劉志偉, 童朝陽(yáng), 穆晞惠, 劉 冰, 郝蘭群, 張金平
(防化研究院 國(guó)民核生化災(zāi)害防護(hù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 102205)
微懸臂梁以其體積小、靈敏度高、不需標(biāo)記等優(yōu)點(diǎn)受到越來(lái)越多的重視,成為近年研究熱點(diǎn)。微懸臂梁讀出方法通常包括光學(xué)和電學(xué)讀出。關(guān)于光學(xué)讀出法已有較多文獻(xiàn)報(bào)道,但光學(xué)測(cè)量系統(tǒng)體積龐大、需要超真空、低溫等環(huán)境,一般局限于實(shí)驗(yàn)室生化分析[1]。壓阻式微懸臂梁是一種新型電學(xué)讀出懸臂結(jié)構(gòu),可直接將發(fā)生在微懸臂梁表面的生化反應(yīng)轉(zhuǎn)換為電阻信號(hào)變化輸出,由于壓阻式微懸臂梁讀出方式簡(jiǎn)單、易于集成、成本低、體積小,在現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)中更具發(fā)展前景。但由于壓阻式微懸梁加工難度較大,除國(guó)外僅有幾篇應(yīng)用報(bào)道外[2~5],國(guó)內(nèi)報(bào)道還非常少。相思子毒素(abrin)是一種劇毒生物毒素,對(duì)其進(jìn)行快速、靈敏檢測(cè)極為必要。目前利用壓阻式微懸臂梁傳感器檢測(cè)相思子毒素還未見(jiàn)相關(guān)的文獻(xiàn)報(bào)道。本研究以Abrin為作為靶標(biāo),構(gòu)建了一種靈敏度高、響應(yīng)快速的壓阻式微懸臂梁免疫傳感器并建立了該傳感器的動(dòng)力學(xué)分析方法,為未來(lái)發(fā)展適合生物毒素現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)的微小型傳感器提供技術(shù)基礎(chǔ)和參考依據(jù)。
Abrin和生物素化的Abrin多抗(bio-pcAb)由本實(shí)驗(yàn)室制備;活化生物素(biotin-NHS ester)、3,3,—二巰基丙酸(DDPA)、1—乙基—3—(3—二甲氨丙基)—碳二亞胺鹽酸鹽(EDC)、N—羥基琥珀酰亞胺(NHS)、親和素(avidin)、乙醇胺均購(gòu)自Sigma公司;牛血清白蛋白(BSA,上海國(guó)藥集團(tuán)有限公司);PBS緩沖液(pH為7.4,0.01 mol/L)、雙蒸水均自備;其它所用化學(xué)品和試劑均為分析純;壓阻式微懸臂檢測(cè)平臺(tái)由本室與北京大學(xué)微電子學(xué)研究院共同搭建(圖1)(壓阻微懸臂梁傳感芯片:長(zhǎng)200 μm,寬50 μm,厚小于1 μm)。
圖1 搭建的壓阻式微懸臂梁傳感檢測(cè)平臺(tái)
壓阻式微懸臂梁傳感檢測(cè)是基于半導(dǎo)體材料的壓阻效應(yīng),在硅微懸臂梁上的合適區(qū)域摻雜上半導(dǎo)體材料,由于微懸臂梁表面生化反應(yīng)的發(fā)生而使微懸臂梁彎曲時(shí),會(huì)引起摻雜區(qū)電阻的變化。因此,可以通過(guò)摻雜區(qū)電阻的變化來(lái)表征懸臂梁的偏轉(zhuǎn)。目前,顯示出較強(qiáng)壓阻效應(yīng)的材料是摻雜的單晶硅。懸臂梁上摻雜區(qū)的電阻變化可用惠斯通電橋來(lái)檢測(cè)。圖2為壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)原理示意圖。
圖2 壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)原理
1.3.1 Abrin多抗的生物素化
參照文獻(xiàn)[7]制備生物素標(biāo)記Abrin多抗,用間接ELISA法測(cè)定標(biāo)記前后的抗體效價(jià)。
1.3.2 壓阻式微懸臂梁免疫傳感器的構(gòu)建
