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    黃嘌呤氧化酶酶學(xué)性質(zhì)及共價交聯(lián)固定化

    2014-12-25 02:27:38張玉然楊海麟
    關(guān)鍵詞:黃嘌呤瓊脂糖氧化酶

    張玉然, 辛 瑜, 楊海麟, 張 玲, 王 武

    (江南大學(xué) 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122)

    黃嘌呤氧化酶(xanthine oxidase,XOD),屬黃素蛋白酶類,可將次黃嘌呤氧化為黃嘌呤,繼續(xù)氧化黃嘌呤為尿酸,并產(chǎn)生過氧化氫及超氧化物[1],是嘌呤代謝的關(guān)建酶??捎糜跈z測血清無機(jī)磷、血清超氧化物岐化酶活力及胞外黃嘌呤、次黃嘌呤水平[2-4]。在核苷類藥物的合成中起到促進(jìn)轉(zhuǎn)化的作用,可用于提高5-甲基尿苷、胸腺嘧啶核苷的合成產(chǎn)量[5-6]。

    不同生物來源的黃嘌呤氧化酶酶學(xué)性質(zhì)具有差異性。來源于細(xì)菌的黃嘌呤氧化酶國內(nèi)外研究較少,已報(bào)道黃嘌呤氧化酶的相對分子質(zhì)量及亞基組成差異較大[7-9],蛋白結(jié)構(gòu)組成的差異將導(dǎo)致酶催化性能及穩(wěn)定性的不同。

    黃嘌呤氧化酶作為一種重要的氧化酶,其在醫(yī)學(xué)診斷及工業(yè)催化中有應(yīng)用前景,酶較差的穩(wěn)定性影響其直接應(yīng)用。已報(bào)道的提高酶穩(wěn)定性的方法主要有添加保護(hù)劑、蛋白質(zhì)工程、固定化方法等。其中,固定化方法因具有可連續(xù)反應(yīng)性、可重復(fù)利用性等優(yōu)點(diǎn),備受關(guān)注??墒褂玫墓潭ɑd體主要有聚丙烯酰胺[10]、殼聚糖[11-12]、醋酸纖維素薄膜[13]、樹脂[14]等。國內(nèi)外關(guān)于黃嘌呤氧化酶穩(wěn)定性研究,主要集中于改進(jìn)溶液環(huán)境提高酶熱穩(wěn)定性[15-16],對其固定化研究相對較少。

    前期經(jīng)SDS-PAGE電泳分析知,節(jié)桿菌Arthrobacter M3黃嘌呤氧化酶含兩個亞基,相對分子質(zhì)量約為100 000及35 000[17],與已報(bào)道的黃嘌呤氧化酶均不相同。在此基礎(chǔ)上,作者對此黃嘌呤氧化酶的酶學(xué)性質(zhì)進(jìn)一步分析,并利用修飾的瓊脂糖介質(zhì)及大孔陰離子交換樹脂固定化黃嘌呤氧化酶。提供有效增強(qiáng)黃嘌呤氧化酶穩(wěn)定性的固定化方法,也為其它酶類的穩(wěn)定性研究提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 菌種來源

    Arthrobacter M3:作者所在實(shí)驗(yàn)室保藏菌種。

    1.2 主要材料

    黃嘌呤氧化酶標(biāo)準(zhǔn)品(相對分子質(zhì)量160 000):近岸蛋白質(zhì)科技有限公司提供;大孔陰離子交換樹脂 (D201、201×4), 浙江爭光實(shí)業(yè)股份有限公司提供;Sepharose 4B:通用電氣醫(yī)療中國有限公司提供;乙基二甲基胺丙基碳化二亞胺(EDC):梯希愛(上海)化成工業(yè)發(fā)展有限公司提供。

    1.3 主要儀器

    V1100D可見分光光度計(jì):美譜達(dá)儀器有限公司產(chǎn)品;電熱恒溫水浴鍋:科輝儀器廠產(chǎn)品;蛋白電泳儀:美國BIO-RAD公司產(chǎn)品;pH計(jì)(PB-10型):德國賽多利斯股份有限公司產(chǎn)品。

