賈小麗,高 鋒,官菊梅
(1.四川中醫(yī)藥高等專(zhuān)科學(xué)校附屬醫(yī)院皮膚科,四川綿陽(yáng)621000;2.成都中醫(yī)藥大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,成都610075)
瘢痕是創(chuàng)傷修復(fù)的必然結(jié)果,組織的異常修復(fù)可形成病理性瘢痕,不但影響美容,且常有瘙癢、刺痛等癥狀[1],但其發(fā)病機(jī)制至今仍是醫(yī)學(xué)需突破的難題。有研究顯示,病理性瘢痕與成纖維細(xì)胞密不可分,細(xì)胞外基質(zhì)的過(guò)度沉積與真皮成纖維細(xì)胞的異常增殖被認(rèn)為是病理性瘢痕的兩大特點(diǎn)[2];肌動(dòng)蛋白重構(gòu)蛋白(flightlessⅠ,F(xiàn)liⅠ)是創(chuàng)傷愈合一個(gè)重要調(diào)節(jié)因子,可以抑制細(xì)胞的增殖和移動(dòng)[3],尤其對(duì)成纖維細(xì)胞和角質(zhì)形成細(xì)胞的作用明顯。因此,本實(shí)驗(yàn)選擇成纖維細(xì)胞為研究對(duì)象,采用小分子RNA片段干擾和FliⅠ表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染技術(shù)研究FliⅠ對(duì)瘢痕成纖維細(xì)胞增殖和分化的影響。
1.1 一般資料 2012年1月至2014年1月于四川中醫(yī)藥高等專(zhuān)科學(xué)校附屬醫(yī)院行手術(shù)切除的12例住院患者的增生性瘢痕組織,年齡18~46歲,男女不限?;颊甙l(fā)病時(shí)間均大于半年,突出于皮膚并發(fā)紅,質(zhì)硬,高出正常皮面1cm左右,病變部超過(guò)原損傷創(chuàng)面,局部皮膚無(wú)感染和潰瘍;皮膚損傷局部感染、皮膚腫瘤、高血壓、糖尿病等基礎(chǔ)性疾病則排除取材[4]。取材部位無(wú)破損、感染,取材前未行特殊治療,患者均已知情同意并簽署了知情同意書(shū)[5]。
1.2 試劑 DMEM培養(yǎng)基(美國(guó)Gibco公司)、類(lèi)標(biāo)準(zhǔn)胎牛血清(蘭州民海);0.5%Ⅰ型膠原酶(Biosharp公司);EDTA螯合劑(杭州吉諾生物醫(yī)藥有限公司);WST-1(美國(guó)Sigma公司);Lipofectamine 2000(美國(guó)卡爾斯巴德英杰公司);FliⅠsiRNA(靶序列為5′-GCU GGA ACA CUU GUC UGU GTT-3′,廣州復(fù)能基因公司);COL-1引物(上游序列5′-CCA GTG TCC ATG TCG CAG A-3′,下游序列5′-TGA GCC AGC AGA TTG AGA AC-3′);兔多克隆抗膠原(Gilbertsville,PA);鼠單克隆抗FliⅠ抗體(CA,USA);ECL Plus Western blot檢測(cè)系統(tǒng)(GE Healthcare公司,美國(guó));SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒);Opti-MEMⅠ減血清培養(yǎng)基、TRIzol試劑(Invitrogen公司,美國(guó))。
1.3 儀器 CP124S電子分析天平(Sartorius);二氧化碳細(xì)胞培養(yǎng)箱(日本Sanyo公司);酶標(biāo)定量測(cè)定儀(Thermo Multiskan AsCant公司);超凈工作臺(tái)(蘇州安泰公司);超聲破碎儀Uibra-cel(SONICS);Image Pro-Plus program(Media Cybernetics Inc,Maryland,USA);PCR凝膠成像系統(tǒng)(美國(guó)Transillmination公司);灰度分析軟件(美國(guó)公立衛(wèi)生研究院);Gene Amp PCR System 9700基因擴(kuò)增儀(Applied Biosystems公司)。
