呂錦芳,饒開晴,姜錦鵬,倪迎冬,顧有方,寧康健,應(yīng)如海,周玉剛,許百年
(1.安徽科技學(xué)院,安徽 鳳陽233100;2.西南民族大學(xué),四川 成都610041;3.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)業(yè)部動(dòng)物生理生化重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京210095;4.安徽省蚌埠市畜牧獸醫(yī)技術(shù)推廣站,安徽 蚌埠233000)
至今的研究普遍認(rèn)為,動(dòng)物生殖能力的獲得和維持稱為性成熟,而性成熟的啟動(dòng)有賴于下丘腦-垂體-性腺軸的成熟。家禽的性成熟主要受基因型、營養(yǎng)和光照等因素的影響,并且育成雞性成熟的速度受光照、營養(yǎng)等因素單獨(dú)影響或協(xié)同影響而加快。早期研究已證實(shí)家雞性成熟日齡與育成期光照長度呈負(fù)相關(guān)關(guān)系[1]。促性腺激素釋放激素(GnRH)是下丘腦分泌的重要信息分子,系生殖軸的上游激素,性成熟的限速因子[2],脈沖形式分泌引起黃體生成激素(LH)和卵泡刺激素(FSH)釋放作用于性腺。促性腺激素釋放激素受體(GnRH-R)是介導(dǎo)GnRH功能必不可少的物質(zhì),主要分布于垂體,20世紀(jì)70年代后下丘腦-垂體軸外GnRH及GnRH-R也相繼被發(fā)現(xiàn)[3]。至今有關(guān)光周期對(duì)蛋雞生殖軸GnRH mRNA與GnRH-RmRNA的表達(dá)與卵巢發(fā)育變化的關(guān)系報(bào)道還較少,本文通過光控觀察了育成蛋雞下丘腦-垂體GnRH-I及GnRH-RamRNA表達(dá)的變化以及對(duì)卵巢發(fā)育的調(diào)控功能,為進(jìn)一步探討蛋雞生殖軸的發(fā)育和成熟的影響因素,提高蛋雞的生產(chǎn)性能提供理論依據(jù)。
75日齡ISA褐蛋雞60只,隨機(jī)均分成長光和短光兩組,正式試驗(yàn)期70天(75~145日齡)。短光組(簡稱SL),恒定光/暗:8 h/16 h;長光組(簡稱LL),起始光/暗:8 h/16 h,以后每周增加0.5h,最長光/暗達(dá)到13 h/11 h,以短光組雞群見蛋日(145日齡)結(jié)束試驗(yàn)。地面平養(yǎng),自由采食飲水,常規(guī)免疫。記錄每組試驗(yàn)始重,經(jīng)統(tǒng)計(jì)學(xué)分析差異不顯著。分別于105 d和136 d(長光組約10%開產(chǎn))每組隨機(jī)各取蛋雞6羽稱重并斷頸處死,迅速無菌取出下丘腦、垂體置液氮速凍,-70℃凍存,并仔細(xì)分離卵巢稱重。
表1 引物參數(shù)Tab.1 Primer parameters
生物分光光度計(jì)(德國eppendorf),普通PCR儀(美國BIO RAD公司),凝膠電泳成像分析系統(tǒng)(Kodak 1D Electrophoresis Documentation and Analysis System 120)。TRIzol總RNA提取試劑盒(北京TIANGEN),M-MLV、RNAase抑 制 劑(美 國Promega公司),Taq DNA聚合酶及PCR試劑(大連TaKaRa公司)等。
由GenBank檢索雞的GnRH-I DNA序列,GnRHRaDNA序列,Beta-actinDNA序列,使用Primer premier 5.0軟件跨內(nèi)含子設(shè)計(jì)引物序列,GnRH-Ra引物序列參考[4],委托皓嘉生物技術(shù)有限公司合成,見表1。
測(cè)定育成蛋雞105 d和136 d的體重、卵巢重和卵巢指數(shù)。下丘腦組織GnRH-ⅠmRNA和垂體組織GnRH-RamRNA的表達(dá),采用RT-PCR方法,以常用管家基因β-肌動(dòng)蛋白(Beta-actin)為內(nèi)源性內(nèi)標(biāo),對(duì)GnRH-I和GnRH-Ra的表達(dá)產(chǎn)物mRNA進(jìn)行相對(duì)定量。
卵巢指數(shù)(mg/g)=卵巢鮮重(mg)/蛋雞空腹活重(g)
