI培養(yǎng)基,并在37 ℃下厭氧培養(yǎng)18 h,直至培養(yǎng)物達(dá)到指數(shù)生長后期。
用于驗(yàn)證泳動瓊脂分析的艱難梭菌630 fliC基因阻斷突變株(Cdi-fliC-260a)按照Heap等介紹的方法在實(shí)驗(yàn)室利用基于ClosTron組II型內(nèi)含子突變系統(tǒng)構(gòu)建。Western免疫印跡分析、透射電鏡和瓊脂管泳動分析表明,這種fliC基因阻斷突變株缺乏生成鞭毛蛋白(FliC)以及組裝功能性鞭毛絲狀體的能力。
1.2 人體腸道T84細(xì)胞培養(yǎng)物狀況
T84細(xì)胞在5 % CO2、37 ℃的24孔組織培養(yǎng)平板中培養(yǎng),所用培養(yǎng)基為添加10 %胎牛血清的DMEM/F12培養(yǎng)基。
1.3 克隆FliC、FliD和Cwp84抗原
FliC、FliD和Cwp84基因是由卡爾加里大學(xué)醫(yī)學(xué)院托馬斯·路易博士提供的艱難梭菌卡PCR擴(kuò)增而得。按照文獻(xiàn)所述設(shè)計(jì)PCR引物,然后按廠家說明將PCR產(chǎn)物克隆到pQE-30 UA。用標(biāo)準(zhǔn)的化學(xué)轉(zhuǎn)化方法將克隆產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌M15細(xì)胞。按照廠家對pQE-30克隆系統(tǒng)的說明進(jìn)行6xHis-標(biāo)記蛋白的表達(dá)和純化。采用SDS-PAGE(12.5 %分離膠)分析純化蛋白(圖1),通過對凝膠蛋白質(zhì)條帶所獲胰蛋白酶肽的質(zhì)譜分析確認(rèn)其成分。
1.4 雞的免疫方案
抗原制劑(0.1 mg Ni-親和純化6xHis-標(biāo)記重組抗原/0.5 mL PBS,pH 7.2)在弗氏完全佐劑(1∶1)中乳化,肌內(nèi)注射給5月齡白來航胸肌。首次注射兩周后,相同劑量相同方式強(qiáng)化注射,2周后再次重復(fù)。第二和第三次注射以弗氏不完全佐劑代替完全佐劑。最后一次注射后一周集蛋,處理前2 ℃~4 ℃下儲存。
1.5 從凍干蛋黃粉中提純CF-特異性IgY
將2 g凍干蛋黃粉溶于150 mL冰冷蒸餾水中,使用Waring混合機(jī)高速均質(zhì)1 min,然后將pH調(diào)至5.0。2 800轉(zhuǎn)下離心40 min,調(diào)節(jié)上清液pH至4.0,加入活性炭至終濃度0.01 %(w/v)。以2 800轉(zhuǎn)的速度再次離心30 min,所得上清液以Wahtman1號濾紙過濾。濾過液用Amicon超濾杯以100 kDa的超濾膜濃縮至30 mL。濃縮的IgY溶液pH調(diào)節(jié)至9.0,加入40 %硫酸銨4 ℃下沉淀蛋白質(zhì)1 h。然后以3 000轉(zhuǎn)離心溶液30 min。獲得的硫酸銨沉淀溶解在15 mL 0.01M Tris/HCl中(pH 8.0),再次以40 %硫酸銨4 ℃下沉淀IgY 1 h。最后3 000轉(zhuǎn)離心30 min,沉淀物溶解于鈉/鉀 PBS(pH 7.2)中,使用50 kDa超濾透析膜透析過夜。
1.6 SDS-PAGE和Western免疫印跡
重組6x His-標(biāo)記FliC、FliD和Cwp84從大腸桿菌Ni-親和純化,并使用12.5 %的分離膠進(jìn)行SDS-PAGE分析。分離出的蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,200 V下電泳45 min。用5 %脫脂奶Tris緩沖液(TBSTM,含0.05 %Tween20,pH 7.4)封閉。初級IgY抗體稀釋在TBSTM中,并在膜下孵育1 h。然后與結(jié)合辣根過氧化物酶的羊抗-IgY二抗以1∶10 000稀釋添加到TBSTM,并與膜一起孵育1 h。以TBST(不含5 %脫脂奶的TBSTM)充分洗膜后,按照供應(yīng)商的說明以持久性化學(xué)發(fā)光底物檢測試劑盒進(jìn)行免疫反應(yīng)性蛋白成像。
