王瑜,于瑞雪,胡思博
糖尿病是胰島素分泌障礙和(或)作用障礙引起的慢性代謝性疾病,糖尿病心、腦、腎臟并發(fā)癥成為導(dǎo)致糖尿病人死亡的主要原因[1]。近年來研究證實,氧化應(yīng)激可引起心肌細(xì)胞凋亡、壞死,進(jìn)而導(dǎo)致糖尿病心肌病[2]。運(yùn)動療法是治療糖尿病安全、有效、簡便的方式,在臨床中得到廣泛應(yīng)用[3]。
有氧運(yùn)動可提高組織對葡萄糖的利用,增強(qiáng)胰島素敏感性,降低血糖[4];同時運(yùn)動中產(chǎn)生的氧自由基可阻斷胰島素作用通路[5]。本研究通過高脂飲食飼喂聯(lián)合腹腔注射鏈脲佐菌素的方法建立糖尿病大鼠模型,探討不同強(qiáng)度有氧運(yùn)動對糖尿病大鼠的血糖以及心肌組織氧自由基的影響,為運(yùn)動療法在臨床實踐與應(yīng)用提供理論依據(jù)。
1.1動物建模型建立與分組雄性健康成年SD大鼠,6周齡,體重(200±10)g,購于天津放射醫(yī)學(xué)研究所。65只大鼠以基礎(chǔ)飼料預(yù)飼1周。抽簽法隨機(jī)抽取10只為正常組(A組),普通飼料喂養(yǎng)。剩余55只大鼠,給予高脂飼料(普通飼料66.5%、白砂糖20%、豬油10%、膽固醇2.5%、膽酸鈉1%)喂養(yǎng)4周后,空腹12小時,一次性腹腔注射STZ40 mg/kg(溶于1 mmol/L,pH4.4枸櫞酸緩沖液)。A組注射等體積檸檬酸緩沖液。72小時后尾靜脈采血測空腹血糖??崭寡恰?.0 mmol/L為造模成功[6]。選取糖尿病模型成功的大鼠,隨機(jī)分為四組,模型組(B組)、低強(qiáng)度運(yùn)動組(C組)、中強(qiáng)度運(yùn)動組(D組)、高強(qiáng)度運(yùn)動組(E組),每組10只。參考Fernando[7]方法采用跑臺運(yùn)動,適應(yīng)性訓(xùn)練3天,休息1天后正式訓(xùn)練。訓(xùn)練強(qiáng)度:低、中、高強(qiáng)度組跑速分別為10 m/min(相當(dāng)于30%VO2MAX)、15 m/min(相當(dāng)于50%VO2MAX)、20 m/min(相當(dāng)于70%VO2MAX),坡度均為0,每天運(yùn)動1小時,每周6天,連續(xù)6周。
1.2主要藥品和儀器鏈脲佐菌素(STZ,美國sigma公司);Western及IP細(xì)胞裂解液(碧云天生物技術(shù)研究所);大鼠血清胰島素ELISA檢測試劑盒(深圳晶美生物工程有限公司),超氧化物歧化酶(SOD)檢測試劑盒、丙二醛(MDA)檢測試劑盒、一氧化氮(NO)檢測試劑盒、總一氧化氮合酶(NOS)測試盒(南京建成生物工程研究所)。血糖儀(美國羅氏公司),血糖試紙(羅氏羅康全優(yōu)越型血糖試紙),紫外分光光度計(上海精密儀器有限公司)。
1.3觀測指標(biāo)和方法
1.3.1血清學(xué)檢測各組大鼠分別在造模前、注射后、運(yùn)動前、連續(xù)運(yùn)動6周后,空腹12 h,尾靜脈采血,檢測血糖。隨后取血5 ml,3000 r/min,4℃離心5 min分離血清,置于-80°C保存。使用Elisa法檢測大鼠血清胰島素含量。計算胰島素抵抗指數(shù)[HOMA-IR=(FBG×FINS)/22.5][8]。
1.3.2心肌組織SOD、MDA、NO、NOS檢測連續(xù)運(yùn)動6周后,各組大鼠取血后斷頭器處死,取心臟,冰冷生理鹽水清除血跡,每組取心肌組織200 mg剪碎,加入裂解液后組織勻漿器勻漿,后3000 r/min,4℃離心10 min,取上清,4℃保存。各指標(biāo)檢測按照試劑盒說明書操作,應(yīng)用分光光度計檢測。
1.4統(tǒng)計學(xué)處理所有數(shù)據(jù)使用SPSS16.0統(tǒng)計學(xué)軟件處理,計量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(s)表示,多組間均數(shù)比較采用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1各組大鼠造模前與造模后FBS、FINS、HOMA-IR變化情況與造模前比較,各組大鼠注射STZ后FBG、FINS、HOMA-IR均升高(P均<0.05)(表1)。
