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    TNF-α在CCD模型大鼠背根神經(jīng)節(jié)中的表達及機制*

    2015-04-17 02:52:28張淑芬楊紅軍鄧兵梅武肖娜
    中國病理生理雜志 2015年4期
    關鍵詞:背根神經(jīng)節(jié)生理學

    張淑芬, 楊紅軍, 鄧兵梅, 武肖娜

    (1廣州軍區(qū)廣州總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,廣東 廣州 510010; 2廣州中醫(yī)藥大學,廣東 廣州 510504)

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    TNF-α在CCD模型大鼠背根神經(jīng)節(jié)中的表達及機制*

    張淑芬1, 2, 楊紅軍1△, 鄧兵梅1, 武肖娜1

    (1廣州軍區(qū)廣州總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,廣東 廣州 510010;2廣州中醫(yī)藥大學,廣東 廣州 510504)

    目的: 探討TNF-α和NF-κB在背根神經(jīng)節(jié)慢性壓迫(CCD)模型大鼠背根神經(jīng)節(jié)(DRG)中的表達變化及其對疼痛學行為的影響。方法: 建立CCD大鼠模型,采用von Frey纖維絲監(jiān)測機械痛閾的改變;通過Western blotting檢測TNF-α和NF-κB在DRG中的表達變化趨勢,分析其與疼痛行為之間的相關性;并采用免疫熒光雙染技術研究TNF-α在DRG中的表達位置。結果: CCD組的50%機械縮足閾值在術后1 d即開始明顯下降(P<0.01),7~14 d達到高峰,其后逐漸上升,直至術后35 d仍明顯低于術前及sham組(P<0.01)。而DRG上的TNF-α及NF-κB于造模后各時點均顯著增多(P<0.01),且TNF-α的表達趨勢與50%機械縮足閾值顯著相關(P<0.05)。結論: DRG慢性壓迫可促進其上的TNF-α和NF-κB的合成和分泌,進而誘發(fā)機械痛覺過敏。因此,TNF-α/NF-κB信號通路可能是CCD模型疼痛形成的重要通路之一。

    背根神經(jīng)節(jié)慢性壓迫模型; 背根神經(jīng)節(jié); 腫瘤壞死因子α; 核因子κB

    神經(jīng)病理性疼痛(neuropathic pain,NP)是由軀體感覺神經(jīng)系統(tǒng)的損傷或疾病所直接引起的疼痛[1]。其發(fā)病機制復雜,目前尚無統(tǒng)一定論。近年來,隨著對NP研究的深入,發(fā)現(xiàn)許多免疫細胞和炎性細胞因子在其形成和維持中發(fā)揮著重要作用,其中腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)最為關鍵。大量研究證實TNF-α在各種不同神經(jīng)痛模型的不同組織如周圍神經(jīng)、背根神經(jīng)節(jié)(dorsal root ganglion,DRG)、脊髓、腦中均有一定程度升高[2-6],但其機制不明。

    TNF-α作為一種重要的前炎癥介質,其可通過與細胞表面受體結合,激活IKK,引起IκBα磷酸化降解,使核因子κB(nuclear factor-κB,NF-κB)活化,而活化的NF-κB轉移入細胞核,調控靶基因的表達。因此,本研究假設TNF-α/NF-κB信號通路為NP形成的重要通路之一,通過建立背根神經(jīng)節(jié)慢性壓迫(chronically compressed dorsal root ganglion,CCD)模型,研究TNF-α及NF-κB在此模型DRG中的表達規(guī)律,并探討TNF-α與疼痛行為學之間的關系。

    材 料 和 方 法

    1 實驗動物及分組

    清潔級成年雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠35只,由廣東省實驗動物中心提供,體重200~250 g。實驗于廣州軍區(qū)廣州總醫(yī)院動物實驗中心進行,術前飼養(yǎng)5 d以適應環(huán)境。隨機取10只作為假手術(sham)組,剩下的25只為CCD組。2組各取5只,分別于手術前2 d、1 d以及手術后1 d、4 d、7 d、14 d、21 d、28 d和35 d進行行為學測定。同時,CCD組分別于術后1 d、4 d、7 d、14 d、21 d、28 d和35 d取材,而sham組均于術后7 d取材。取得的DRG分別用于進行Western blotting和免疫熒光實驗。