利用Trizol試劑提取下丘腦及垂體組織的總RNA,生物分光光度計(jì)測(cè)定總RNA濃度和純度(OD260/OD280=1.8~2.0)。采用甲醛凝膠變性電泳方法,檢查所提取的總RNA的完整性;PCR試劑檢查有無外源污染。使用隨機(jī)引物對(duì)總RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄(RT),建立樣品的cDNA第一鏈。反應(yīng)體系為25μL:MixⅠ包括RNA 2μg,隨機(jī)引物1μg,10 mmol/L dNTP 2μL,DEPC水補(bǔ)足12μL,70℃預(yù)變性5 min,立即冰浴,繼而加入反轉(zhuǎn)錄Mix II,包括M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶100 U,RNAase抑制劑8 U,5×RT Buffer 5 μL(含 250 mmol/L Tris-HCl pH8.3,15 mmol/L MgCl2,375 mmol/L KCl,50 mmol/L DTT),DEPC水補(bǔ)足25μL,混勻后37℃反應(yīng)60 min,95℃滅活5 min,4℃取樣。并將所有樣品的總RNA重復(fù)反轉(zhuǎn)錄,建立樣品的兩套cDNA。
下丘腦目的基因GnRH-Ⅰ的PCR的優(yōu)化條件:反應(yīng)體系25μL,其中RT產(chǎn)物2μL,加入PCR混合液23μL(10 pmol/μL GnRH-I上、下游引物各0.5 μL,10 pmol/μL Beta-actin上、下游引物各0.5μL,各2.5 mmol/L dNTP 0.5μL,25 mmol/L MgCl22.0μL,5 U/μL TaqE 0.1μL,10×PCR Buffer 2.5μL,ddH2O 15.9μL)。PCR擴(kuò)增條件為:94℃預(yù)變性5 min;94℃30 s,55℃30 s,72℃30 s,共28個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min,4℃取樣。垂體目的基因GnRH-Ra的PCR的優(yōu)化條件:反應(yīng)體系25μL,其中RT產(chǎn)物2μL,加入PCR混合液23μL(10 pmol/μLGnRH-Ra上、下游引物各1μL,10 pmol/μL Beta-actin上、下游引物各0.85μL,10×PCR Buffer 2.5μL,25 mmol/L MgCl21.5μL,各2.5 mmol/L dNTP 2.0μL,5 U/μL TaqE 0.15μL,ddH2O 13.15μL)。PCR擴(kuò)增條件為:94℃預(yù)變性5 min;94℃10 s,65℃20 s,74℃30 s,31個(gè)循環(huán);74℃延伸10 min。以上目的基因的兩套R(shí)T產(chǎn)物cDNA分別進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以比較兩套R(shí)T產(chǎn)物擴(kuò)增趨勢(shì)的一致性。
PCR產(chǎn)物加入Loading buffer 2μL混勻,取18μL在EB染色的2.0%瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳。電泳結(jié)果的圖像處理及灰度分析在Kodak 1D Electrophoresis Documentation and Analysis System 120(日本)上進(jìn)行。用GnRH-I mRNA(GnRH-Ra)灰 度/Beta-actinmRNA灰度表示蛋雞生殖軸目的基因的表達(dá)水平,并用兩套灰度比的均值用于統(tǒng)計(jì)分析。
雞下丘腦GnRH-I(Genbank:X69491,跨內(nèi)含子)設(shè)計(jì)的引物特異性已測(cè)序鑒定[5],GnRH-RaPCR產(chǎn)物的序列分析由大連TaKaRa公司完成。使用Blast程序?qū)y(cè)序結(jié)果與登錄的雞垂體GnRH-Ra(Genbank:AJ304414,跨內(nèi)含子)序列進(jìn)行同源性比較。