    1.4 培養(yǎng)及純化方法

    從固體平板挑取單菌落,接入種子培養(yǎng)液,30℃恒溫振蕩培養(yǎng)12 h。后將種子培養(yǎng)液按體積分?jǐn)?shù)3%接種量接入60 mL (500 mL錐形瓶)發(fā)酵培養(yǎng)基,30℃、220 r/min培養(yǎng)20 h。菌液破壁離心后,取上清酶液進(jìn)行純化,參考文獻(xiàn)[17]。純化后酶液經(jīng)0.22 μm濾膜過濾,置于4℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 XOD酶活測定方法

    黃嘌呤氧化酶酶活測定方法詳見參考文獻(xiàn)[18]。酶活力單位定義:在37℃下,每分鐘形成1 μmol過氧化氫所需的酶量定義為1個酶活單位(U)。

    1.6 XOD酶學(xué)性質(zhì)分析

    1.6.1 凝膠過濾確定XOD相對分子質(zhì)量 以商業(yè)化的黃嘌呤氧化酶(相對分子質(zhì)量160 000)標(biāo)準(zhǔn)品為對照,利用安捷倫 SEC-5(7.5 mm×300 mm,5 μm)凝膠過濾柱測定XOD相對分子質(zhì)量。測定條件:流動相 0.1 mol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.0),流量 0.5 mL/min,進(jìn)樣量 40 μL,檢測波長 280 nm。

    1.6.2 酶的最適反應(yīng)溫度及最適反應(yīng)pH 取一定濃度的稀釋酶液,于25~52℃水浴條件下進(jìn)行酶活力測定,以活力最高者為100%,計(jì)算不同溫度下相對酶活。另取一定濃度的稀釋酶液,于37℃、不同pH條件下(5.5~9.0)進(jìn)行酶活力測定,以活力最高者為100%,計(jì)算不同pH條件下相對酶活。

    1.6.3 金屬離子對酶活的影響 在pH 7.5酶液中加入不同金屬離子 (Ca2+、Mg2+、Fe3+、Co2+、Mn2+、Zn2+、Cu2+、Ag+、Hg2+),至終濃度為 2 mmol/L,混勻,測定各組酶活,以未加金屬離子的酶液酶活為100%,計(jì)算各組相對酶活。

    1.7 XOD固定化方法比較

    1.7.1 大孔陰離子交換樹脂固定化 分別稱取已預(yù)處理的201×4陰離子交換樹脂及D201大孔陰離子交換樹脂各1.0 g于10 mL離心管中,加入pH 7.5的酶液6 mL,4℃、100 r/min下振蕩固定化2 h?;旌衔? 000 g離心5 min,測定上清酶活。后用20 mmol/L磷酸鹽緩沖液洗滌至無酶析出,測定洗滌液酶活性及固定化酶活力,計(jì)算固定化酶載量及酶活回收率。

    將固定化的黃嘌呤氧化酶,置于50℃恒溫水浴,2 h后測定酶活力,各組以未加熱處理的固定化酶酶活為100%,計(jì)算各組固定化酶的相對酶活。

    1.7.2 瓊脂糖介質(zhì)的修飾及其固定化 參考文獻(xiàn)方法[19],分別先將間隔臂甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸交聯(lián)于預(yù)處理的瓊脂糖介質(zhì)上,3種修飾后的介質(zhì)分別命名為瓊脂糖-甘氨酸介質(zhì) (Sepharose-Gly)、瓊脂糖-谷氨酸介質(zhì)(Sepharose-Glu)、瓊脂糖-天冬氨酸介質(zhì)(Sepharose-Asp)。稱取不同的羧基載體各1.0 g于10 mL離心管中,添加酶液,調(diào)節(jié)pH至6.5,加入EDC共價交聯(lián)固定化黃嘌呤氧化酶,4℃振蕩固定15 h,混合物8 000 g離心5 min,測定上清酶活。后用0.6 mol/L氯化鈉洗脫非共價交聯(lián)的酶,至洗脫液無酶析出,再用20 mmol/L磷酸鹽緩沖液洗滌,測定洗脫液、洗滌液酶活性及固定化酶活力,計(jì)算固定化酶載量及酶活回收率。

