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    系統(tǒng)性念珠菌感染小鼠模型的制備

    2015-02-05 07:31:18吳玉娥李航陳梅玲龔寶勇張鈺黃韌
    關(guān)鍵詞:免疫抑制念珠菌菌液

    吳玉娥,李航,陳梅玲,龔寶勇,張鈺,黃韌*

    (1.廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物監(jiān)測(cè)所,廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣州 510663;2.廣東藥學(xué)院,廣州 510224)

    動(dòng)物模型是研究感染性疾病發(fā)病機(jī)制的主要工具[1,2]。因其可在整體動(dòng)物上模擬病原和宿主(人)間的復(fù)雜作用,并且可以避開倫理問題直接研究病原對(duì)動(dòng)物的組織或因子的作用,動(dòng)物模型具有體外試驗(yàn)不可比擬的優(yōu)勢(shì)。近年來,臨床上侵襲性念珠菌感染的發(fā)病率和死亡率不斷上升,相對(duì)應(yīng)出現(xiàn)了許多真菌感染的動(dòng)物模型研究。根據(jù)不同的研究目的,研究者們通常會(huì)選擇不同的動(dòng)物種類和感染途徑來建立動(dòng)物模型,但目前最為常用的還是靜脈感染小鼠模型[3]。本實(shí)驗(yàn)室長(zhǎng)期進(jìn)行念珠菌感染動(dòng)物模型研究,在系統(tǒng)性念珠菌感染小鼠模型建立上積累了豐富的經(jīng)驗(yàn)。我們的建模方法穩(wěn)定,具可重復(fù)性,已成功應(yīng)用于念珠菌毒力研究及抗真菌藥物篩選[4]。本文主要從菌株制備、靜脈接種、劑量選擇及模型評(píng)價(jià)等方面對(duì)模型建立的每個(gè)關(guān)鍵步驟進(jìn)行細(xì)節(jié)描述,希望為其他科研工作者提供參考和幫助。

    1 材料與方法

    1.1 菌株

    白色念珠菌(C.albicans)SC5314、CaR、CaS、CaDel、CaCoM-A、CaCoM-B 及非白念珠菌(C.parapsilosis),均為中國(guó)科學(xué)院微生物研究所張立新博士饋贈(zèng)。

    1.2 實(shí)驗(yàn)小鼠

    SPF 級(jí)ICR 小鼠,體重22 ~26 g,4 ~6 周齡,購(gòu)于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司【SCXK(滬)2012-0002】。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)在負(fù)壓感染動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行【SYXK(粵)2012-0122】,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)開展經(jīng)廣東省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物監(jiān)測(cè)所動(dòng)物使用和管理委員會(huì)審批。

    1.3 免疫抑制

    環(huán)磷酰胺(江蘇恒瑞制藥廠)腹腔注射,1 次/24 h,共注射3 次,注射劑量為100 mg/kg,第4 天進(jìn)行念珠菌接種。

    1.4 菌株制備

    1.4.1 菌體培養(yǎng)

    (1)從-80℃冰箱取出菌液,解凍。使用滅菌接種環(huán)把解凍后的菌液接種到固體YEPD 平板上,30℃培養(yǎng)26h,觀察菌體有無生長(zhǎng),是否污染。

    (2)確定無污染后,從培養(yǎng)皿上挑選單個(gè)菌落用無菌接種環(huán)接種到液體YEPD[2]中,30℃搖床培養(yǎng)16 h,200 r/min。

    (3)觀察液體YEPD 渾濁度,渾濁為接種成功。

    (4)菌落形態(tài)觀察:取1 滴乳酚甲苯胺藍(lán)染色液加入1 滴菌液,混勻,蓋上蓋玻片,顯微鏡鏡檢。

    1.4.2 分裝保存

    (1)在超凈工作臺(tái)上將接菌成功的液體YEPD倒入已滅菌的45 mL 離心管中,離心(3000 r/min,10 min)。

    (2)丟棄上層液體,加入適量滅菌生理鹽水,吹打混勻,離心(3000 r/min,10 min)。重復(fù)二次。

    (3)丟棄上層液體,加入適量滅菌生理鹽水,吹打混勻。使用20%無菌甘油-生理鹽水配置成一定體積,取100 μL 于包被板中,每個(gè)樣品至少加兩孔。用酶標(biāo)儀測(cè)其A 值,使其A 值達(dá)到0.35 ~0.4[此時(shí)菌液濃度為(3 ~5)×107CFU/mL],分裝置于-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.4.3 接菌前濃度調(diào)整

    于-80℃冰箱內(nèi)取出備用菌液,解凍后置于36℃培養(yǎng)箱中復(fù)蘇1 h,按照預(yù)計(jì)接菌濃度對(duì)菌液進(jìn)行梯度稀釋。例如,預(yù)計(jì)接種濃度為(3.0 ~5.0)×105cells/mL,則將菌液稀釋100 倍。留取1 mL 稀釋后的菌液,用于確定實(shí)際接菌濃度。