將芯片置于檢測(cè)池中,加入DDPA(5 g/L),反應(yīng)1h使芯片表面金膜包被上羧基;雙蒸水清洗芯片和檢測(cè)池后加入EDC(5 g/L)和NHS(5 g/L),反應(yīng)0.5 h,完成對(duì)微懸臂梁表面的氨基活化修飾;清洗芯片后自然晾干,滴加20 μL100 mg/L的親和素,反應(yīng)0.5 h;清洗后滴加20 μL 1 mol/L的乙醇胺反應(yīng)0.5 h以滅活金膜表面殘余的羧基;清洗后將芯片電路與檢測(cè)平臺(tái)連接并置于含PBS緩沖溶液的檢測(cè)池中,加入生物素化的Abrin多抗,實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)抗體固定過(guò)程中輸出電壓的變化,待響應(yīng)電壓穩(wěn)定后,清洗芯片及檢測(cè)池。
1.3.3 Abrin檢測(cè)
將構(gòu)建好的傳感芯片置于含0.01 mol/L PBS緩沖溶液的檢測(cè)池中,待信號(hào)穩(wěn)定后向檢測(cè)池中加入不同濃度的Abrin(一個(gè)芯片測(cè)量一個(gè)濃度),記錄傳感器的響應(yīng)電壓變化。另以牛血清白蛋白(0.01 mol/L PBS配制)作為對(duì)照,考查傳感器的特異性。
1.3.4 免疫傳感器檢測(cè)毒素動(dòng)力學(xué)模型
抗原—抗體結(jié)合是一種典型的配體、受體結(jié)合。根據(jù)配體、受體結(jié)合的假一級(jí)動(dòng)力學(xué)方程[6]與壓阻式微懸臂梁電壓輸出與受力關(guān)系的特性,推導(dǎo)出壓阻式微懸臂梁電壓變化與時(shí)間之間的動(dòng)力學(xué)模型。根據(jù)建立的動(dòng)力學(xué)模型對(duì)Abrin的實(shí)際檢測(cè)數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合,根據(jù)擬合方程求出傳感器對(duì)不同濃度毒素反應(yīng)達(dá)到平衡的響應(yīng)電壓變化ΔUe、響應(yīng)時(shí)間t0,分析模擬值與實(shí)測(cè)值之間的關(guān)系。
1.3.5 Abrin模擬樣品的測(cè)定
利用構(gòu)建的傳感器對(duì)Abrin終濃度為16 μg/L的水樣、土樣、牛奶等模擬樣品進(jìn)行檢測(cè),記錄達(dá)到平衡的響應(yīng)電壓變化ΔUe,并與相同濃度Abrin標(biāo)準(zhǔn)樣品的ΔUe對(duì)比,計(jì)算檢測(cè)的相對(duì)回收率、相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,以考查傳感器的實(shí)際應(yīng)用效果。
生物素標(biāo)記Abrin多抗效價(jià)約為1∶2.5×106,與標(biāo)記前的Abrin多抗效價(jià)基本相當(dāng),表明生物素標(biāo)記對(duì)Abrin多抗活性沒(méi)有明顯的影響。
加入生物素化Abrin多抗至終濃度分別為195,300 mg/L后,輸出電壓發(fā)生明顯變化,輸出信號(hào)在約20 min時(shí)基本達(dá)到飽和,輸出信號(hào)的變化量分別為5,30 μV,表明生物素化Abrin多抗已經(jīng)修飾到微懸臂梁表面,并且輸出信號(hào)隨著Abrin多抗?jié)舛鹊脑黾友杆僭龃?見(jiàn)圖3)。當(dāng)加入生物素化Abrin多抗的終濃度高于300 mg/L時(shí),傳感器輸出電壓信號(hào)無(wú)明顯增加,因此,微懸臂梁傳感芯片上Abrin多抗固定濃度確定為300 mg/L。
圖3 固定生物素化Abrin多抗引起微懸臂梁傳感芯片輸出電壓變化實(shí)時(shí)響應(yīng)曲線
2.3.1 檢測(cè)限與特異性
用構(gòu)建好的壓阻式微懸壁梁免疫傳感器對(duì)低濃度的Abrin進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果見(jiàn)圖4。當(dāng)Abrin濃度為32,16 μg/L時(shí),輸出電壓變化信號(hào)分別為21.0,10.6 μV,當(dāng)Abrin的濃度進(jìn)一步降至8 μg/L時(shí),輸出電壓變化信號(hào)為2.5 μV,再進(jìn)一步降低Abrin濃度,基本接近噪音信號(hào)(約0.8 μV),因此,確定傳感器的檢測(cè)限為8 μg/L(S/N=3 dB)。整個(gè)反應(yīng)迅速達(dá)到平衡,在20 min內(nèi)完成。對(duì)照試驗(yàn)表明:加入100 μg/L的牛血清白蛋白,輸出電壓信號(hào)基本無(wú)變化,表明傳感器具有很好的特異性與抗干擾能力。