1.4 人瘢痕成纖維細(xì)胞的分離與培養(yǎng) 將標(biāo)本在無(wú)菌培養(yǎng)皿內(nèi)PBS沖洗2~3次,剝離表皮及皮下脂肪組織,保留中間瘢痕組織,在含少量DMEM培養(yǎng)基的玻瓶中將瘢痕剪成1mm2碎塊,加入10mL的0.5%Ⅰ型膠原酶消化,置于37℃孵箱消化3~4h,分離表皮和真皮,以PBS沖洗2~3次,Ⅰ型膠原酶再次消化1h,期間每隔20min吹打1次,1 000r/min離心5min,棄上清,加入含200U/mL雙抗的完全DMEM培養(yǎng)基,吹打使細(xì)胞懸浮,再次1 000r/min離心5min,加入完全培養(yǎng)基使細(xì)胞重懸,使用吸管反復(fù)輕輕吹打2min后,經(jīng)200目篩網(wǎng)過(guò)濾除去大塊組織,將細(xì)胞接種于培養(yǎng)瓶中,37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育,24h后換液,棄去未貼壁細(xì)胞,加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),細(xì)胞覆蓋至瓶底80%即可傳代,選取4~6代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
1.5 FliⅠsiRNA的轉(zhuǎn)染 將細(xì)胞密度調(diào)整為1×105,接種于6孔板中,細(xì)胞鋪板36h后用于轉(zhuǎn)染,在室溫下FliⅠsiRNA(250μL;優(yōu)化,以最終濃度為100nmol/L)與250μL Lipo fectamine 2000在低血清培養(yǎng)基(Invitrogen公司)中溫育20 min,每孔加入4μL Lipofectamine 2000復(fù)合物,混合,孵育6h后換液,以含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)孵育。
1.5.1 WST-1法檢測(cè)細(xì)胞增殖 將實(shí)驗(yàn)分為空白組、Lipo2000組、FLiⅠsiRNA組、FLiⅠcDNA組,取對(duì)數(shù)期的細(xì)胞以1×105/孔接種于96孔板中,置入37℃培養(yǎng)箱中孵育。24 h后按上述實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行處理,每組設(shè)6個(gè)復(fù)孔,細(xì)胞接種后,分別檢測(cè)在0、12、24、48h細(xì)胞增殖情況,37℃培養(yǎng)箱孵育4h后用酶標(biāo)儀測(cè)定吸光度(A)值,測(cè)量波長(zhǎng)450nm,記錄結(jié)果。
1.5.2 RT-PCR檢測(cè)FliⅠ、COL-1mRNA的表達(dá) 以TRIzol法提取成纖維細(xì)胞總RNA,使用SYBR?Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng),以mRNA為模板,Random為引物,1μg RNA逆轉(zhuǎn)錄酶合成cDNA,cDNA連同特異性引物的最終濃度為1×SYBR Green,1×Amplitaq PCR buffer,3mmol/L MgCl2,dNTPs(200μmol/L),引物0.9 μmol(上游和下游),25μL H2O中AmpliTaq Gold DNA聚合酶1.25單位,內(nèi)參NADPH的反應(yīng)體系和條件同上。分別計(jì)算FliⅠ、COL-1與內(nèi)參基因拷貝數(shù)的比值來(lái)反映目的基因的表達(dá)強(qiáng)度。
1.5.3 Westem blot法檢測(cè)FliⅠ、COL-1蛋白的表達(dá) 將收集的細(xì)胞加入50mmol/L裂解液(Tris pH=7.5,1mmol/L EDTA中,50mmol/L NaCl,0.5%Triton-X-100),持續(xù)振搖30 min,離心,將上清轉(zhuǎn)入4℃的離心管,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)上樣50μL,電泳后轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素濾膜,脫脂,根據(jù)分子量分開(kāi)后分別加一抗(FliⅠ、COL-1稀釋比例)及內(nèi)參抗體(β-actin,1∶3 000)室溫孵育2h,HRP標(biāo)記二抗孵育1h后,ECL發(fā)光液發(fā)光后X光片曝光,各步驟之間樣品清洗3次,掃描記錄結(jié)果,Gel-analyze分析軟件分析條帶灰度,進(jìn)行半量比較分析,以目的基因的條帶灰度與內(nèi)參β-actin的灰度比值表示蛋白的表達(dá)水平。