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    實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測(cè)豬傳染性胃腸炎病毒方法的建立及應(yīng)用

    2015-04-18 10:41:31方振華
    中國(guó)獸醫(yī)雜志 2015年12期
    關(guān)鍵詞:胃腸炎傳染性定量

    方振華,丁 利

    (1.海南職業(yè)技術(shù)學(xué)院生物工程學(xué)院,海南???70216;2.海南師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,海南???71158)

    實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR檢測(cè)豬傳染性胃腸炎病毒方法的建立及應(yīng)用

    方振華1,丁 利2

    (1.海南職業(yè)技術(shù)學(xué)院生物工程學(xué)院,海南???70216;2.海南師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,海南???71158)

    本研究將豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)N基因部分片段克隆并連接到pGEM-T Easy載體上,得到重組質(zhì)粒,以此為標(biāo)準(zhǔn)模板進(jìn)行SYBR GreenⅠ熒光定量RT-PCR擴(kuò)增并制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,建立TGEV的熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法。該方法檢測(cè)靈敏度可達(dá)10拷貝/μL,具有良好的特異性和重復(fù)性;對(duì)20份臨床疑似病料進(jìn)行檢測(cè),發(fā)現(xiàn)14份為熒光定量RT-PCR陽(yáng)性,而常規(guī)RT-PCR只能檢測(cè)出10份。結(jié)果表明,建立的實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR方法具有特異、敏感、快速、重復(fù)性好等優(yōu)點(diǎn),可用于臨床TGEV感染的早期診斷以及分子流行病學(xué)調(diào)查。

    豬傳染性胃腸炎病毒;實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR;SYBRGreen I

    豬傳染性胃腸炎(Transmissible gastroenteritis of swine,TGE)是由豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)引起的一種高度接觸性傳染病,以嘔吐、嚴(yán)重腹瀉、脫水以及致兩周齡內(nèi)仔豬高死亡率為主要臨床特征,是我國(guó)法定重點(diǎn)防控的疫病之一。隨著中國(guó)集約化養(yǎng)豬產(chǎn)業(yè)的程度愈來愈高,TGE的發(fā)生與流行有明顯加重的趨勢(shì),且與其他病原混合感染和繼發(fā)感染已成為當(dāng)今豬群發(fā)病的普遍規(guī)律,導(dǎo)致臨床診斷難度大大增加,因此研究特異靈敏的診斷方法對(duì)快速檢測(cè)及防治TGE具有十分重要的意義。目前,常規(guī)檢測(cè)TGEV的方法大部分操作繁瑣,且靈敏度不高[1-2],而實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)便快捷等特點(diǎn),且可以有效防止檢測(cè)過程中的污染及假陽(yáng)性,可大大提高檢測(cè)效率[3]。本研究以TGEV N基因序列為靶基因,建立一種特異的實(shí)時(shí)定量PCR方法,用于TGEV的實(shí)時(shí)檢測(cè),該法快速、靈敏、準(zhǔn)確,從而為TGEV的早期快速診斷提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 毒株、菌株豬傳染性胃腸炎病毒、豬流行性腹瀉病毒、豬輪狀病毒三聯(lián)苗,購(gòu)自中國(guó)獸藥監(jiān)察所;豬傳染性胃腸炎病毒、豬乙型腦炎病毒、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒、PK-15細(xì)胞、大腸桿菌DH5α均由本實(shí)驗(yàn)室保存;TGEV臨床檢測(cè)病料來自各地市自然感染豬。

    1.2 主要試劑T載體、Taq DNA聚合酶、dNTP等均為Fermentas公司產(chǎn)品;DNA凝膠快速回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒為Vigorous公司產(chǎn)品;反轉(zhuǎn)錄試劑盒,購(gòu)自北京全式金生物科技有限公司;2× SYBRGreen-IMasterMix為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品,其他常規(guī)試劑均由本實(shí)驗(yàn)室提供。

    1.3 引物設(shè)計(jì)與合成根據(jù)Gen Bank公布的TGEV N基因序列,設(shè)計(jì)N基因引物,由南京金斯瑞生物技術(shù)有限責(zé)任公司合成。序列為上游引物:5′-ACAAACACACCTGGAAGAGAACT-3′;下游引物:5′-GAATGCTAGACACAGATGGAACAC-3′,預(yù)計(jì)擴(kuò)增片段165 bp。

    1.4 質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)模板的制備病毒總RNA提取按TRIZol試劑說明書進(jìn)行。反轉(zhuǎn)后的cDNA用于目的基因片段的擴(kuò)增,然后將目的片段與pGEM-T Easy載體連接,轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,并對(duì)重組質(zhì)粒進(jìn)行PCR鑒定,將鑒定正確的重組質(zhì)粒進(jìn)行測(cè)序驗(yàn)證。經(jīng)驗(yàn)證陽(yáng)性的重組質(zhì)粒,測(cè)定質(zhì)粒模板濃度,計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)品的拷貝數(shù),然后將其10倍倍比稀釋作為實(shí)時(shí)熒光定量PCR陽(yáng)性標(biāo)準(zhǔn)模板。