1.7 艱難梭菌泳動檢測
泳動瓊脂試管中含有終濃度為0.175 %的瓊脂BHI溶液。添加IgY抗體至終濃度為10 mg/mL。過夜培養(yǎng)物中獲得的艱難梭菌630菌株和Flic基因阻斷突變菌株垂直注入瓊脂。然后將試管在37 ℃下厭氧培養(yǎng)24 h。
1.8 倉鼠保護(hù)實(shí)驗(yàn)
體重80 g~100 g的雄性敘利亞倉鼠(Harlan實(shí)驗(yàn)室)在試驗(yàn)前5 d以溶解于PBS的克林霉素磷酸酯灌胃處理,劑量為30 mg/kg體重。5 d后(試驗(yàn)第0天),倉鼠灌胃接受懸浮于DMEM/F12的103艱難梭菌菌630株孢子。以未免疫雞卵黃處理的倉鼠在試驗(yàn)第0天以及此后每隔10 d接受懸浮于0.5 mL 0.1 M碳酸鹽緩沖液(pH 9.0)的45 mg凍干粉。僅以純化FliD-特異性IgY處理的倉鼠每天接受溶于0.5 mL碳酸氫鹽緩沖液中的0.5 mg蛋白(使用二辛可寧酸測定法測定),為期10 d。以來源于未免疫雞卵黃的純化重組FliD-特異性IgY處理的動物每天接受相同量的FliD-特異性IgY(0.5 mg蛋白)+溶解于0.5 mL碳酸氫鹽緩沖液中的45 mg凍干蛋黃粉,為期10 d。每4 h檢查倉鼠,出現(xiàn)CDI癥狀時(肛周染色、反應(yīng)遲鈍)馬上CO2處死。
1.9 免疫標(biāo)記程序
單一的艱難梭菌630菌落在2 %甲醛/0.5 %戊二醛的50 mM二甲胂酸鈉緩沖液(pH 7.4)中厭氧懸浮20 min。然后將10 μL的固定化細(xì)菌添加到活性炭涂布的透射電鏡格柵2 min,過量溶液用濾紙輕輕吸去。將格柵樣品面向下浮于50 μL 5 % BSA的PBS溶液1 h,進(jìn)行封閉。然后將格柵轉(zhuǎn)移至50 μL 1∶50稀釋的FliD-特異性IgY溶液或稀釋在5 %BSA中的對照IgY溶液1 h。以PBS徹底洗滌后,將格柵轉(zhuǎn)移至50 mL 1∶25稀釋、結(jié)合有15 nm金粒的羊抗-IgY 1 h。以PBS洗滌后,添加10 mL的1 %磷鎢酸進(jìn)行格柵染色(pH 7.0)10 s。用濾紙輕輕吸去過量染色液,并使用日立H-7650透射電鏡檢查干燥格柵。
1.10 T84細(xì)胞艱難梭菌黏附試驗(yàn)
所有試驗(yàn)均重復(fù)3次。生長后期指數(shù)階段(OD600=0.65)的艱難梭菌VPI 10463培養(yǎng)物稀釋于過夜預(yù)還原的DMEM/F12[含CF-特異性或?qū)φ章腰SIgY制劑(1 mg/mL)],并添加到濃度大約為106 cfu/mL(m.o.i.=1∶1)T84細(xì)胞單層中。組織培養(yǎng)平板在37 ℃下厭氧孵育3 h,然后以無菌PBS洗滌5次,以除去非貼壁細(xì)菌。在3 h的厭氧培養(yǎng)后使用MTT細(xì)胞殖測定法測定T84細(xì)胞的活力。為測定黏附細(xì)菌數(shù)量,以含有1 mM EDTA的0.25 %胰蛋白酶處理T84細(xì)胞,然后在無菌PBS中稀釋10倍。隨后將稀釋液分三份接種于Y瓊脂平板上。將平板在37 ℃下厭氧培養(yǎng)48 h,所得菌落稀釋至30~300個菌落/平板后計(jì)數(shù)。
2 結(jié)果
圖1為SDS-PAGE凝膠圖像,對用于免疫雞的Ni-親和純化重組艱難梭菌FliC、FliD和Cwp84抗原進(jìn)行分析。箭頭所指條帶從凝膠中切除,并用于質(zhì)譜分析中3種純化蛋白鑒別。