    2 實驗方法

    2.1 模型建立方法 CCD模型的制備方法已有文獻報導[7]。將動物麻醉后,剪毛并消毒背部皮膚,俯臥位,于背部正中L4~5水平作一縱行切口,分離棘突左側皮下組織及肌肉,暴露左側第4、5腰椎(L4、L5)的椎間孔,將兩根L型不銹鋼柱(長4 mm,直徑0.5~0.8 mm)插入L4、L5椎間孔以形成對DRG的持續(xù)壓迫,此時可見左下肢肌肉輕微抽動,逐層縫合肌肉、皮膚。而sham組僅暴露L4、L5椎間孔,不插入L型鋼柱。

    2.2 機械刺激撤足閾值的測定方法 50%機械刺激撤足閾值的測定采用Chaplan等[8]的Up-Down法:將大鼠置于透明有機玻璃箱中,底為0.5 cm×0.5 cm孔徑的鐵絲網(wǎng)。測試前3 d,讓大鼠每天在玻璃箱中適應30 min以上。測試時,待大鼠安靜后,選8根不同強度(0.2、0.4、0.6、1.0、2.0、4.0、6.0、8.0、15.0 g)的von Frey 纖維絲刺激大鼠左后肢足心部,每次持續(xù)時間3~5 s。以2.0 g為初始刺激強度,若撤足反應為陰性則選用刺激強度遞增的相鄰纖維絲繼續(xù)刺激,若撤足反應為陽性,則選擇相鄰遞減的強度給予刺激,如此類推,直至撤足反應為陽性后再連續(xù)刺激5次。記錄測試結果,相關軟件計算50%機械撤足閾值。

    2.3 Western blotting實驗 大鼠麻醉后,切開背部皮膚,剪去棘突、肌肉及后椎板,取下左側L4、L5 DRG。稱其重量,每100 g組織加入100 μL 含1%蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑的SDS裂解液,組織剪碎后用超聲破碎儀將其充分裂解,4 ℃ 12 000×g離心20 min,取上清。BCA試劑盒測出蛋白濃度。各組分別取相同總量進行電泳、轉膜;將膜置于1∶200稀釋的TNF-α抗體(Abcam)、1∶500稀釋的NF-κB抗體(Abcam)和1∶1 000稀釋的β-actin抗體(CST)中,4 ℃搖床上孵育過夜,次日室溫內(nèi)復溫30 min;TBST洗10 min 3次;加入 II 抗,室溫搖床上孵育1 h;TBST洗10 min×3次;將膜置于凝膠拍攝系統(tǒng)的暗盒內(nèi),加入ECL發(fā)光液,通過調節(jié)不同曝光時間來將目的條帶顯示出來,并拍照。最后用相關分析軟件比較不同組別目的蛋白之間的差異。

    2.4 免疫熒光雙染方法 大鼠麻醉后,用250 mL生理鹽水快速心臟灌注,再用4%多聚甲醛,速度先快后慢,至大鼠完全僵硬。切開背部皮膚,剪去棘突、肌肉及后椎板,取下左側的L4、L5 DRG。先于4%多聚甲醛中后固定30 min,再用30%蔗糖脫水2 d。明膠包埋后連續(xù)冰凍切片,片厚16 μm。切片用5% BSA封閉1 h;全部切片滴加1∶50稀釋的小鼠來源的TNF-α抗體,并在需要雙染的切片中分別滴加1∶100的GFAP抗體(衛(wèi)星膠質細胞染色)、1∶50的NF-200抗體(大神經(jīng)元染色)及1∶100的IB4抗體(小神經(jīng)元染色)(Abcam),4 ℃冰箱內(nèi)孵育過夜,次日室溫復溫30 min;PBS洗10 min 3次;滴加結合Cy3抗小鼠 II 抗和FITC抗兔 II 抗,室溫避光孵育1 h;PBS避光洗10 min 3次。熒光顯微鏡拍照。