    1.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增用標(biāo)準(zhǔn)品作為模板,進(jìn)行SYBRGreenⅠ熒光定量PCR擴(kuò)增。分別對(duì)反應(yīng)體系中的引物濃度、退火溫度等條件進(jìn)行優(yōu)化,通過預(yù)試驗(yàn)對(duì)反應(yīng)條件進(jìn)行優(yōu)化,最終確定最佳反應(yīng)體系和反應(yīng)條件。

    1.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備以10倍梯度稀釋的質(zhì)粒為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,并利用Bio-Rad iQ5軟件進(jìn)行分析,得到擴(kuò)增曲線、溶解曲線和標(biāo)準(zhǔn)曲線。

    1.7 特異性、重復(fù)性和敏感性試驗(yàn)將豬輪狀病毒、豬流行性腹瀉病毒、豬乙型腦炎病毒、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒樣品的cDNA或DNA,按照優(yōu)化的條件進(jìn)行熒光定量PCR,驗(yàn)證其特異性、重復(fù)性和敏感性。

    1.8 臨床樣品的檢測(cè)對(duì)各地市送檢的20份臨床病料進(jìn)行處理,提取RNA,應(yīng)用普通RT-PCR方法和熒光定量PCR方法檢測(cè)。

    2 結(jié)果

    2.1 普通PCR結(jié)果與測(cè)序分析以TGEV N基因設(shè)計(jì)引物進(jìn)行普通RT-PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)電泳鑒定,與預(yù)期結(jié)果一致。將目的片段回收、純化、克隆到pGEM-TEasy載體(簡(jiǎn)稱pGEM-T-N),質(zhì)粒PCR產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果進(jìn)行BLAST比對(duì),結(jié)果與TGEV相應(yīng)區(qū)域100%同源。

    2.2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR條件的優(yōu)化對(duì)TGEV SYBR GreenⅠ熒光定量PCR擴(kuò)增條件進(jìn)行優(yōu)化,最終確定如下:反應(yīng)總體系為25μL,2×SYBRGreen-IMaster Mix 12.5μL,上、下游引物各0.5μL(20μmo l/L),模板1μL,滅菌去離子水10.5μL。循環(huán)條件為:95℃預(yù)變性10min;95℃5 s,60℃30 s。40個(gè)循環(huán)數(shù),在該條件下擴(kuò)增曲線起跳早,熒光值較高,溶解曲線峰狹窄單一。

    2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制將標(biāo)準(zhǔn)樣品10倍倍比稀釋,并分別以此為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增。從圖1可知,在溶解曲線上有單一的峰,說明本方法特異性高。經(jīng)IQ5熒光定量PCR儀軟件繪制質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)模板的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),由結(jié)果可知斜率為R2=0.998,擴(kuò)增效率為100.2%。說明在稀釋的范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    圖1 TGEV熒光定量RT-PCR溶解曲線

    圖2 TGEV熒光定量RT-PCR標(biāo)準(zhǔn)曲線

    2.4 熒光定量PCR的特異性、重復(fù)性和敏感性試驗(yàn)將TGEV、豬流行性腹瀉病毒、豬輪狀病毒、豬乙型腦炎病毒、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒的模板進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn)除TGEV能夠擴(kuò)增出S型曲線外,其他對(duì)照病毒均不能檢測(cè)出S型曲線,表明所建立的方法具有較強(qiáng)的特異性(圖3)。選取同一稀釋倍數(shù)的重組質(zhì)粒為模板,進(jìn)行熒光定量PCR檢測(cè)。由圖4可知,同一濃度所得的Ct值基本相同,變異很小,表明此方法的重復(fù)性良好。將模板質(zhì)粒稀釋成濃度為101,102,103,104,105,106,107,108,109的標(biāo)準(zhǔn)品,并分別以此為模板進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,由擴(kuò)增曲線可知其靈敏度為10拷貝/μL(圖5)。

    圖3 TGEV熒光定量RT-PCR特異性試驗(yàn)

    圖4 TGEV熒光定量RT-PCR重復(fù)性試驗(yàn)

    圖5 TGEV熒光定量RT-PCR敏感性試驗(yàn)

    2.5 臨床樣品檢測(cè)結(jié)果比較對(duì)20份臨床病料應(yīng)用所建立的熒光定量RT-PCR方法和普通RTPCR方法同時(shí)檢測(cè),設(shè)置陽(yáng)性病料2份和陰性病料2份作為對(duì)照。結(jié)果顯示,用常規(guī)RT-PCR檢出10份TGEV陽(yáng)性病料,而熒光定量PCR檢出14份陽(yáng)性病料,熒光定量PCR檢測(cè)靈敏度高于常規(guī)RT-PCR。