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS17.0軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,計(jì)量資料以±s表示,各組間比較采用單因素方差分析,對(duì)于不是正態(tài)分布的數(shù)據(jù),采用Mann-WhitneyU檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 WST-1法檢測(cè)細(xì)胞增殖 轉(zhuǎn)染后48h,各組成纖維細(xì)胞平均A值分別為:空白組0.934±0.153,Lipo2000組0.910±0.084,F(xiàn)liⅠsiRNA組1.330±0.216,F(xiàn)liⅠcDNA組0.607±0.042,F(xiàn)liⅠsiRNA組細(xì)胞增殖水平明顯高于其他3組(P<0.05);FliⅠcDNA組細(xì)胞增殖水平明顯低于其他3組(P<0.05)。見(jiàn)表1。
表1 WST-1法檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞活力(±s,n=6)
表1 WST-1法檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞活力(±s,n=6)
a:P<0.05,與空白組比較;b:P<0.05,與Lipo2000組比較。
組別0.153 Lipo2000組 0.534±0.085 0.589±0.074 0.687±0.089 0.910±0.084 FliⅠsiRNA組 0.493±0.023 0.542±0.038 0.716±0.057 ab 1.330±0.216 ab FliⅠcDNA組 0.479±0.087 0.583±0.114 0.546±0.063 0.607±0.042 0h 12h 24h 48h空白組 0.512±0.104 0.609±0.063 0.699±0.141 0.934±ab
2.2 轉(zhuǎn)染后瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠ、COL-1mRNA的表達(dá)RT-PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,各組內(nèi)參GAPDH mRNA擴(kuò)增條帶亮度強(qiáng)弱差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。以與GAPDH同比例的模板量加入,各組FliⅠmRNA與COL-1mRNA的擴(kuò)增條帶亮度具有明顯差異,與空白組比較,F(xiàn)LiⅠsiRNA組FliⅠmRNA、COL-1mRNA表達(dá)顯著減弱,F(xiàn)LiⅠcDNA組FliⅠmRNA、COL-1mRNA表達(dá)明顯增強(qiáng)。用Image J軟件進(jìn)行灰度分析,以空白組的亮度為基礎(chǔ)標(biāo)準(zhǔn)。結(jié)果顯示,F(xiàn)liⅠsiRNA組的FliⅠ與COL-1擴(kuò)增產(chǎn)物條帶相對(duì)灰度值分別降低至0.194±0.023和0.316±0.176,且均低于其他3組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);而FLiⅠcDNA組的FliⅠ與COL-1擴(kuò)增產(chǎn)物條帶相對(duì)灰度值分別升高至7.846±1.075和9.842±1.659,均高于其他3組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。見(jiàn)表2,圖1。
表2 RT-PCR檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠmRNA、COL-1mRNA的相對(duì)表達(dá)情況(±s)