    3 統(tǒng)計學處理

    實驗數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(mean±SD)表達,采用SPSS 13.0軟件,利用t檢驗分析CCD組與sham組之間的疼痛行為學和TNF-α的表達是否有顯著差異,并用非線性回歸分析計算TNF-α與50%機械縮足閾值之間的關系。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

    結 果

    1 CCD模型大鼠的50%機械縮足閾值改變

    CCD組大鼠損傷側的50%機械縮足閾值于術后1 d開始下降,與術前及sham組相比,均存在極顯著差異(P<0.01)。而于7~14 d時下降最明顯,其后開始逐漸回升,直至術后35 d,機械痛閾仍明顯低于術前和sham組(P<0.01)。同時,損傷對側的機械閾值于術后也持續(xù)低于術前和sham組(P<0.01)。而sham組沒有觀察到明顯的痛覺過敏現(xiàn)象, 各時點與術前相比無顯著差異,見表1。

    2 TNF-α在CCD模型大鼠DRG上的表達情況

    免疫熒光實驗結果證明,TNF-α在CCD模型大鼠DRG中的表達較sham組明顯增多。其在sham組的DRG無明顯著色,呈弱陽性表達(圖1A),而造模7 d后TNF-α則呈強陽性表達,免疫物質呈紅色(圖1B)。免疫熒光雙染結果顯示TNF-α與GFAP、NF-200及IB4均存在共染(圖1C~E),表明其主要在大、中、小DRG神經(jīng)元及其周圍的衛(wèi)星膠質細胞中表達。

    Western blotting結果表明,TNF-α在sham組大鼠DRG中表達很弱,而CCD術后1 d開始增多,與sham組相比存在極顯著差異(P<0.01)。其表達于7~14 d達到高峰,隨后逐漸下降。直至實驗觀察結束(術后35 d),其表達量與sham組之間仍有極顯著差異(P<0.01),見圖1F。

    表1 Sham組與CCD組于術前及術后各時點的50%機械痛閾

    Table 1.The 50% paw withdrawal threshold of the rats in sham and CCD groups at different time points after CCD operation(g. Mean±SD,n=5)

    Postoperativetime(d)ShamCCDIpsilateralContralateralIpsilateralContralateral-225.37±023.86±3.3823.86±3.3822.34±4.14-123.86±3.3822.34±4.1425.37±023.86±3.38118.76±7.3722.34±4.142.01±0.72**##6.27±3.44**##420.83±4.1420.83±4.141.37±1.32**##3.53±1.78**##722.34±4.1422.34±4.140.33±0.10**##2.16±0.75**##1020.83±4.1420.83±4.140.53±0.35**##2.26±0.80**##1422.34±4.1422.34±4.140.76±0.67**##2.04±0.81**##2123.86±3.3823.86±3.381.34±0.49**##3.45±2.31**##2825.37±025.37±02.92±1.50**##3.95±1.62**##3523.86±3.3823.86±3.383.05±1.65**##4.55±1.43**##

    **P<0.01vspre-peration (postoperative -1 or -2 d);##P<0.01vssham.

    Figure 1.The expression of TNF-α in the DRG of CCD group. A: the expression of TNF-α in sham group; B: the expression of TNF-α in CCD group; C~E: TNF-α expressed in all sizes of DRG neurons and the satellite glial cells; F: the expression of TNF-α in DRG at different time points after CCD detected by Western blotting. Mean±SD.n= 3.**P<0.01vssham.