    3 討論

    實(shí)時(shí)熒光定量PCR是一種新型的核酸定量技術(shù),由于其靈敏度高、重復(fù)性好、污染少等優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于醫(yī)學(xué)檢測(cè)、基因表達(dá)研究、病原體檢測(cè)、病毒荷載量測(cè)定等方面[6]。常用的PCR定量方法主要包括SYBRGreen I染料法、Taq Man探針法、分子信標(biāo)法、雜交探針法等[4]。SYBR Green I熒光定量PCR方法只需在SYBR Green I反應(yīng)混合液中加入引物和待測(cè)樣品,其成本相對(duì)低廉。與Taq Man探針法相比,更加簡(jiǎn)便,無需合成價(jià)格昂貴的探針[5]。該技術(shù)應(yīng)用于TGEV檢測(cè),能在病毒隱性感染和豬發(fā)病早期進(jìn)行快速確診和實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)。部分學(xué)者利用TGEV基因序列設(shè)計(jì)合成引物和探針,建立了Taq Man熒光定量RT-PCR方法,其檢測(cè)敏感性比常規(guī)RT-PCR方法提高了多倍[6-7]。張?jiān)啤⑼踅ㄖ械妊芯空哚槍?duì)TGEV的S基因等建立了SYBRGreen I熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法,敏感性高、特異性強(qiáng)、穩(wěn)定性好[8-10]。本試驗(yàn)建立的TGEV熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法靈敏度可達(dá)10拷貝/μL,與豬輪狀病毒、豬流行性腹瀉病毒、豬乙型腦炎病病毒、豬偽狂犬病病毒、豬細(xì)小病毒不發(fā)生交叉反應(yīng),具有重復(fù)性好、特異性強(qiáng)、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn)。與普通RT-PCR相比,SYBRGreen IPCR的擴(kuò)增和檢測(cè)都在同一管內(nèi)完成,不需要后續(xù)的電泳檢測(cè),有效解決了污染問題,而且操作更簡(jiǎn)便,檢測(cè)時(shí)間更短,可作為規(guī)?;i場(chǎng)TGEV的凈化檢測(cè)方法,同時(shí)也可用于臨床TGEV感染的早期診斷以及分子流行病學(xué)調(diào)查。

    [1]李小蘭,聶福平,李應(yīng)國(guó),等.豬傳染性胃腸炎病毒NASBA檢測(cè)方法的建立[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2010,32(6):451-454.

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    [3]陽(yáng)成波,印遇龍,黃瑞林,等.實(shí)時(shí)定量RT-PCR的原理及方法[J].免疫學(xué)雜志,2003,19(3):145-150.

    [4]陳旭,齊鳳坤,康立功,等.實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)研究進(jìn)展及其應(yīng)用[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,41(8):148-155.

    [5]劉歆,徐根明,郭江峰,等.基于SYBRGreenⅠ的雙鏈DNA定量方法[J].中國(guó)生物工程雜志,2008,28(1):55-60.

    [6]白興華,馮力,陳建飛,等.豬傳染性胃腸炎病毒Taq Man熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2007,38(5):476-481.

    [7]徐麗秋,蘇永生,趙玉軍,等.檢測(cè)豬傳染性胃腸炎病毒Taq?Man熒光定量RT—PCR方法的建立與初步應(yīng)用[J].畜牧與獸醫(yī),2009,41(9):14-17.

    [8]董玲娟,張彥明,何雷,等.豬傳染性胃腸炎病毒熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2012,40(2):13-19.

    [9]王建中.豬傳染性胃腸炎病毒S基因?qū)崟r(shí)熒光定量RT-PCR檢測(cè)方法的建立及初步應(yīng)用[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2014,41(1):66-71.

    [10]張?jiān)?,王亞賓,陳麗穎,等.豬傳染性胃腸炎病毒S基因的SYBR Green I熒光定量RT-PCR檢測(cè)[J].湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2011,37(5):521-525.

    Development of real-time RT-PCR for detecting transm issible gastroenteritisvirus and its prelim inary application

    FANG Zhen-hua1,DING Li2
    (1.School of Biological Engineering,Hainan College of Vocation and Technique,Haikou 570216,China;2.College of Life Sciences,Hainan Normal University,Haikou 571158,China)

    Transmissible gastroenteritis virus(TGEV)N genewas cloned into pGEM-TEasy vector,which is used as the standard template for real-time RT-PCR.Then,the standard curvewasmade,and the real-time RT-PCRmethod was established for TGEV detection.The sensitivity of themethod could reach 10 copies/μLwith good specificity and repeatability.20 samples from sick pigswere tested,ofwhich 14 were positive by real-time RT-PCR detection,while only 10 were tested positive by conventional RT-PCR.These results showed that the real-time RT-PCRmethod was specific,sensitive,rapid and good repeatability.Thus,Thismethod established RT-PCR can be used for the early diagnosis of TGEV infection andmolecular epidemiological investigation.

    transmissible gastroenteritis virus;real-time RT-PCR;SYBR GreenⅠ

    DING Li

    S852.65+1

    A

    0529-6005(2015)12-0020-03

    2014-07-14

    國(guó)家自然科學(xué)基金(31502036);海南省自然科學(xué)基金(314076;20153086)

    方振華(1980-),男,講師,碩士,從事動(dòng)物飼養(yǎng)管理及疾病防治教學(xué)和科研工作,E-mail:okay1688@163.com

    丁利,E-mail:dingli705@163.com

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