由表2可見,試驗(yàn)至105 d,短光組的體重、卵巢重以及卵巢指數(shù)與長光組均沒有差異(P>0.05)。136 d時(shí)短光組的體重低于長光組,但差異不顯著(P>0.05),而卵巢重、卵巢指數(shù)極顯著低于長光組(P<0.01)。
105 d長光組下丘腦GnRH-I mRNA的表達(dá)豐度高于短光組,但差異不顯著(P>0.05)。136 d長光組GnRH-I mRNA的表達(dá)豐度顯著高于短光組(P<0.05),且極顯著高于105 d長光組和短光組的表達(dá)(P<0.01)。該結(jié)果提示育成蛋雞在開產(chǎn)(長光組)或開產(chǎn)前(短光組),下丘腦的GnRH-I mRNA表達(dá)均處于升勢(shì),且長光組開產(chǎn)時(shí)達(dá)到相對(duì)較高水平,見圖1。
表2 育成蛋雞卵巢發(fā)育的比較±SE)Tab.2 Comparison of ovary development in growing layers
表2 育成蛋雞卵巢發(fā)育的比較±SE)Tab.2 Comparison of ovary development in growing layers
日齡(d)Day old 105 136光周期Photoperiods LL SL LL SL體重(g)Body weight 1289.667±49.007 1279.333±57.553 1608.667±56.526 1476.833±37.637卵巢重(g)Ovary weight 0.613±0.047 0.662±0.052 34.783±4.825 1.417±0.400**卵巢指數(shù)(mg/g)Ovary index 0.474±0.025 0.520±0.042 21.900±3.372 0.946±0.247**
圖1 下丘腦GnRH-I mRNA表達(dá)分析Fig.1 Analysis of GnRH-I mRNA expression in hypothalarmus
105 d,長光組垂體GnRH-RamRNA的表達(dá)豐度與短光組沒有差異(P>0.05)。136 d短光組GnRHRamRNA表達(dá)較105 d顯著下降(P<0.05),長光組GnRH-RamRNA表達(dá)的豐度顯著高于短光組(P<0.05),并且與105 d的長光組和短光組的表達(dá)均沒有差異(P>0.05)。該結(jié)果提示長光處理,蛋雞在開產(chǎn)前垂體GnRH-RamRNA的表達(dá)始終處于微弱的升勢(shì),但136 d時(shí)短光明顯下調(diào)了GnRH-RamRNA的表達(dá),見圖2。
圖2 垂體GnRH-Ra mRNA表達(dá)分析Fig.2 Analysis of GnRH-Ra a mRNA expression in pituitary
蛋雞垂體GnRH-RacDNA基因擴(kuò)增片斷的序列(簡稱Sbjct)與GenBank檢索雞的GnRH-RacDNA(AJ304414,簡稱Query)部分序列比對(duì)吻合率達(dá)到98%,見圖3。
禽類GnRH均為十肽激素存在兩種類型:cGn-RH-I和cGnRH-II。cGnRH-II與cGnRH-I有3個(gè)氨基酸差異。哺乳動(dòng)物體內(nèi)也存在兩種或兩種以上類型GnRH(mammalian GnRH,mGnRH),其下丘腦脈沖式分泌的mGnRH為十肽激素,與禽類的cGnRH-I僅第八位氨基酸差異。Dunn等[6]認(rèn)為,cGnRH-II不可能促進(jìn)鳥類促性腺激素的釋放,原因包括:cGnRHII不存在于正中隆起,其胞體存在于下丘腦的動(dòng)眼區(qū)域,而cGnRH-I胞體主要位于下丘腦視前區(qū)[7,8]。因此,cGnRH-I通過垂體門脈與垂體前葉促性腺細(xì)胞表面的特異性高親和力GnRH-R結(jié)合,促進(jìn)FSH、LH的合成與分泌。研究顯示,小公雞青春期啟動(dòng)過程中,下丘腦cGnRH-I的含量增加[9],并且6周齡小公雞下丘腦前葉GnRH的陽性細(xì)胞數(shù)量顯著多于3周齡小公雞[10]。肉用蛋雞產(chǎn)蛋啟動(dòng)前3周下丘腦的正中隆起GnRH-I含量明顯升高,且16周齡后垂體LH和FSH含量與下丘腦正中隆起cGnRH-I水平呈正相關(guān)[11]。