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      籽瓜皮多酚的提取及其抑菌作用研究

      2015-01-11 04:38:34劉忠義劉文平
      天然產物研究與開發(fā) 2015年1期
      關鍵詞:籽瓜瓜皮提取液

      劉忠義,彭 麗,包 浩,譚 操,劉文平

      湘潭大學化工學院食品與生物工程系,湘潭 411105

      籽瓜(Citrullus lanatus ssp.Vulgaris convar.megalaspermus Lin et Chao)系葫蘆科西瓜屬植物,為普通西瓜的栽培變種,原產于非洲,現(xiàn)在我國甘肅等地大量種植,具有較高的營養(yǎng)、保健和經濟價值[1-3]。傳統(tǒng)上,籽瓜常用于取籽,其皮和瓤被大量丟棄,在一定程度上造成了資源的浪費。從自然資源中獲取天然活性成分,已成為當前的研究要點。研究顯示,籽瓜多酚具有一定的抗氧化和抗腫瘤活性,然而籽瓜多酚的其他活性鮮見報道。多酚廣泛分布于植物、水果蔬菜中[4],具有較高的保健和經濟價值,在醫(yī)藥、食品、日用品等行業(yè)[5]都有很高的利用價值。本文以籽瓜皮為原料,通過超聲波輔助提取多酚,并通過高效液相色譜(HPLC)鑒定籽瓜皮多酚提取物的主要成分,通過微生物培養(yǎng)法探討其抑菌作用,旨在為籽瓜皮、囊的深加工利用提供理論依據(jù)。

      1 材料與儀器

      1.1 材料

      籽瓜摘自湘潭籽瓜實驗種植基地,選取成熟無破損的籽瓜,清洗干凈,去除綠衣和瓜瓤,將瓜

      皮打漿粉碎,于-80 ℃超低溫冰箱中保存,使用前置于4 ℃的冰箱中融解備用。大腸桿菌由湘潭大學微生物實驗室保藏提供。

      1.2 藥品與試劑

      BHT、乙醇、Na2CO3、FeSO4等均為分析純;沒食子酸標準品(色譜純,批號:MUST-11122813),成都曼思特生物科技有限公司;福林酚試劑,合肥博美生物科技責任有限公司;氨芐西林,市售。

      1.3 儀器與設備

      Forma-86ULT 型超低溫冰箱(美國Thermo 公司),GL21M 高速冷凍離心機(長沙英泰儀器有限公司),尤尼RE-2000A 型旋轉蒸發(fā)儀(上海雅榮生化設備儀器有限公司),WFZ UV-2802SH 型紫外可見分光光度計(上海柯儀器有限公司),QTR3120 型超聲波清洗機(天津市瑞普電子儀器公司),XW-80A微型旋渦混合器(上海碩光電子科技有限公司),BHC-1300ⅡA2 生物安全柜[阿爾泰實驗室設備(北京)有限公司]。

      2 實驗方法

      2.1 多酚的測定

      多酚的測定采用Folin-Ciocalteu 比色法,以沒食子酸作為標準物,參照文獻[6]所介紹的方法,適當改動。分別準確量取0.1 mg/mL 沒食子酸標準溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL 于10 mL 比色管中,各加6 mL 水,混合均勻,加入0.5 mL 福林酚試劑,搖勻。3 min 之后,加入200 g/mL 碳酸鈉溶液1.0 mL,超純水定容。30 ℃水浴條件下反應30 min,于740 nm 波長下測定吸光度,所有樣品平行操作三次,建立標準曲線。

      2.2 超聲波輔助提取條件確定

      按不同的料液比,準確稱取一定量的籽瓜皮漿于燒瓶中,加入不同體積分數(shù)的乙醇,將燒瓶放入超聲波機中,在不同的溫度下提取不同的時間。每次提取后,收集提取液,抽濾,濃縮,按照2.1 所述方法測定其多酚含量。多酚得率按下式計算:

      W=m/M

      其中,W:多酚提取率,mg/g;M:樣品質量,g;m:籽瓜皮多酚含量,mg。

      在單因素實驗的基礎上,設計L9(34)正交實驗,考察提取時間、乙醇濃度、提取溫度、料液比對樣品中多酚提取率的影響,優(yōu)化出超聲波輔助提取多酚的最佳工藝參數(shù)。L9(34)正交實驗因素與水平設計見表1。