表2 RT-PCR檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠmRNA、COL-1mRNA的相對(duì)表達(dá)情況(±s)
a:P<0.01,與空白組比較;b:P<0.01,與Lipo2000組比較。
組別 FliⅠ2.931±0.514 4.872±0.937轉(zhuǎn)染Lipo2000組 2.524±0.742 4.167±1.130 FLiI siRNA組 0.194±0.023ab 0.316±0.176ab FLiI cDNA組 7.846±1.075ab 9.842±1.659 COL-1空白組ab
圖1 FliⅠmRNA、COL-1mRNA的表達(dá)
表3 Western blot法檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠ、COL-1蛋白的相對(duì)表達(dá)情況(±s)
表3 Western blot法檢測(cè)瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠ、COL-1蛋白的相對(duì)表達(dá)情況(±s)
a:P<0.05,b:P<0.01,與空白組比較;c:P<0.05,d:P<0.01,與Lipo2000組比較。
組別 FliⅠ0.731±0.043 0.675±0.255轉(zhuǎn)染Lipo2000組 0.694±0.093 0.590±0.124 FLiI siRNA組 0.153±0.075bd 0.216±0.030bd FLiI cDNA組 1.341±0.248ac 1.142±0.391 COL-1空白組ac
圖2 FliⅠ、COL-1蛋白的表達(dá)
2.3 轉(zhuǎn)染后瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠ、COL-1蛋白的表達(dá)Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,與空白組及Lipo2000組比較,F(xiàn)LiⅠsiRNA組的成纖維細(xì)胞中FliⅠ、COL-1蛋白表達(dá)顯著減弱(P<0.05,P<0.01),F(xiàn)LiⅠcDNA組細(xì)胞中FliⅠ、COL-1蛋白表達(dá)顯著增強(qiáng)(P<0.05,P<0.01)。見(jiàn)表3,圖2。
損傷修復(fù)是高度動(dòng)態(tài)的過(guò)程,需要細(xì)胞因子和蛋白質(zhì)之間復(fù)雜的相互作用,肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架的參與是這一過(guò)程至關(guān)重要的部分。瘢痕是創(chuàng)傷愈合領(lǐng)域的常見(jiàn)病、多發(fā)病[3],因其破壞正常皮膚的完整性,影響美觀,并伴瘙癢、疼痛等不適及繼發(fā)攣縮導(dǎo)致表皮器官和關(guān)節(jié)畸形改變,影響功能和生活質(zhì)量,給患者及家屬帶來(lái)嚴(yán)重的心理負(fù)擔(dān)[6]。因此,探索瘢痕的發(fā)病機(jī)制及治療方法具有重要的意義。瘢痕是全層缺損的創(chuàng)面修復(fù)過(guò)程中成纖維細(xì)胞、細(xì)胞外基質(zhì)及細(xì)胞因子等相互調(diào)節(jié)失衡的結(jié)果,其主要表現(xiàn)為是成纖維大量增殖,細(xì)胞外基質(zhì)過(guò)度沉積及細(xì)胞因子分泌失常,膠原超常合成沉積與降解減少[7]。研究表明,F(xiàn)liⅠ是創(chuàng)傷修復(fù)的重要介質(zhì),能抑制成纖維細(xì)胞的增殖和活力,在FliⅠ基因低表達(dá)的雜交小鼠中損傷修復(fù)增強(qiáng),而FliⅠ基因高表達(dá)的小鼠損傷修復(fù)顯著降低[8]。FliⅠ首次被定義為果蠅不規(guī)則的肌動(dòng)蛋白組織和有缺陷的飛行肌的基因突變?cè)斐傻腫9],與人類(lèi)同源的FliⅠ基因有直接關(guān)系[10],此蛋白能大大影響創(chuàng)傷愈合過(guò)程中細(xì)胞的增殖。