    將各修飾的瓊脂糖固定化酶置于50℃恒溫水浴,2 h后測定酶活力,各組以未加熱處理的固定化酶酶活為100%,計(jì)算各組固定化酶的相對酶活。

    1.8 固定化化酶與游離酶熱穩(wěn)定性的比較

    1.8.1 不同溫度下固定化酶與游離酶熱穩(wěn)定性比較 將游離酶與固定化酶置于20 mmol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.5)中,不同溫度下(25、35、45、55、65、75℃)保溫1 h,冷卻至4℃,測定各組酶活。以各組未做處理酶的酶活為100%,計(jì)算相對酶活。

    1.8.2 固定化酶與游離酶最適穩(wěn)定pH的比較 將酶液于不同 pH 條件下(5.5~8.5),50 ℃保溫 1 h,冷卻至4℃,測定各組酶活,各組以0 h時酶活為100%,計(jì)算相對酶活。

    1.8.3 固定化酶與游離酶存儲穩(wěn)定性的比較 將固定化酶與游離酶置于20 mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH 7.5)中,置于50℃恒溫水浴,定時取樣,冷卻至4℃,測定固定化酶與游離酶酶活力,各組以0 h時酶酶活為100%,計(jì)算各組不同時間處相對酶活。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 XOD酶學(xué)性質(zhì)分析

    2.1.1 XOD相對分子量的確定 由前期研究SDSPAGE電泳測得,菌種Arthrobacter M3產(chǎn)的黃嘌呤氧化酶含兩個亞基,相對分子質(zhì)量分別約為100 000及35 000[17]。由圖1凝膠過濾圖譜知,黃嘌呤氧化酶標(biāo)準(zhǔn)品(相對分子質(zhì)量160 000)凝膠過濾出峰時間為11.64 min,Arthrobacter M3黃嘌呤氧化酶出峰時間則為11.98 min,即比黃嘌呤氧化酶標(biāo)準(zhǔn)品相對分子質(zhì)量略小。綜合判定,節(jié)桿菌Arthrobacter M3黃嘌呤氧化酶為相對分子質(zhì)量約135 000的異質(zhì)二聚體蛋白。

    圖1 XOD標(biāo)準(zhǔn)品與來自Arthrobacter M3的XOD凝膠過濾圖譜Fig.1 Elution profile of standards and the XOD from Arthrobacter M3 by size -exclusion chromatography

    2.1.2 XOD的最適反應(yīng)溫度及最適反應(yīng) pH溫度是影響酶反應(yīng)效率的重要因素之一,一定范圍內(nèi)提高反應(yīng)溫度可加快反應(yīng)速率。在25~52℃范圍內(nèi)進(jìn)行酶活力測定,結(jié)果見圖2。由圖2可知,37℃時測得XOD酶活力最高。

    在不同pH值下進(jìn)行酶酶活力測定,結(jié)果見圖3。該酶最適反應(yīng)pH為7.5,溶液pH<5.5或pH>9.0時對酶活力測定影響較大。

    2.1.3 金屬離子對酶活的影響 如表1所示,不同金屬離子對XOD酶活影響具有差異性。Mn2+對XOD活性具有激活作用,相對酶活提高35.6%,Co2+及Zn2+對XOD酶活具有一定抑制作用,相對酶活分別降低 21.1%和 67.8%,Cu2+、Ag+、Hg2+對 XOD 酶活具有致死作用,這可能是由于3種金屬離子作用于蛋白巰基,導(dǎo)致XOD變性失活。

    圖2 溫度對XOD酶活力測定的影響Fig.2 Effect of temperature on the activity of XOD

    圖3 pH對XOD酶活力測定的影響Fig.3 Effect of pH on the activity of XOD

    表1 不同金屬離子對XOD活性的影響Table 1 Effect of various metal ions on the activity of XOD

    2.2 XOD固定化方法比較

    由表2可知,黃嘌呤氧化酶經(jīng)不同方法固定化后,其熱穩(wěn)定性均不同程度的提高。

    大孔陰離子交換樹脂固定化,D201樹脂的固定化效率優(yōu)于201×4樹脂,這可能是由于D201樹脂為大孔陰離子交換樹脂,相比于普通201×4樹脂,其顆粒內(nèi)縫隙孔徑較大,有利于蛋白及底物的進(jìn)出。