      表1 L9(34)正交因素與水平Table 1 Factors and levels of the orthogonal test

      2.3 籽瓜皮多酚主要成分測定

      稱取10 mg 沒食子酸標準品,溶于100 mL 容量瓶中,得0.1 mg/mL 沒食子酸標準液,以此標準液配制不同濃度的沒食子酸系列標準液,經液相色譜得到沒食子酸液相色譜圖。籽瓜皮多酚提取物,經離子沉淀法純化及與提取液等體積的乙酸乙酯萃取三次之后,濃縮至1 mL。經0.45 μm 微孔濾膜過濾后進色譜柱,根據(jù)保留時間定性,外標法定量,進行籽瓜皮多酚主要成分分析。色譜柱Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30 ℃;流速:1.0 mL/min;進樣量:20 μL;檢測器:spd-m20a 光電二極管陣列檢測器;檢測波長:280 nm。流動相:乙腈(A),質量分數(shù)0.4%甲酸溶液(B);梯度洗脫程序:0~5 min,25%A;5.01~10.00 min,80%A;10.01~15.00 min,10%A,15.01~25.00 min,25%A。

      2.4 籽瓜皮多酚的抑菌實驗

      籽瓜多酚的大腸桿菌抑菌實驗參照文獻[7]完成。采用牛肉膏蛋白胨固體培養(yǎng)基。吸取0.1 mL預先培養(yǎng)并制好的菌懸液,加入到約15 mL 未凝固已滅菌的培養(yǎng)基中,震蕩混合均勻,倒入插有牛津杯的培養(yǎng)皿,培養(yǎng)基凝固后,于牛津杯中加入0.2 mL 0.4 mg/mL 的經過乙酸乙酯萃取的籽瓜皮多酚提取液,然后入恒溫箱37 ℃培養(yǎng)48 h。2 mg/mL 氨芐西林做陽性對照,0.9%生理鹽水做陰性對照。

      2.5 籽瓜皮多酚最低抑菌濃度測定

      采用牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基。在無菌條件下,取無菌試管10 支(15×100 mm),每管加入液體培養(yǎng)基2 mL,在第1 管加入0.4 mg/mL 籽瓜皮多酚提取液2 mL,連續(xù)倍比稀釋至第8 管,并從第8 管中吸取2 mL 棄去,第9 管為細菌生長對照,第10 管為藥物對照。在每管內加入制備好的菌懸液0.1 mL。接種完畢后,置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h。肉眼觀察,不發(fā)生混濁變化的最高提取物稀釋倍數(shù)即為該提取物的最低抑菌濃度。

      2.6 數(shù)據(jù)處理

      所有試驗均采用三次平行試驗的平均值,圖用Origin(Pro)7.5 繪制,數(shù)據(jù)間差異用SPSS13.0 進行方差分析和多重比較,結果以平均值±標準偏差表示。

      3 結果與分析

      3.1 多酚標準曲線

      按1.3.1 所述方法,進行測定,利用Origin7.5分析得標準曲線回歸方程為:A=0.01794+91.18452C,R=0.99946。式中:A 為吸光度,C 為濃度,mg/mL。

      3.2 不同提取條件對多酚提取率的影響

      選用70 mL/100 mL 的乙醇,料液比1∶5,在40℃溫度下超聲波輔助提取,探討不同提取時間對提取率的影響。實驗結果見圖1A。由圖1A 看出:隨著提取時間的增加,多酚提取率增加;然而,提取時間達到40 min 之后,隨著提取時間增加多酚的提取率反而降低。這和橄欖[8]、西蘭花[9]和板栗總苞[10]等多酚提取時所得結果一致。由于酚羥基易被氧化,超過一定提取時間,其某些活性被破壞[11],故提取時間對多酚提取率的影響存在閾值。

      圖1 提取時間(A)、乙醇濃度(B)、提取溫度(C)和料液比(D)對多酚提取率的影響Fig.1 Effect of extraction time(A),ethanol concentration(B),extraction temperature(C)and ratio of solid to liquid(D)on yield of polyphenols