圖4 壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)Abrin的實(shí)時(shí)響應(yīng)曲線
2.3.2 重現(xiàn)性
對(duì)濃度為16 μg/L的Abrin重復(fù)5次測(cè)定,ΔUe值為(11.2±1.1)μV,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為9.82 %,傳感器重現(xiàn)性較好。
Abrin(A)溶液加入到固定有Abrin多抗(B)的微懸臂梁傳感芯片檢測(cè)池中,發(fā)生如下反應(yīng),生成毒素與抗體的結(jié)合物(C)
A+BC.
(1)
在檢測(cè)池中Abrin濃度很低的情況下,可以認(rèn)為,免疫反應(yīng)發(fā)生后,溶液中Abrin (A)濃度有顯著下降,而固定化多抗(B)僅有極少數(shù)與Abrin結(jié)合,符合配體—受體結(jié)合的假一級(jí)動(dòng)力學(xué)模型,可假定傳感芯片上Abrin多抗?jié)舛葹橐怀?shù)(BT=K),導(dǎo)出如下公式
(2)
式中Ce為反應(yīng)達(dá)到平衡后傳感芯片上形成的抗原—抗體復(fù)合物濃度,Ct為t時(shí)刻傳感芯片上形成的抗原—抗體復(fù)合物濃度,kapp為表觀速率常數(shù),將上式變形得
(3)
設(shè)加樣時(shí)刻壓阻微懸壁梁傳感器輸出電壓為U0,t時(shí)刻輸出電壓為Ut,此時(shí)傳感芯片上形成的抗原—抗體復(fù)合物濃度為Ct,傳感芯片表面所受的應(yīng)力為Ft。由于傳感芯片表面所受的應(yīng)力Ft直接取決于芯片表面形成的抗原—抗體復(fù)合物濃度Ct,設(shè)Ft=K1Ct(K1為常數(shù))。根據(jù)壓阻懸臂梁輸出電壓的變化與懸壁梁上所受的應(yīng)力F呈正比(比例系數(shù)為SF,對(duì)于某固定微懸臂梁,SF為一常數(shù))[7]。從而有
ΔU=Ut-U0=SFFt=SFK1Ct,
(4)
即
(5)
將上式代入式(3)得
(6)
在公式兩側(cè)同時(shí)乘以SFK1得
(7)
設(shè)ΔU=Ut-U0,ΔUe=Ue-U0(ΔU為t時(shí)刻的輸出電壓與零時(shí)刻輸出電壓之差,ΔUe為反應(yīng)達(dá)到平衡時(shí)刻的輸出電壓與零時(shí)刻的輸出電壓之差),從而有
(8)
加入Abrin以后,需要一個(gè)時(shí)間傳感器才能響應(yīng)。設(shè)響應(yīng)時(shí)間為t0,則對(duì)式(8)進(jìn)行修正,可變形為
(9)
即ΔU隨時(shí)間t變化的理論模型。
根據(jù)上述建立的理論模型,對(duì)檢測(cè)Abrin的實(shí)際結(jié)果數(shù)據(jù)進(jìn)行了非線性回歸分析,結(jié)果見(jiàn)圖5和表1。
圖5 壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)Abrin的實(shí)測(cè)數(shù)據(jù)動(dòng)力學(xué)擬合曲線
從表1可以看出:建立的壓阻式微懸臂梁免疫傳感器ΔU隨t變化的動(dòng)力學(xué)模型(方程式(9))能很好地與不同濃度的Abrin的實(shí)測(cè)數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合,相關(guān)系數(shù)R值均在0.971 1以上(P<0.001),根據(jù)擬合方程求出的傳感器對(duì)不同濃度Abrin反應(yīng)達(dá)到平衡時(shí)的響應(yīng)電壓變化ΔUe、響應(yīng)時(shí)間t0均與實(shí)測(cè)值非常接近,表明壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)Abrin遵循方程式(9)建立的動(dòng)力學(xué)模式。
表1 壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)Abrin的實(shí)測(cè)數(shù)據(jù)動(dòng)力學(xué)擬合分析