    1.4.4 確定實(shí)際菌液濃度

    菌液經(jīng)10 倍梯度稀釋,選擇三個(gè)稀釋度的菌液,分別取0.2 mL 加入固體無菌YEPD 培養(yǎng)基,使用滅菌的玻璃涂棒涂布均勻。30℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)36 h,計(jì)算菌落數(shù)目,菌落數(shù)在30 ~300 之間的稀釋度有效。按下面公式計(jì)算出菌液的含菌數(shù):每毫升原菌液活菌數(shù)=同一稀釋度三個(gè)重復(fù)平皿菌落平均數(shù) × 稀釋倍數(shù) × 5。

    1.4.5 菌株保存穩(wěn)定性測(cè)試

    按照1.4.3 和1.4.4 所述,對(duì)-80℃冰箱保存的菌株(以CaR,CaS,CaDel,CaCoM-A 和CaCoM-B為例)定期取出進(jìn)行穩(wěn)定性測(cè)試。

    1.5 靜脈接種

    采用1 mL 注射器,每只小鼠經(jīng)尾靜脈接種酵母型菌進(jìn)行感染。接種當(dāng)天秤量每只小鼠體重,根據(jù)體重確定每只小鼠的接種劑量,常用接種劑量為0.2 mL 菌液/20 g 小鼠。

    1.6 模型評(píng)價(jià)指標(biāo)

    生存情況:感染動(dòng)物以死亡為評(píng)價(jià)指標(biāo)。接種后,每天觀察小鼠兩次,連續(xù)觀察14 d。當(dāng)發(fā)現(xiàn)下列情況中任何兩項(xiàng)時(shí),安樂死小鼠,以減少對(duì)其的疼痛和應(yīng)激。①弓背、被毛松亂;②體重下降超過起始體重的20%;③體溫降低,觸之冰冷;④活動(dòng)明顯減少;⑤不能進(jìn)食;⑥斜頸或原地打轉(zhuǎn)。在進(jìn)行生存觀察時(shí),將安樂死小鼠死亡時(shí)間記錄到下一天。一般采用生存曲線對(duì)感染小鼠的生存情況進(jìn)行描述,采用Log-rank test 統(tǒng)計(jì)方法對(duì)生存曲線進(jìn)行比較分析,P <0.05 時(shí)認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義[5]。

    靶器官載菌量檢測(cè):在染菌后的第2 天、4 天和6 天,每組至少取3 只小鼠,采集心、肝、脾、肺、腎和腦,稱重后加入1 mL 無菌生理鹽水研磨成勻漿液,進(jìn)行10 倍梯度稀釋,選擇適當(dāng)?shù)南♂対舛?,?.2 mL接種于YPD 固體培養(yǎng)基,30℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)36 h,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。菌落數(shù)在30 ~300 之間的勻漿液稀釋度有效。計(jì)算組織的載菌量log CFU/g。CFU/g=3 個(gè)培養(yǎng)基的CFU 的平均數(shù)×5×勻漿液體積(mL)× 稀釋倍數(shù) ÷ 組織重量(g)

    病理組織學(xué)檢測(cè):取小鼠主要靶器官心、肝、脾、肺、腎和腦,中性福爾馬林溶液固定后,進(jìn)行常規(guī)病理切片,行HE 和PAS 染色。

    2 結(jié)果

    2.1 菌體形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果

    以CP 菌為例,從-80℃冰箱取出的菌種經(jīng)培養(yǎng),鏡檢顯示,CP 菌的形態(tài)處于酵母型,未見假菌絲的出現(xiàn)(圖1)。經(jīng)臺(tái)盼藍(lán)染色鏡檢,顯示90%的菌體為活菌體。

    圖1 C.parapsilosis 形態(tài)觀察(酵母型菌體形態(tài))Fig.1 Morphologic observation of the C.parapsilosis (yeast type)

    2.2 菌株保存穩(wěn)定性測(cè)試結(jié)果

    經(jīng)過7 個(gè)月的測(cè)試,CaR、CaS、CaDel、CaCoM-A和CaCoM-B 5 個(gè)菌株的活菌數(shù)一直保持穩(wěn)定狀態(tài),見圖2 所示。

    圖2 菌株保存穩(wěn)定性測(cè)試結(jié)果Fig.2 Results of strains preservation stability test

    2.3 免疫抑制結(jié)果

    正常小鼠外周血白細(xì)胞總數(shù)約為(7 ~8)×109個(gè)/L,小鼠注射CY 后第1 天開始,外周血白細(xì)胞總數(shù)出現(xiàn)明顯下降趨勢(shì),注射后第4 天降至最低點(diǎn)約1.6 ×109個(gè)/L。第5 天開始小鼠外周血白細(xì)胞總數(shù)開始回升,至注射后第8 ~12 天,基本恢復(fù)到正常水平,見圖1。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,我們選擇免疫抑制后白細(xì)胞計(jì)數(shù)最低點(diǎn)(CY 給藥后第4 天)進(jìn)行念珠菌接種。

