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    大麥不同器官總RNA提取方法研究

    2015-03-31 01:48:09李曉江馮紫洲德木齊格王亞玲徐壽軍
    安徽農(nóng)業(yè)科學 2015年17期
    關(guān)鍵詞:子粒離心管靜置

    郭 萍,李曉江,馮紫洲,德木齊格,王亞玲,楊 益,徐壽軍*

    (1.內(nèi)蒙古民族大學農(nóng)學院,內(nèi)蒙古通遼 028042;2.內(nèi)蒙古民族大學生命科學學院,內(nèi)蒙古通遼 028042)

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    大麥不同器官總RNA提取方法研究

    郭 萍1,李曉江2,馮紫洲1,德木齊格1,王亞玲1,楊 益1,徐壽軍1*

    (1.內(nèi)蒙古民族大學農(nóng)學院,內(nèi)蒙古通遼 028042;2.內(nèi)蒙古民族大學生命科學學院,內(nèi)蒙古通遼 028042)

    [目的] 探索出一套較好的大麥總RNA提取方法。[方法]以大麥的葉片、莖稈和子粒為試驗材料,探索各器官總RNA提取方法。[結(jié)果]所得產(chǎn)物的檢驗結(jié)果表明,總RNA具有整齊且清晰的28S rRNA、18S rRNA條帶,A260/A280均介于1.8~2.0。將提取的葉片總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,RT-PCR檢測PCR產(chǎn)物在1 500 bp處。[結(jié)論]用此方法提取的大麥各器官總RNA質(zhì)量較好,純度較高,完整性較好,可用于進一步的分子生物學研究。

    大麥;總RNA;提取

    大麥(HordeumvulgareL.)屬于禾本科小麥族大麥屬普通大麥種,因營養(yǎng)價值高,兼有食用、飼用和釀造用等多種用途,在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)和國民經(jīng)濟發(fā)展中具有重要意義[1]。

    從植物組織中提取純度高和完整性好的RNA是進行Northern 雜交分析、建立cDNA 文庫、RT-PCR、基因體外翻譯、DDRT-PCR、cDNA 末端快速擴增及差異顯示分析等分子生物學研究的重要前提。目前,提取植物RNA的方法有很多種,如Trizol 試劑快速提取法、CTAB法、熱硼酸法及改良的熱硼酸法、苯酚法、LiCl-尿素法及總RNA提取試劑盒等。但由于不同植物或同種植物不同組織所含成分不同,需要選擇不同的方法,或者對一些方法進行調(diào)整和改進。運用上述方法,許多學者提取了水稻、小麥、玉米、大豆、高粱等植物的總RNA,為這些植物后續(xù)的分子生物學研究奠定基礎。迄今為止,關(guān)于大麥各器官總RNA提取方法的研究較少。筆者以大麥的葉片、莖稈和子粒為試驗材料,參照小麥多種總RNA的提取方法,探索出一套較好的大麥總RNA提取方法。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 供試材料。蒙啤麥1號,由內(nèi)蒙古農(nóng)牧業(yè)科學研究院提供,在大麥灌漿中后期分別取葉片、莖稈和子粒,保存于-80 ℃的冰箱中待用。

    1.1.2 主要試劑。 RNAiso Plus、反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自寶生物工程有限公司,DEPC處理水、水飽和酚、Agarose購自北京索萊寶科技有限公司,三氯甲烷(氯仿)、異丙醇、異戊醇、無水乙醇購自天津市東麗區(qū)天大化學試劑廠。