研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)liⅠ在小鼠體內(nèi)和體外的成纖維細(xì)胞中均有發(fā)現(xiàn),并且在體外能連接斷裂的纖絲狀肌動(dòng)蛋白,因此FliⅠ對(duì)組織修復(fù)的細(xì)胞機(jī)制具有重要的生物學(xué)意義[11]。課題組前期研究表明,創(chuàng)面愈合FliⅠ主要表達(dá)于皮膚真皮成纖維細(xì)胞核中,隨著創(chuàng)面逐漸愈合其表達(dá)開(kāi)始減弱。Ⅰ型膠原蛋白是一種重要的基質(zhì)蛋白,是瘢痕組織中膠原纖維的主要成分,是損傷產(chǎn)生的主要形式,參與組織纖維化和瘢痕的形成,其表達(dá)對(duì)創(chuàng)傷后瘢痕的形成具有重要的影響[12],且FliⅠ對(duì)COL-1的調(diào)控可能具有重要的意義[13]。
正常情況下,傷口內(nèi)的膠原合成與分解呈動(dòng)態(tài)平衡,在某些情況下,這種平衡被打破,導(dǎo)致成纖維、肌纖維母細(xì)胞合成膠原增多,而膠原纖維分解減少,膠原合成速度遠(yuǎn)大于膠原分解,最終導(dǎo)致了膠原沉積,從而形成瘢痕組織[14]。研究證實(shí),F(xiàn)liⅠ涉及細(xì)胞的增殖和遷移,并且過(guò)程中可能通過(guò)其肌動(dòng)蛋白切斷功能產(chǎn)生負(fù)調(diào)節(jié)。本研究將小分子RNA片段和FliⅠ過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到培養(yǎng)的瘢痕成纖維細(xì)胞中,轉(zhuǎn)染后48h,通過(guò)WST-1法檢測(cè)發(fā)現(xiàn)瘢痕成纖維細(xì)胞FliⅠ沉默后,其增殖水平明顯高于其他3組(P<0.05);而FliⅠcDNA組成纖維細(xì)胞增殖水平顯著降低(P<0.05),說(shuō)明FliⅠ缺陷能顯著刺激創(chuàng)傷愈合過(guò)程中瘢痕成纖維細(xì)胞的增殖和活力,而FliⅠ高表達(dá)則能抑制細(xì)胞增殖,推測(cè)FliⅠ的水平在瘢痕的形成過(guò)程中具有重要作用。FliⅠ在瘢痕中的表達(dá)水平低于正常組織中的表達(dá),成纖維細(xì)胞的主要生物學(xué)功能是合成和分泌膠原,皮膚的細(xì)胞外基質(zhì)主要是Ⅰ型和Ⅲ型前膠原,在組織結(jié)構(gòu)支撐中發(fā)揮重要作用,其中Ⅰ型前膠原抗張力性強(qiáng),是創(chuàng)面早期瘢痕愈合的主要膠原類(lèi)物質(zhì),其組織含量高可導(dǎo)致皮膚瘢痕僵硬[4]。本研究利用半定量RT-PCR檢測(cè)病理性瘢痕組織中FliⅠmRNA和COL-1mRNA的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)FLiI siRNA組FliⅠmRNA、COL-1mRNA表達(dá)較其他3組顯著減弱,F(xiàn)LiⅠcDNA組FliⅠmRNA、COL-1mRNA表達(dá)較其他3組增強(qiáng),F(xiàn)liⅠ缺失直接導(dǎo)致FliⅠ、COL-1mRNA及蛋白表達(dá)水平下降,說(shuō)明FliⅠ的高表達(dá)能促進(jìn)COL-1mRNA及蛋白的表達(dá),COL-1酶的合成增加使細(xì)胞外基質(zhì)-膠原的分泌減少,從而抑制病理性瘢痕組織的形成。提示轉(zhuǎn)染的1型膠原基因核酶可抑制成纖維細(xì)胞合成膠原酶,導(dǎo)致瘢痕中膠原含量增加,產(chǎn)生病理性瘢痕組織。
病理性瘢痕組織中FliⅠ表達(dá)極低,低濃度的FliⅠ刺激成纖維細(xì)胞增殖,使成纖維細(xì)胞數(shù)量增加,膠原酶合成減少導(dǎo)致膠原等細(xì)胞外基質(zhì)的分泌增加,細(xì)胞外基質(zhì)沉積也增多,可能是病理性瘢痕形成的機(jī)制之一。因此,采用基因逆轉(zhuǎn)錄的方法得到FliⅠcDNA基因并與質(zhì)?;虿《镜然蜉d體整合,轉(zhuǎn)移至瘢痕成纖維細(xì)胞中,經(jīng)過(guò)篩選、培養(yǎng),得到FliⅠcDNA的克隆株,采用基因治療為臨床治愈瘢痕提供參考。
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