    2.4 生存情況

    圖3 小鼠接種CY 后外周血白細(xì)胞總數(shù)變化Fig.3 Total leukocyte counts in the cyclophosphamide-treated mice

    采用生存曲線對(duì)感染小鼠的生存情況進(jìn)行描述和分析。選擇相同接種劑量(1.0 ×105CFU/mL),CaR、CaDel,CaCoM-A 和CaCoM-B 四個(gè)菌株引起小鼠死亡情況相近,中位生存間分別是7、8、7 d 和6 d。采用log-rank test 統(tǒng)計(jì)方法對(duì)生存曲線進(jìn)行比較分析,各組間無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。該結(jié)果說明在相同接種劑量下,4 個(gè)菌株對(duì)小鼠的毒力無差異。見圖4所示。

    圖4 小鼠接種CaR、CaDel、CaCOM-A 和CaCOMB 四個(gè)菌株后的生存情況Fig.4 Survival curves of the mice after inoculation of CaR,CaDel,CaCOM-A and CaCOM-B strain Candida

    2.5 組織載菌量

    在系統(tǒng)性真菌感染小鼠模型,腎臟是真菌感染的主要靶器官。以SC5314 為例,接種劑量為1.0 ×104CFU/mL,小鼠感染后第2 ~4 天組織載菌量達(dá)高峰,以腎臟載菌量最高,可達(dá)到106~108CFU/g,其他臟器如肝臟、腦、脾臟和肺臟等組織載菌量一般在104CFU/g,隨著感染時(shí)間延后,各組織載菌量逐漸下降,見圖5 所示。

    2.6 組織病理變化

    圖5 小鼠接種SC5314 后各臟器組織載菌量變化Fig.5 Dynamic changes of tissue fungal burdens after SC5314 inoculation in the mice

    病理組織學(xué)觀察顯示以腎臟為靶器官,多器官?gòu)浬⑿哉婢腥镜牡湫筒±斫M織學(xué)改變。除腎臟外,心臟、腦、肺、肝和脾亦可見真菌浸潤(rùn)病灶,見圖6 所示。

    3 討論

    念珠菌形態(tài)學(xué)上的雙向性與其毒力密切相關(guān)。在念珠菌彌散性感染小鼠模型建立過程中,菌體形態(tài)是重要的質(zhì)控要素。白色念珠菌和近平滑念珠菌(C.parapsilosis)均屬于雙向型真菌,在不同營(yíng)養(yǎng)因素、化學(xué)因素或其他物理因素的作用下,可以由一種形態(tài)(酵母相)轉(zhuǎn)變成另一種形態(tài)(菌絲相),當(dāng)念珠菌從酵母相轉(zhuǎn)變?yōu)榫z相后,其毒力明顯增強(qiáng)[6]。我們?cè)趯?shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),當(dāng)給予免疫抑制小鼠接種1.0×106個(gè)/mL 菌絲型C.parapsilosis 菌,可造成小鼠48 h 內(nèi)全部死亡;當(dāng)給予免疫抑制小鼠接種相同劑量的酵母型菌,則小鼠全部死亡時(shí)間推遲為8 天。菌絲型菌毒力明顯增強(qiáng),能使動(dòng)物快速死亡,不適合建立動(dòng)物模型。因此,嚴(yán)格進(jìn)行菌體培養(yǎng)條件的質(zhì)控,使注入實(shí)驗(yàn)動(dòng)物體內(nèi)的菌體為處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的酵母型菌,是模型成功的關(guān)鍵。

    真菌感染的發(fā)生是病原體、宿主及環(huán)境間相互作用的結(jié)果,念珠菌侵入人體后是否發(fā)病不僅取決于病原體的數(shù)量、毒力及入侵途徑,也取決于宿主自身的免疫防御能力及各種外界因素的綜合影響。臨床上彌散性念珠菌病患者均處于不同程度的免疫缺陷狀態(tài)[7,8]。因此,為了模擬臨床致病條件,在念珠菌彌散性感染小鼠模型的建立過程中首先要實(shí)現(xiàn)小鼠的免疫抑制。實(shí)驗(yàn)用形成免疫抑制的方法有多種,主要有抗腫瘤藥阿糖胞苷,免疫抑制劑及激素可的松等。我們采用給小鼠注射免疫抑制劑環(huán)磷酰胺(CY),這種免疫抑制方式表現(xiàn)為白細(xì)胞數(shù)量下降,特別是嗜中性粒細(xì)胞的下降,不僅有利于念珠菌入侵感染,還有效地模擬了臨床上較多見的嗜中性粒細(xì)胞下降引起的彌散性真菌病的病例。