      選用料液比1∶5,溫度40 ℃,提取時間40 min,超聲波輔助提取,研究不同乙醇濃度對提率的影響。由圖1B 看出:隨著乙醇濃度的增大,多酚提取率增加;當乙醇濃度超過70 mL/100 mL 之后,多酚的提取率隨乙醇體積濃度增加反而降低。此結果與桑葉多酚的提取實驗結果基本一致[12],與橄欖[8]、西蘭花[9]和板栗總苞[10]等多酚提取時所呈現(xiàn)的趨勢相同,但最佳乙醇濃度有一定差別。這表明醇濃度對多酚的提取率存在影響,且很可能是由于70 mL/100 mL 的乙醇與籽瓜多酚的極性相近,因而籽瓜多酚在70 mL/100 mL 的乙醇中溶解度較高[13]。

      選用料液比1∶5,乙醇濃度70 mL/100 mL,提取時間40 min,超聲波輔助提取,探討不同提取溫度對提率的影響。實驗結果見圖1C。由圖1C 看出:隨著提取溫度數(shù)的增大,多酚提取率增加;當提取溫度超過60 ℃之后,多酚的提取率隨溫度增加而降低。究其原因可能是由于多酚不穩(wěn)定,溫度高時多酚物質分解[14]。由圖1C 還可知,提取溫度對多酚提取率的影響存在閾值,甘薯渣中多酚[14]、西蘭花多酚[9]、板栗總苞多酚[10]提取時最佳溫度分別為80、50、65 ℃。溫度對多酚的提取存在一定影響,但對不同的原料,其多酚種類和含量及其存在狀態(tài)存在差別,故溫度的影響不同,導致最佳提取溫度差別較大。

      選用乙醇濃度70 mL/100 mL,溫度60 ℃,提取時間40 min,超聲波輔助提取,探索不同料液比對提取率的影響。實驗結果見圖1D。由圖1D 看出:隨著料液比的增大,多酚提取率增加;當料液比超過1∶10 之后,多酚的提取率隨料液比增加反而降低。一方面由于水的用量過少,有效成分不能很好的溶出,而另一方面水的用量過多,雜質成分含量增多,使多酚相對含量減少[12]。由圖可知,料液比對多酚提取率的影響存在閾值,這一結果與西蘭花多酚[9]、板栗總苞多酚[10]、生姜多酚[14]提取時所得結果相同。但對于不同的原料,最佳的料液比不同,這可能與原料的結構、組成以及含水量有關。

      3.3 多酚提取條件的優(yōu)化

      正交實驗結果見表2。由表2 直觀觀察,2 號實驗即提取時間為35 min,乙醇濃度為70 mL/100 mL,提取溫度為60 ℃,料液比為1∶10 時,多酚的提取率最高。而根據(jù)K 值分析得出最優(yōu)因素水平組合為A1B2C2D1,即提取時間為35 min,乙醇濃度為70 mL/100 mL,提取溫度為60 ℃,料液比為1∶12。通過極差分析,可以看出料液比對多酚提取率的影響最大、時間次之,溫度的影響較小,乙醇濃度影響最小。最優(yōu)因素水平組合未直接出現(xiàn)在正交表中,故需對最優(yōu)條件進行實驗驗證。

      取正交表中2 號實驗的工藝條件和最佳組合工藝條件進行實驗,每組實驗平行3 次,取平均值。2號實驗的提取率為33.21±0.89 mg/g,最佳組合的提取率為38.37±1.02 mg/g。結果表明,優(yōu)化的因素水平組合A1B2C2D1的提取效果優(yōu)于2 號實驗的因素水平組合。

      表2 正交實驗結果Table 2 Results of the orthogonal test

      3.4 籽瓜皮多酚主要成分

      經測定,HPLC 能夠較好地檢測沒食子酸(見圖2A),其標準曲線為y=-72522.8+56624.2x,R=0.99674,P<0.0001,線性關系良好,能夠用于定量分析。且該方法回收率為95.21%,標準偏差為0.55%,說明該方法準確可靠。圖2B 表明,雖然樣品峰有明顯拖尾及尾部凸出,仍然可以確定籽瓜皮多酚的主要成分是沒食子酸。沒食子酸是植物多酚的重要組成成分之一[6,15],具有優(yōu)越的抗氧化功能及諸多功能性質。