2.2各組大鼠運(yùn)動前后FBG、FINS、HOMA-IR變化情況跑臺運(yùn)動6周后,與模型組比較,低強(qiáng)度運(yùn)動組、中強(qiáng)度運(yùn)動組、高強(qiáng)度運(yùn)動組FBG均下降(P均<0.05),但仍未達(dá)到正常水平。低、中、高強(qiáng)度運(yùn)動組FINS、HOMA-IR較模型組均降低(P均<0.05)。與低、中強(qiáng)度運(yùn)動組比較,高強(qiáng)度運(yùn)動組FBG、FINS、HOMA-IR均顯著升高(P均<0.05)(表2)。
2.2各組大鼠心肌組織SOD,MDA,NO,NOS水平與正常組比較,模型組大鼠MDA和NO水平、NOS活性均升高(P均<0.05),SOD活性明顯降低(P<0.01);與模型組比較,運(yùn)動組大鼠治療6周后,MDA和NO水平、NOS活性均顯著降低(P均<0.01),SOD活性升高(P均<0.05)。與低、中強(qiáng)度運(yùn)動組比較,高強(qiáng)度運(yùn)動組MDA和NO水平、NOS活性升高(P均<0.05),SOD活性降低(P均<0.05)(表3)。
糖尿病作為嚴(yán)重危害人類健康的慢性代謝性疾病,其并發(fā)癥的防治及治療關(guān)鍵在于控制血糖。本研究證實,糖尿病大鼠運(yùn)動6周后,各運(yùn)動組空腹血糖較模型組下降,提示運(yùn)動可降低血糖。而低、中強(qiáng)度運(yùn)動組FBG及HOMA-IR較高強(qiáng)度運(yùn)動組明顯降低,表明低、中強(qiáng)度運(yùn)動降糖效果優(yōu)于高強(qiáng)度運(yùn)動,可增強(qiáng)胰島素敏感性,減輕胰島素抵抗,有利于糖代謝。已有研究證實,有氧運(yùn)動屬于高能耗刺激,提高骨骼肌中葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白4(glucose transporter-4,GLUT4)的表達(dá),增強(qiáng)GLUT4的活性,促進(jìn)細(xì)胞對葡萄糖的攝取和利用[3]。但運(yùn)動強(qiáng)度并非越高越好,低、中強(qiáng)度運(yùn)動可使骨骼肌細(xì)胞產(chǎn)生適應(yīng)性,激活胰島素信號通路向糖代謝方向傳遞的相關(guān)蛋白分子,使骨骼肌細(xì)胞中一些重要的信號蛋白參與運(yùn)動適應(yīng),增強(qiáng)胰島素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[9]。
表1 各組大鼠造模前后FBG、FINS、HOMA-IR的比較(n=10)
表2 各組大鼠運(yùn)動前后FBG、FINS、HOMA-IR的比較(n=10)
表3 各組大鼠心肌組織SOD,MDA,NO,NOS的變化(n=10)
近年來,氧自由基在糖尿病心肌病發(fā)生發(fā)展中的作用越來越受到關(guān)注。高糖環(huán)境下,心肌細(xì)胞氧化應(yīng)激產(chǎn)生的活性氧簇(ROS)增多,造成細(xì)胞膜脂質(zhì)、胞質(zhì)蛋白及核酸損傷[10]。MDA為脂質(zhì)過氧化的代表終產(chǎn)物之一,其含量降低表明體內(nèi)產(chǎn)生自由基減少,抗氧化能力增強(qiáng)。SOD是機(jī)體清除氧自由基的關(guān)鍵酶之一,可反映機(jī)體抗氧化能力[11]。內(nèi)源性NO可促進(jìn)血管舒張,抑制血管平滑肌增殖、促進(jìn)脂質(zhì)過氧化及氧自由基產(chǎn)生。NOS是NO合成的主要限速酶,隨著糖尿病進(jìn)展,NOS合酶活性升高,NO產(chǎn)生增多,后者又促進(jìn)氧化應(yīng)激反應(yīng),增加氧自由基生成,導(dǎo)致細(xì)胞進(jìn)一步損傷[12]。本研究中,各運(yùn)動組NO水平及NOS活性較模型組降低,提示運(yùn)動療法可抑制NOS活性,減少NO產(chǎn)生。