    圖6 小鼠接種C.parapsilosis 后組織器官病理改變Fig.6 Histological changes in the organs of mice infected with C.parapsilosis

    菌株制備過程的質(zhì)量控制是影響模型穩(wěn)定性的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。只有保證每批次實(shí)驗(yàn)小鼠接種的菌液濃度一致,才能保證模型的可重復(fù)性。本實(shí)驗(yàn)室采用一次性制備足夠量的菌液,確定一個(gè)較高的菌液濃度(例如5.0 ×107CFU/mL)后進(jìn)行分裝,-80℃冰箱保存?zhèn)溆谩R院竺看螌?shí)驗(yàn)取出1 支菌液,解凍后置于30℃培養(yǎng)箱中復(fù)蘇1 h,按照預(yù)計(jì)接種濃度對(duì)菌液進(jìn)行梯度稀釋。這樣就可以保證每批次開展實(shí)驗(yàn)使用相同濃度的菌液。本保存方法經(jīng)過半年的測(cè)試,保存的活菌數(shù)一直保持穩(wěn)定狀態(tài)。

    靜脈接種亦是影響模型重復(fù)性和穩(wěn)定性的重要因素之一。真菌菌體較大,具有一定的重量,菌液放置一定時(shí)間后,菌體會(huì)自然下落并在容器下方沉積成叢。因此接菌時(shí),每次抽取菌液前都要將菌液搖勻(至少10 s),這樣才能保證每次吸入的菌液濃度一致。通常采用1 mL 注射器,經(jīng)小鼠尾靜脈接種菌液進(jìn)行感染,常用接種劑量為0.2 mL。當(dāng)小鼠體重相差較大時(shí),需要根據(jù)體重確定每只小鼠的接種劑量。靜脈注射前可采用光照或涂擦酒精的方法使小鼠尾部血管擴(kuò)張,以方便進(jìn)針,注射完成后,按壓注射位點(diǎn)約30 s,防止菌液倒流。注射時(shí),如因針頭進(jìn)入位置不當(dāng),偏離血管,則推注時(shí)阻力較大,并且出現(xiàn)注射部位皮膚變白,此時(shí)應(yīng)立即停止注射,拔出針頭,重新調(diào)整注射位置注射,一定要確保菌液完全接種入靜脈。

    系統(tǒng)性念珠菌感染小鼠模型建立過程中,除了需要考慮上述影響因素外,還要考慮感染菌株的致病性。具體實(shí)驗(yàn)中,由于選擇的念珠菌種類不同,毒力不同,注射的菌量也不同。例如同樣是利用念珠菌進(jìn)行毒力研究,選擇白色念珠菌CaR 和近平滑念珠菌CP 分別接種小鼠,要求接種后2 周內(nèi)小鼠死亡率達(dá)90%以上,則兩個(gè)菌株的實(shí)際接種劑量分別為1 ×105CFU/mL 和4.5 ×105CFU/mL,兩者相比較,CP 菌的毒力較低,達(dá)到相同實(shí)驗(yàn)?zāi)康男枰慕臃N劑量要高。而感染菌株為SC5314 時(shí),1 × 105CFU/mL 接菌劑量可使小鼠在接種后5 d 內(nèi)全部死亡。因此,針對(duì)不同菌株我們都需要預(yù)先摸索不同接種劑量對(duì)動(dòng)物的影響,并根據(jù)我們的實(shí)驗(yàn)?zāi)康膩磉x擇合適的接種劑量。

    質(zhì)量控制是決定動(dòng)物模型成功建立的根本所在,忽略任何一個(gè)環(huán)節(jié)都會(huì)影響模型的穩(wěn)定性。本文從免疫抑制、菌株制備、靜脈接種、劑量選擇及模型評(píng)價(jià)等多個(gè)方面對(duì)系統(tǒng)性念珠菌感染小鼠模型建立過程進(jìn)行了逐一描述,指出影響模型質(zhì)量的關(guān)鍵環(huán)節(jié)及質(zhì)控方法。系統(tǒng)性念珠菌感染小鼠模型主要表現(xiàn)以下特點(diǎn):感染動(dòng)物可出現(xiàn)死亡;靜脈接種后短期內(nèi)腎臟、心臟、腦及肺臟等多個(gè)臟器出現(xiàn)載菌量高峰,隨后下降;病理組織學(xué)顯示腎臟為靶器官,多器官?gòu)浬⑿哉婢愿腥镜牡湫筒±斫M織學(xué)改變。該模型可應(yīng)用于系統(tǒng)性念珠菌感染的致病機(jī)理,免疫防御及抗真菌藥物篩選等研究領(lǐng)域。

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