根據(jù)厭氧條件下抑制艱難梭菌VPI10463菌株黏附結(jié)腸T84細(xì)胞單層的能力,對重組艱難梭菌FliC、FliD或Cwp84免疫的雞所產(chǎn)卵黃進(jìn)行初步篩選。試驗(yàn)結(jié)果(圖2)表明,含F(xiàn)liD-特異性IgY的卵黃抑制艱難梭菌對T84細(xì)胞單層黏附效果明顯優(yōu)于其他未免疫雞所產(chǎn)卵黃(P<0.001)或有FliC-特異性IgY的卵黃(P<0.05)。雖然以1∶1∶1比例混合的三種CF-特異性卵黃制劑混合物抑制艱難梭菌黏附T84細(xì)胞的效果顯著優(yōu)于(P<0.05)FliC-特異性卵黃,不過3種制劑的混合并未優(yōu)于FliD-特異性制劑的抑制效果。因此,選擇含有FliD特異性-IgY的卵黃作進(jìn)一步評估。
采用此前Ko和Ahn報(bào)道的兩步活性炭脫脂硫酸銨沉淀法由凍干卵黃純化獲得FliD特異性-IgY。SDS-PAGE分析(圖3a)表明使用這種簡單有效的方法純化IgY主要形成分子量為68 kDa和30 kDa的蛋白質(zhì)特征條帶,分別為IgY的重鏈和輕鏈。圖3(b)的結(jié)果表明,在免疫印跡中與FliD抗原結(jié)合的純化FliD-特異性IgY制劑與FliC或Cwp84抗原沒有交叉反應(yīng)。此外,抗原捕獲型ELISA結(jié)果表明,與FliD-特異性卵黃粗制劑相比,凍干蛋黃純化FliD-特異性IgY可顯著提高其滴度(圖4)。此外,瓊脂泳動分析表明,與含對照IgY或不含IgY的瓊脂泳動相比,F(xiàn)liD-特異性IgY制劑可降低艱難梭菌630菌株的活動性(圖6)。
五項(xiàng)獨(dú)立倉鼠CDI保護(hù)試驗(yàn)得到的累計(jì)存活結(jié)果如圖7所示。數(shù)據(jù)表明,與接受未免疫雞卵黃相比,單獨(dú)使用純化FliD-特異性IgY碳酸鹽緩沖液可顯著提高(P<0.05。雙尾Fisher精確檢驗(yàn))倉鼠感染濃度為103的艱難梭菌630菌株孢子的存活率。此外,含對照卵黃的重組純化FliD-特異性IgY未顯著改變其在倉鼠CDI試驗(yàn)中的保護(hù)效力。
3 討論
我們希望檢驗(yàn)這樣一個假設(shè),即針對艱難梭菌毒力因子的治療方式可能是一種更為有效的CDI治療或輔助治療措施。此前有證據(jù)表明FliD黏附于鼠盲腸黏液制劑,這表明這種鞭毛成分不僅具有調(diào)節(jié)鞭毛組裝作用及運(yùn)動功能外,還是艱難梭菌的黏附素。另一項(xiàng)研究表明,CDI感染者生成艱難梭菌FliD、FliC、一種纖連蛋白結(jié)合蛋白Fpb68和Cwp66的血清抗體,且對艱難梭菌FliD比對FliC產(chǎn)生更為強(qiáng)烈的免疫應(yīng)答。
本文給出的結(jié)果確認(rèn)了艱難梭菌FliD鞭毛帽蛋白特異性IgY作為一種CDI或rCDI患者的替代性治療或輔助治療方法的可行性。觀察結(jié)果表明,對倉鼠CDI提供良好保護(hù)的FliD-特異性IgY制劑與這些抗體抑制艱難梭菌黏附于結(jié)腸T84細(xì)胞的卓越效果有關(guān)(圖2)。
除了在艱難梭菌定植過程中的重要作用外,F(xiàn)liD-特異性IgY制劑在治療倉鼠CDI中的成功也可能與抗體似對抗原決定簇具有高親和力以及FliD蛋白接觸到抗原決定簇的數(shù)量有關(guān)。即使稀釋100 000倍,F(xiàn)liD-特異性IgY制劑在Western免疫印跡中的反應(yīng)性(圖3b)證明這些多克隆抗體仍對FliD抗原上抗原決定簇具有親和力。IgY制劑的高親和力也可能表示在通過宿主胃腸道期間高比例抗體的優(yōu)勢。如果存活的成分仍然能夠使致病菌失能,到達(dá)感染腸道部位時有多少制劑仍然保持物理完整性和活性并不重要。
原題名:Therapeutic potential of egg yolk antibodies fortreating Clostridium difficile infection (英文)
原作者: G. L. Mulvey等(加拿大卡爾加里大學(xué))
參考文獻(xiàn):(略)