      3.5 籽瓜皮多酚的抑菌效果

      籽瓜皮多酚的抑菌實驗結果見圖3。結果表明,在接種大腸桿菌菌懸液的培養(yǎng)皿的滴加籽瓜皮多酚提取液的牛津杯周圍形成明顯的抑菌圈(圖3A),而陰性對照滴加生理鹽水的牛津杯周圍沒有抑菌圈產生(圖3C),這表明籽瓜皮多酚提取物具備抑制大腸桿菌生長的作用。經測定,0.4 mg/mL 籽瓜皮多酚提取液形成的抑菌圈大小約為12.6±0.3 mm,低于2 mg/mL 氨芐西林溶液產生的36.5±0.4 mm 的抑菌圈(圖3B)。這說明籽瓜皮多酚提取液具有明顯的抑菌效果。由于籽瓜皮多酚提取物的主要成分為沒食子酸,故很容易理解籽瓜皮多酚的抑菌作用。

      圖2 沒食子酸標準品(A)及籽瓜皮多酚提取物(B)的液相色譜圖Fig.2 HPLC chromatograms of gallic acid standard(A)and polyphenol extract of seed watermelon peel(B)

      圖3 籽瓜多酚(A)、氨芐西林(B)及生理鹽水(C)的抑菌效果Fig.3 Anti-bacterial effect of polyphenol extracts of seed watermelon peel(A),ampicillin(B)and normal saline(C)

      3.6 籽瓜皮多酚的最低抑菌濃度

      籽瓜皮多酚的最低抑菌濃度實驗結果見表3。由表3 可知,當籽瓜皮多酚濃度大于0.1 mg/mL,由于受到籽瓜皮多酚的抑制,大腸桿菌不能良好生長,故試管中培養(yǎng)基不出現(xiàn)渾濁現(xiàn)象,當籽瓜皮多酚濃度稀釋至0.05 mg/mL 時,大腸桿菌表現(xiàn)出微弱的生長態(tài)勢,故試管中培養(yǎng)基略微出現(xiàn)渾濁現(xiàn)象,當籽瓜皮多酚濃度繼續(xù)稀釋至0.0125 mg/mL 及以下時,大腸桿菌受到的抑菌程度很微弱,試管中培養(yǎng)基明顯出現(xiàn)渾濁現(xiàn)象。由實驗結果初步推斷籽瓜皮多酚的最低抑菌濃度為0.05 mg/mL。

      表3 籽瓜皮多酚提取液的最低抑菌濃度(n=3)Table 3 Minimal inhibitory concentration of polyphenol extract of seed watermelon peel(n=3)

      4 討論與結論

      超聲波由于誘導空化作用而有助于低溫下提取植物中的有效成分,故超聲波輔助提取在食品相關領域中得到比較廣泛的應用[16]。超聲波輔助提取籽瓜皮多酚有比較好的效果,經過試驗得到籽瓜皮多酚的最佳提取條件為提取時間為40 min,乙醇濃度為70 mL/100 mL,提取溫度為60 ℃,料液比為1∶12。

      籽瓜皮多酚提取液的主要成分為沒食子酸,這對進一步研究并理解籽瓜多酚提取液的抗氧化、抗菌等功能性質及其構效關系具有重要的意義。單寧類物質包括單寧(即沒食子酸)、縮合單寧及復合單寧是很多植物中多酚類物質的主要成分[6,15]。沒食子酸具有多個酚羥基,這是其具有優(yōu)異抗氧化功能的結構基礎。

      籽瓜皮多酚對大腸桿菌具有明顯抑制作用,其最低抑菌濃度經初步測定為0.05 mg/mL。大腸桿菌是食品中必須檢測的微生物指標,是食品衛(wèi)生的重要指標之一。大腸桿菌經常被用做抑菌研究實驗對象[7]。目前,國內外對天然植物源性防腐劑研究異?;钴S,本研究顯示籽瓜皮多酚有望發(fā)展成為一種天然防腐劑。

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