    修飾的瓊脂糖介質(zhì)固定化,3種固定化酶中,瓊脂糖-谷氨酸介質(zhì)固定化酶,酶活回收率及熱穩(wěn)定性最佳,固定化酶載量稍低于瓊脂糖-甘氨酸介質(zhì)固定化的酶。這可能是由于,谷氨酸含有兩個游離羧基,瓊脂糖-谷氨酸介質(zhì)可多點(diǎn)交聯(lián)XOD,使固定化酶更加牢固,穩(wěn)定性增加,這同時也可能引起底物進(jìn)入酶催化中心受阻,使得固定化酶表觀酶活力(載量)下降。

    綜合比較,修飾的瓊脂糖介質(zhì)固定效果化優(yōu)于大孔陰離子交換樹脂,D201及201×4為含苯乙烯-二乙烯苯骨架的離子交換樹脂,對XOD的固定化作用主要靠離子鍵及疏水相互作用。而修飾的瓊脂糖介質(zhì)靠共價交聯(lián)的方法固定XOD,結(jié)合作用力強(qiáng)于D201及201×4樹脂,這可能致使其固定化效果優(yōu)于D201及201×4樹脂。

    表2 不同載體對XOD固定化的影響Table 2 Effect of different supports on immobilization of XOD

    2.3 固定化酶與游離酶熱穩(wěn)定性的比較

    2.3.1 固定化酶與游離酶不同溫度下熱穩(wěn)定性比較 由上述固定化結(jié)果可知,瓊脂糖-谷氨酸介質(zhì)固定化效率最佳,因此對其與游離酶的熱穩(wěn)定性性能進(jìn)行比較。由圖4可知,不同溫度下保溫1 h,固定化的黃嘌呤氧化酶熱穩(wěn)定均優(yōu)于游離酶。75℃保溫1 h,游離酶已幾乎無酶活,瓊脂糖-谷氨酸固定化酶仍剩余22.1%。

    2.3.2 固定化酶與游離酶最適穩(wěn)定pH分析 由圖5可知,在 pH 5.5~8.5范圍內(nèi),50℃保溫 1 h,瓊脂糖-谷氨酸固定化酶剩余的相對酶活均高于45%,而游離酶在較低酸堿條件下加熱處理,酶活損失較大。pH 8.5下剩余的相對酶活僅為2.1%。由此可知,瓊脂糖-谷氨酸固定化酶比游離酶具有更強(qiáng)的酸堿抵抗能力。

    圖4 不同溫度下游離酶與固定化酶熱穩(wěn)定性比較Fig.4 Comparison of the stability between free and immobilized xanthineoxidaseunderdifferent temperatures

    圖5 游離酶與固定化酶的pH穩(wěn)定性Fig.5 pH stability of free and immobilized xanthine oxidase

    2.3.3 固定化酶與游離酶存儲穩(wěn)定性的比較 將瓊脂糖-谷氨酸固定化酶與游離酶置于50℃保溫,二者相對酶活隨時間變化曲線見圖6。由圖可知,游離酶放置3 h后,相對酶活僅剩余8.0%,而瓊脂糖-谷氨酸固定化酶仍剩余48.3%,半衰期由游離酶的0.84 h延長至固定化酶的2.2 h,提高了1.6倍。

    圖6 固定化酶與游離酶存儲穩(wěn)定性Fig.6 Storage stability of free and immobilized xanthine oxidase

    3 結(jié)語

    節(jié)桿菌Arthrobacter M3黃嘌呤氧化酶為含兩個不同亞基的異質(zhì)二聚體,相對分子質(zhì)量為135 000,與所報(bào)道文獻(xiàn)中均不同,其最適反應(yīng)溫度為37℃,最反應(yīng)pH為7.5。采用修飾的瓊脂糖介質(zhì)及大孔陰離子交換樹脂對黃嘌呤氧化酶進(jìn)行固定化,發(fā)現(xiàn)以修飾的瓊脂糖介質(zhì)固定化的酶熱穩(wěn)定性較好,其中以瓊脂糖-谷氨酸固定化的酶性能最佳,50℃下半衰期提高了1.6倍,有效提高了黃嘌呤氧化酶穩(wěn)定性,為其在醫(yī)學(xué)診斷及工業(yè)催化中的穩(wěn)定應(yīng)用奠定基礎(chǔ),后期將進(jìn)一步探索改造黃嘌呤氧化酶穩(wěn)定性的方法。

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