采用該傳感器對(duì)水樣、土樣、牛奶等模擬樣品進(jìn)行了測(cè)定(表2)。結(jié)果表明:對(duì)于模擬樣品的檢測(cè),傳感器具有較好的回收率和重現(xiàn)性。
表2 相思子毒素模擬樣品的測(cè)定
本文利用生物素—親和素放大系統(tǒng)構(gòu)建了一種壓阻式微懸壁梁免疫傳感器,實(shí)現(xiàn)了對(duì)Abrin的快速靈敏檢測(cè),對(duì)Abrin的檢測(cè)限達(dá)到8 μg/L,反應(yīng)在20 min內(nèi)基本達(dá)到平衡,傳感器具有很好的特異性、重現(xiàn)性與抗干擾能力。建立了壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)毒素的反應(yīng)動(dòng)力學(xué)模型,根據(jù)模型方程求出Abrin檢測(cè)的平衡響應(yīng)電壓變化ΔUe、響應(yīng)時(shí)間t0等擬合值均與實(shí)測(cè)值非常接近,這為表征分析壓阻式微懸臂梁免疫傳感器檢測(cè)靶分子的動(dòng)力學(xué)過(guò)程提供了理論參考依據(jù)。該傳感器直接將發(fā)生在微懸臂梁表面的生化反應(yīng)轉(zhuǎn)換為電阻信號(hào)變化進(jìn)行輸出,克服了傳統(tǒng)光學(xué)讀出微懸臂梁傳感器體積龐大、需要超真空、低溫等環(huán)境的缺陷,具有不需標(biāo)記、靈敏度高、操作簡(jiǎn)單、檢測(cè)快速等特點(diǎn),在生化毒素實(shí)時(shí)檢測(cè)和現(xiàn)場(chǎng)快速檢測(cè)方面有較大優(yōu)勢(shì),具有很好的發(fā)展前景。
參考文獻(xiàn):
[1] Shu W,Laue E D,Seshia A A.Investigation of biotin-streptavidin binding interactions using microcantilever sensors[J].Biosensors and Bioelectronics,2007,22:2003-2009.
[2] Wee K W,Kang G Y,Park J,et al.Novel electrical detection of label-free disease marker proteins using piezoresistive self-sensing micro-cantilevers[J].Biosensors and Bioelectronics,2005,20:1932-1938.
[3] Yang S M,Chang C,Yin T I,et al.DNA hybridization measurement by self-sensing piezoresistive microcantilevers in CMOS biosensor[J].Sensors and Actuators B,2008,130:674-681.
[4] Seo H,Jung S,Jeon S.Detection of formaldehyde vapor using mercaptophenol-coated piezoresistive cantilevers[J].Sensors and Actuators B,2007,126:522-526.
[5] Zhang Qi,Ruan Wenzhou,Wang Han,et al.A self-bended piezoresistive microcantilever flow sensor for low flow rate measurement[J].Sensors and Actuators A,2010,158:273-279.
[6] 周廷沖.受體生化藥理學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,1985.
[7] Doll J C,Park S J,Pruitt B L.Design optimization of piezoresistive cantilevers for force sensing in air and water[J].Journal of Applied Physics,2009,106:064310—1-064310—12.