    圖1 TNF-α在CCD模型大鼠DRG中表達的位置及時間趨勢

    3 DRG中TNF-α表達與50%機械縮足閾值之間的關系

    CCD組大鼠DRG中TNF-α的表達與50%機械縮足閾值之間的非線性回歸方程為y=7.744e-2.748x(R2=0.643,n=6),有顯著相關性。

    4 p-NF-κB在CCD模型大鼠DRG上的表達趨勢

    p-NF-κB在sham組大鼠DRG中表達較弱,CCD造模術后1 d開始增多,與sham組相比存在極顯著差異(P<0.01);其表達于7 d達高峰,隨后逐漸下降,于術后28 d已恢復正常,與sham組相比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖2。

    Figure 2.The protein levels of p-NF-κB in the DRG of CCD group at different time points after CCD. Mean±SD.n=3.**P<0.01vssham group.

    圖2 CCD后不同時間p-NF-κB在大鼠DRG中的蛋白水平

    討 論

    慢性腰腿痛是一種常見的神經(jīng)病理性疼痛,由于腰椎的退行性變或腰部外傷,致使椎間盤突出、脊椎韌帶鈣化或骨質增生,從而造成椎管和椎間孔狹窄,進而對DRG及其鄰近神經(jīng)根形成慢性壓迫,導致神經(jīng)組織水腫、變性,引起腰及下肢疼痛,但具體機制不明。本研究通過使用不銹鋼柱壓迫DRG,進而模擬腰椎間盤突出或腰椎管狹窄引起的神經(jīng)痛,從而探討其發(fā)病機制。

    目前很多研究認為,在外周和中樞神經(jīng)系統(tǒng)中,炎性細胞因子可能參與神經(jīng)痛的形成,其中TNF-α是較為確定的細胞因子之一。在神經(jīng)分支選擇性損傷、慢性壓迫損傷等周圍神經(jīng)損傷模型中,均發(fā)現(xiàn)脊髓和背根神經(jīng)節(jié)等部位的神經(jīng)元及膠質細胞中TNF-α表達明顯上調[5, 9]。而坐骨神經(jīng)周圍注入微量TNF-α也可引起明顯的痛覺過敏,其疼痛程度與劑量呈正相關[10]。上述研究均提示,TNF-α在神經(jīng)病理性疼痛的形成中起著關鍵作用。本研究結果表明,DRG慢性壓迫可引起其上的TNF-α明顯升高,且其表達趨勢與機械痛閾的進展變化呈指數(shù)關系。因此,我們推斷,DRG上TNF-α的過表達是引起機械痛覺過敏的重要原因之一。另外,免疫雙染實驗結果顯示,增多的TNF-α主要表達在DRG神經(jīng)元及其周圍的衛(wèi)星膠質細胞上。這與既往的研究結果相似:周圍神經(jīng)損傷后,各類膠質細胞增殖并被激活[11-12],進而產(chǎn)生各種炎性因子;而DRG神經(jīng)元則通過激活其上的Toll樣受體,繼而引起自身TNF-α和p-p38上調[9, 13]。

    TNF-α作為前炎性細胞因子,不僅可通過上調受損DRG神經(jīng)元的Na+離子通道[14](Nav1.1、Nav1.3和Nav1.8),使自發(fā)放電增多,從而引起痛覺過敏[15],還可通過MAPK、NF-κB等信號通路,促進自身及其它細胞因子的合成和分泌,導致炎癥介質的瀑布效應,以進一步參與神經(jīng)痛的維持。我們的結果提示,TNF-α及NF-κB均于壓迫早期開始明顯增多,兩者表達峰值幾乎一致。然而,TNF-α于術后1 d的增加倍數(shù)較NF-κB大;且NF-κB于術后7 d開始下降,直至28 d已基本恢復至正常水平,而TNF-α在術后14 d才開始逐漸減少,直至35 d,其表達量仍維持在較高水平。由此證明,DRG被壓迫后TNF-α迅速增多,參與神經(jīng)痛的發(fā)生;并通過啟動NF-κB信號通路促進自身的合成和分泌,以進一步維持神經(jīng)病理性疼痛。

    綜上所述,在CCD模型中,TNF-α/NF-κB信號通路是引起神經(jīng)病理性疼痛的重要通路之一,其參與了機械痛覺過敏的發(fā)生與維持。

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    中國病理生理學會第十屆全國代表大會暨學術會議第一輪通知