證實(shí)禽類在性成熟過程中下丘腦GnRH神經(jīng)元經(jīng)歷了成熟性變化的過程,而cGnRH-II可能通過調(diào)控cGnRH-I的功能而間接影響促性腺激素的釋放和功能。促性腺激素抑制激素(GnIH)通過一種新的G蛋白偶聯(lián)受體(GPR147)作用于垂體和下丘腦GnRH神經(jīng)元,GnIH能夠減少促性腺激素的合成和釋放,抑制性腺發(fā)育和維持[12]。本試驗(yàn)測(cè)得,105 d和136 d長光、短光組下丘腦GnRH-I mRNA的表達(dá)均處于上升趨勢(shì),且136 d長光組GnRH-I mRNA表達(dá)豐度顯著高于短光組,也極顯著高于105 d長光組和短光組的表達(dá)。提示開產(chǎn)前夕長光大幅度上調(diào)了GnRH-I mRNA表達(dá)水平,與以上肉用蛋雞產(chǎn)蛋啟動(dòng)前3周下丘腦的正中隆起GnRH-I含量明顯升高是基本一致的。
圖3 垂體GnRH-Ra cDNA的同源性比對(duì)結(jié)果Fig.3 Comparison of GnRH-Ra cDNA homology in pituitary
動(dòng)物的GnRH-R基因和人的基本相同,哺乳動(dòng)物GnRH-R序列具有80%以上的同源性,都被歸類為GnRH-I型受體。由于I型受體可以高親和力結(jié)合GnRH-II,所以可取代GnRH-II型受體的作用,反過來就不行,因?yàn)镚nRH-II型受體對(duì)GnRH-II具有高度選擇性,但鳥類的繁殖狀況與垂體GnRH-II全長的mRNA水平相關(guān),而它的剪接變異體mRNA的表達(dá)在大多數(shù)腦組織檢測(cè)到[13]。研究表明,除動(dòng)物的垂體存在GnRH-RmRNA表達(dá)外,在雞的下丘腦[4]、大鼠的卵巢[14],以及人的非生殖器官等也存在Gn-RH-RmRNA的表達(dá)[3]。GnRH結(jié)合GnRH-R,引起受體構(gòu)象的改變,向細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)導(dǎo)信號(hào),但持續(xù)給予GnRH或GnRH類似物,可造成垂體GnRH-R的下調(diào)和脫敏,導(dǎo)致垂體-性腺軸功能抑制[15]。然而調(diào)節(jié)卵巢發(fā)育的內(nèi)分泌機(jī)制較為復(fù)雜,研究顯示小卵泡顆粒細(xì)胞中瘦素(LEP)的表達(dá)遠(yuǎn)高于大卵泡,而大卵泡分離的顆粒細(xì)胞中瘦素受體(LEP-Rb)的表達(dá)高于小卵泡的顆粒細(xì)胞,提示卵巢瘦素信號(hào)系統(tǒng)的存在對(duì)卵泡發(fā)育和卵母細(xì)胞成熟發(fā)揮潛在的調(diào)節(jié)作用[16]。同樣生長激素受體(GH-R)等也廣泛地分布在大部分雞的生殖系統(tǒng),調(diào)節(jié)生殖組織的生長發(fā)育和功能的變化[17],從而影響卵巢的發(fā)育。試驗(yàn)測(cè)得,長光組在開產(chǎn)前四周垂體的GnRH-RamRNA表達(dá)仍然處于微弱的升勢(shì),這與下丘腦GnRH-I mRNA的表達(dá)上調(diào)并保持升勢(shì)是完全一致的,但短光組開產(chǎn)前40天垂體GnRH-RamRNA的表達(dá)已進(jìn)入下調(diào)通道,136 d其GnRH-RamRNA的表達(dá)豐度顯著低于長光組,提示短光下調(diào)了開產(chǎn)前蛋雞垂GnRH-RamRNA的表達(dá)。105 d光處理蛋雞的體重、卵巢重以及卵巢指數(shù)均沒有差異,136 d時(shí)長光組的卵巢重、卵巢指數(shù)極顯著高于短光組。卵巢發(fā)育的差異同時(shí)伴隨出現(xiàn)見蛋日的差異(LL131 d/SL145 d)。綜上所述,長光明顯上調(diào)開產(chǎn)前蛋雞下丘腦GnRH-I mRNA的表達(dá),其GnRH-RamRNA的表達(dá)也保持較高的水平促進(jìn)卵巢的發(fā)育,而短光則明顯下調(diào)垂體GnRHRamRNA的表達(dá),這也可能是其卵巢發(fā)育延緩的主要原因之一。
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