本研究結(jié)果證實有氧運(yùn)動可降低血糖,降低心肌組織氧自由基水平,提高心肌組織的抗氧化能力,提示,適量有氧運(yùn)動可能對糖尿病心肌病治療發(fā)揮作用。
[1]葛均波,徐永健. 內(nèi)科學(xué)[M]. 北京:人民衛(wèi)生出版社,2013:733.
[2]韓寶玲. 氧化應(yīng)激在2型糖尿病及其并發(fā)癥發(fā)病機(jī)制中的作用[J].實用臨床醫(yī)學(xué)雜志,2011,15(3):122-4.
[3]Goodyear LJ,Kahn BB. Exercise,glucose transport,and insulin sensitivity[J]. Annu Rev Med,1998,49:235-61.
[4]錢榮,談艷,汪宗寶,等. 不同運(yùn)動強(qiáng)度下糖尿病大鼠骨骼肌胰島素受體mRNA表達(dá)及氧化應(yīng)激變化[J]. 第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報,2010,32(9):926-7.
[5]Houstis N,Rosen ED,Lander ES. Reactive oxygen species have a causal role in multiple forms of insulin resistance[J]. Nature,2006,440(7086):944-8.
[6]劉德慧,邢翔飛. 2型糖尿病大鼠模型的特點(diǎn)及評價[J]. 中國實驗方劑學(xué)雜志,2010,16(12):212-4.
[7]Fernando P,Bonen A,Hoffman-Goetz L. Predicting submaximal oxygen consumption during treadmill running in mice[J]. Can J Physiol Pharmacol,1993,71(10-11):854-7.
[8]Bonora E,Targher G,Al beriche M,et al. Homeostasis model assessment closely minors the gluose clamp technique in the assessment of insulin sensitivity:studies in subjects with various degrees of glucose tolerance and insulin sensitivity[J]. Diabetes Care,2000,23(1):57-63.
[9]胡瑞萍,吳毅,胡永善. 運(yùn)動對大鼠骨骼肌胰島素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白表達(dá)和活性的影響[J]. 中國康復(fù)醫(yī)學(xué)雜志,2005,20(6):409-11.
[10]Elmarakby AA,Sullivan JC. Relationship between oxidative stress and inflammatory cytokines in diabetic nephropathy[J]. Cardiovascular Ther,2012,30(1):49-59.
[11]謝建軍,楊英姿. 2型糖尿病患者齋月前后丙二醛、超氧化物歧化酶、總抗氧化力和谷胱甘肽過氧化物酶變化的觀察[J]. 中國糖尿病雜志,2013,21(5):449-51.
[12]張然然. 黃芪注射液聯(lián)合胰島素對糖尿病大鼠氧化應(yīng)激水平的影響[D]. 吉林大學(xué),2013.