    中國病理生理學會第九屆全國代表大會暨學術會議將于2015年11月6日至11月9日在天津賓館舉行。本次大會由中國病理生理學會主辦,天津醫(yī)科大學承辦。

    大會主席由全國人民代表大會副委員長、中國科協(xié)主席、國際病理生理學會主席、中國病理生理學會理事長韓啟德院士擔任。在中國病理生理學會第九屆全國代表大會上,將審議中國病理生理學會第九屆理事會工作報告和章程修改報告,進行換屆選舉。

    隨著基礎與臨床相關研究日益密切以及轉化醫(yī)學概念的深化,病理生理學科與臨床學科的相互交流和滲透的要求尤為迫切。因此,本次學術會議將對心血管、干細胞、腫瘤、免疫、炎癥及神經(jīng)生物學等多個領域進行廣泛的研討,邀請眾多國內(nèi)外著名學者和臨床工作者共聚一堂,從不同角度切磋共同關心的課題,以促進學科融合,繁榮學術交流,進而達到雙贏效果。同時,為了鼓勵與培養(yǎng)青年優(yōu)秀科研工作者,會議期間還將進行青年優(yōu)秀論文的評獎活動。

    本次大會鼓勵參會代表積極向本次會議投稿,并擬對35歲以下(1980年10月30日以后出生)與會者的優(yōu)秀論文予以獎勵。由大會評審委員會選出優(yōu)勝者,頒發(fā)獎勵。大會只接受電子版摘要,請大家于2015年6月30日前登陸中國病理生理學會網(wǎng)站(http://www.caop.ac.cn/)進行在線投稿(在會議通知下方有網(wǎng)上提交系統(tǒng),填寫相關信息后提交即可;請注明是否參加優(yōu)秀青年論文評比)。

    中國病理生理學會第十屆全國代表大會組織委員會

    2015 年 3月 31日

    Expression and function of TNF-α in dorsal root ganglion of rats with chronically compressed dorsal root ganglion

    ZHANG Shu-fen1, 2, YANG Hong-jun1, DENG Bing-mei1, WU Xiao-na1

    (1DepartmentofNeurology,GuangzhouMilitaryGeneralHospital,Guangzhou510010,China;2GuangzhouUniversityofTraditionalChineseMedicine,Guangzhou510504,China.E-mail:neuroyhj@163.com)

    AIM: To investigate the role of TNF-α and NF-κB in the mechanism of neuropathic pain due to chronically compressed dorsal root ganglion (CCD). METHODS: Based on the CCD model, von Frey filaments were used to quantify behavior test. The expression changes of TNF-α and NF-κB were determined by Western blotting, and the correlation between the expression of TNF-α and the 50% paw withdrawal threshold was also analyzed. Moreover, the location of TNF-α in dorsal root ganglion (DRG) was observed with immunofluorescence double staining. RESULTS: We found 50% paw withdrawal threshold of CCD decreased at the first day after operation. The mechanical allodynia was the most obvious at postoperative 7~14 d and lasted longer than 35 d. The expression of TNF-α and NF-κB increased significantly in DRG after operation (P<0.01), especially at 7~14 d, and then restored gradually. Moreover, there was a correlation between the protein expression of TNF-α and the changes of neuropathic behavior (P<0.05). CONCLUSION: TNF-α and NF-κB are involved in the mechanism of mechanical allodynia after chronically compressed DRG.

    Chronically compressed dorsal root ganglion; Dorsal root ganglion; Tumor necrosis factor-α; Nuclear factor-κB

    1000- 4718(2015)04- 0675- 05

    2014- 11- 24

    2015- 03- 04

    廣東省自然科學基金資助項目(No. S2012010009849);全軍醫(yī)學科技“十二五”科研面上項目(No. CWS11J272)

    R363.2

    A

    10.3969/j.issn.1000- 4718.2015.04.018

    △通訊作者 Tel: 020-88653321; E-mail: neuroyhj@163.com

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