    1.1.3 主要儀器。超低溫冰箱、高壓滅菌鍋、烘箱、電子天平、超凈工作臺、快速混勻器、高速冷凍離心機、電泳儀、紫外凝膠成像、紫外可見分光光度計、PCR儀。

    1.1.4 試驗用品的處理。將用于提取RNA的離心管、槍頭等浸泡于0.1%DEPC溶液中12 h,121 ℃高壓滅菌30 min,70~80 ℃烘干,備用。研缽用報紙包裝,121 ℃高壓滅菌30 min,160 ℃烘干,備用。用75%的乙醇擦拭超凈工作臺、離心機、離心管架、移液槍、試劑瓶等。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 葉片的提取方法。①取0.2 g葉片加入液氮研磨至粉末狀移入1.5 ml離心管;②立即加入1 ml RNAiso plus試劑,使用快速混勻器劇烈振蕩15 s,混勻樣品;③將其水平靜置5 min;④ 4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;⑤移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入0.2 ml氯仿,蓋緊管蓋,劇烈振蕩15 s,室溫靜置5 min;⑥4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;⑦移最上層水相到新的1.5 ml離心管中,加入0.25 ml NaAc和使其終濃度為10%的無水乙醇,蓋緊管蓋,輕輕混勻,室溫靜置10 min;⑧4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;⑨移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入1/5 體積的氯仿,劇烈振蕩15 s,室溫靜置5 min;⑩4 ℃,12 000 r/min,離心10 min;取上清水相,加等體積的異丙醇,輕輕混勻,靜置10 min;4 ℃,12 000 r/min,離心10 min;棄上清,留沉淀,加入1 ml預冷的75%乙醇(用DEPC水配制)洗沉淀,輕輕混勻,4 ℃,12 000 r/min離心5 min;棄上清,待其干燥(5~10 min),用適量DEPC水溶解沉淀,保存于-80 ℃的冰箱。

    1.2.2 莖稈的提取方法。①取0.2 g莖加入液氮研磨至粉末狀移入1.5 ml離心管;②立即加入1 ml RNAiso plus試劑,使用快速混勻器劇烈振蕩15 s,混勻樣品;③將其水平靜置5 min;④4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;⑤移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入0.2 ml配好的水飽和酚∶氯仿∶異戊醇中(V/V/V=25∶24∶1),蓋緊管蓋,劇烈振蕩15 s,室溫靜置5 min;⑥4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;⑦移最上層水相到新的1.5 ml離心管中,移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入1/5 上清液體積的氯仿,蓋緊管蓋,劇烈振蕩15 s,室溫靜置5 min;⑧4 ℃,12 000 r/min,離心10 min;⑨移最上層水相到新的1.5 ml離心管中,加入使其終濃度為10%的無水乙醇,蓋緊管蓋,輕輕混勻,室溫靜置10 min;⑩4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;取上清水相,加等體積的異丙醇,輕輕混勻,靜置10 min;4 ℃,12 000 r/min,離心10 min;棄上清,留沉淀,加入1 ml預冷的75%乙醇(用DEPC水配制)洗沉淀,輕輕混勻,4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;棄上清,待其干燥(5~10 min),用適量DEPC水溶解沉淀,保存于-80 ℃的冰箱。

    1.2.3 子粒的提取方法。①取0.2 g子粒加入液氮研磨至粉末狀移入1.5 ml離心管;②立即加入1 ml RNAiso plus試劑,0.1 ml巰基乙醇,使用快速混勻器劇烈振蕩15 s,混勻樣品;③將其水平靜置10 min;④4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;⑤移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入等體積配好的水飽和酚∶氯仿∶異戊醇(V∶V∶V=25∶24∶1),蓋緊管蓋,劇烈振蕩15 s,室溫靜置10 min;⑥4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;⑦移澄清上清液入一新的1.5 ml離心管中加入1/20體積上清液的4 mol/L KAc(pH 5.5),加入1/10體積上清液的預冷無水乙醇,混勻,再加入等體積配好的氯仿∶異戊醇(V∶V=24∶1),劇烈振蕩15 s,室溫靜置10 min;⑧4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;⑨取上清加2倍體積預冷無水乙醇,輕輕混勻;⑩-20 ℃放置1 h;4 ℃,12 000 r/min,離心15 min;棄上清,留沉淀,加入1 ml預冷的75%乙醇(用DEPC水配制)洗沉淀,輕輕混勻,4 ℃,12 000 r/min,離心5 min;重復的操作;棄上清,待其干燥(5~10 min),用適量DEPC水溶解沉淀,保存于-80 ℃的冰箱。

    1.3 RNA檢測

    1.3.1 質(zhì)量檢測。用紫外分光光度計檢測純度,用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA質(zhì)量。

    1.3.2 完整性檢測。用TaKaRa公司的RR047A反轉(zhuǎn)錄試劑盒,取2 μl葉片總RNA為模板,反轉(zhuǎn)錄體系參照說明書進行。利用DMGP引物進行PCR擴增試驗,第一次PCR反應體系(25 μl)中包括 2.5 μl cDNA,2.5 μl 1×ExTaqbuffer,2 μl dNTP,0.5 μl GSR,0.5 μl GSF,0.25 μl ExTaq,16.75 μl ddH2O。第二次PCR反應體系是取2.5 μl第一次反應產(chǎn)物,加入試劑同第一次反應體系。2次反應程序相同:94 ℃預變性2 min;94 ℃變性30 s,55 ℃延伸40 s,72 ℃退火90 s ,25個循環(huán);最后72 ℃延伸10 min,4 ℃下保存,如需長期保存,應于-20 ℃或更低溫度保存。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產(chǎn)物。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 質(zhì)量檢測 經(jīng)紫外可見分光光度檢測,所提葉片、莖稈、子粒RNA的A260/A280分別為1.98、1.95、1.88,在1.8~2.0,表明RNA的純度較高,能夠達到分子生物學試驗的要求。

    瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果見圖1~3。利用此方法提取的總RNA 可見清晰3條帶,從上至下分別是28S、18S 及5S。

    但所提總RNA有輕微拖尾、彌散和降解現(xiàn)象,可能原因有:①來自未處理干凈的超凈工作臺、研缽、試劑瓶、離心管和電泳槽的RNase污染;②在接觸沒有經(jīng)過處理的物品后,手套可能會沾染上RNase,若未經(jīng)常換新手套,RNase很容易進入離心管,使RNA降解;③提取步驟多且時間過長,會影響提取RNA的回收率和質(zhì)量。此外,子??俁NA用DEPC水溶解時有不溶性的膠狀物存在,可能是因為大麥子粒含有的酚類化合物被氧化后與RNA不可逆地結(jié)合,形成不溶性復合物[2],也可能是未除盡的多糖形成難溶的膠狀物,與不溶性復合物[2],也可能是未除盡的多糖形成難溶的膠狀物,與RNA共同沉淀下來[3]。因此,提取子粒的方法仍有待于進一步優(yōu)化。

    2.2 完整性檢測 圖4表明能成功地擴增出目的片段,說明提取的RNA樣品質(zhì)量好,可以進一步用于后續(xù)試驗。

    3 討論

    研究表明,來源于不同基因型植株同一種植物的同一種

    組織材料,其RNA提取方法也可能不同[4]。該試驗結(jié)果說明提取大麥葉片、莖稈、子??俁NA的3種方法較好,適用于蒙啤麥1號的RNA提取,為提取其他品種大麥的RNA奠定良好的基礎。影響總RNA提取質(zhì)量的因素是多方面的,如組織的破碎程度,RNase的活性,多糖和蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)的存在[5],操作中避免上述因素較難做到,因此提取較高質(zhì)量總RNA一直是分子生物學研究的基礎與重點。該試驗提取的RNA質(zhì)量有待于提高,試驗方法仍有不足,需要進一步優(yōu)化。由于該試驗所用大麥材料均為保存在-80 ℃且是灌漿中后期的材料,若是幼嫩或新鮮材料提取效果會更好。

    [1] 盧良恕.中國大麥學[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,1995:339-361.

    [2] GRAHAM G C.A method for extraction of total RNA from Pinus radiata and other conifers[J].Plant Mol Biol Reptr,1993,11:32-37.

    [3] LEWINSOHN E,STEELE C L,CROTEAU R.Simple isolation of functional RNA from woody stems of gymnosperms[J].Plant Mol Biol Reptr,1994,12:20-25.

    [4] SU X,GIBOR A.A method for RNA isolation from marine macroalgae[J]. Anal Biochem,1988,174:650-657.

    [5] 李宏,王新力.植物組織RNA提取的難點及對策[J].生物技術(shù)通報,1999,15(1):36-39.

    Study on the Total RNA Extraction Methods for Different Organs of Barley

    GUO Ping1, LI Xiao-jiang2, FENG Zi-zhou1et al

    (1.College of Agriculture,Inner Mongolia University for Nationalities, Tongliao, Inner Mongolia 028042;2.College of Life Science, Inner Mongolia University for Nationalities, Tongliao, Inner Mongolia 028042)

    [Objective] The aim was to explore total RNA extraction methods for different organs of barley. [Method] Using barley leaves, stems and grains as the experimental materials , the total RNA extraction method of these organs were explored. [Result]The detected results of these products showed that the total RNA had clear and neat stripes of 28S rRNA and 18S rRNA in the RNA electrophoresis. The ratios ofA260/A280were between 1.8 to 2.0. Leaves total RNA isolated by these methods were reverse transcribed and high quality cDNA were obtained. RT-PCR detected the product of PCR was in the 1 500 bp.[Conclusion]These results showed that the quality of the extracted barley total RNA were good, high purity, good integrity, and were suitable for further research in molecular biology.

    Barley; Total RNA; Extraction

    國家自然科學基金項目(30360307)。

    郭萍(1990- ),女,黑龍江雞西人,碩士研究生,研究方向:大麥栽培生理。*通訊作者,教授,博士,碩士生導師,從事大麥栽培生理研究。

    2015-04-24

    S 188

    A

    0517-6611(2015)17-033-02

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