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    天花粉蛋白基因?qū)霘W美楊1081)

    2014-09-18 11:12:22孫婷婷
    東北林業(yè)大學學報 2014年9期
    關鍵詞:天花粉歐美抗性

    孫婷婷 鄒 莉

    (東北林業(yè)大學,哈爾濱,150040)

    許繼飛

    (內(nèi)蒙古大學)

    于 洋

    (東北林業(yè)大學)

    歐美楊 108(Populus euramericana“114/690”)引種于意大利,為美洲黑楊與歐洲黑楊的人工雜種無性系,該品種在耐旱性、耐寒性、生長速度、抗病蟲害能力及成材質(zhì)量等方面都非常優(yōu)越,被列為我國華北和西北重點推廣樹種。但是,隨著歐美楊的廣泛栽培,病蟲害的發(fā)生越來越嚴重,因此,其抗性育種顯得尤為迫切。采用基因工程技術開展轉(zhuǎn)基因楊樹的研究,是培育抗逆、抗蟲和抗病楊樹新品種的有效途徑[1]。天花粉蛋白(Trichosanthin,TCS)是從葫蘆科藥用植物栝樓(Trichosanthes kirilowii Maxim)塊根中分離得到的單鏈核糖體失活蛋白(Ribosome Inactivating Protein,RIP),近年來的研究結(jié)果表明,天花粉蛋白和植物的防御反應相關,它對真菌、病毒和昆蟲有直接或間接的抑制和殺滅作用[2]。利用基因工程手段,將具有抗病和抗蟲特性的天花粉蛋白基因轉(zhuǎn)入歐美楊108,增強其抗逆性,使歐美楊108免遭病蟲危害,具有無污染,不殺傷天敵,保護生物多樣性,維持生態(tài)平衡等特點,且意義重大。

    目前,闊葉樹種主要采用根癌農(nóng)桿菌介導進行遺傳轉(zhuǎn)化[3]。本研究以歐美楊108無菌苗為材料,采用農(nóng)桿菌介導法,進行抗病蟲天花粉蛋白(Trichosanthin,TCS)基因的遺傳轉(zhuǎn)化研究。抗性體經(jīng)PCR和PCR-Southern檢測,初步證實TCS基因已經(jīng)整合到歐美楊108的基因組中。

    1 材料與方法

    植物材料:歐美楊 108(Populus euramericana“114/690”)組培苗由林木遺傳育種國家重點實驗室(東北林業(yè)大學)提供。

    菌株和質(zhì)粒:宿主菌 Escherichia coli DH5α,Agrobacterium tumefeciens LBA4404均為北京大學保藏菌種。pT1-3為北京大學構(gòu)建含有TCS啟動子及結(jié)構(gòu)基因(提取自葫蘆科藥用植物栝樓(Trichosanthes kirilowii Maxim)塊根中)的質(zhì)粒,其中啟動子大小約為 1140 bp,結(jié)構(gòu)基因大小約為 760 bp。pCambia1301為北京大學保藏的質(zhì)粒。pUCm-T質(zhì)粒載體購自上海生工公司。

    試劑:各種限制性內(nèi)切酶、質(zhì)粒提取試劑盒、DNA片段和PCR產(chǎn)物回收試劑盒為Promega公司產(chǎn)品;T4 DNA連接酶和 λDNA/HindⅢ+EcoRⅠMarker為華美生物工程公司產(chǎn)品;Taq DNA聚合酶購自TaKaRa公司,其他常規(guī)試劑均為國產(chǎn)分析純。引物合成和測序由上海生工公司完成。

    培養(yǎng)基:分化培養(yǎng)基,MS+0.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA;預培養(yǎng)基,MS+0.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA;共培養(yǎng)基,MS+0.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA+200 μmol·L-1AS(乙酰丁香酮);預篩選培養(yǎng)基,MS+0.5 mg·L-16-BA+0.1 mg·L-1NAA+400 mg·L-1Carb(羧卞青霉素);篩選培養(yǎng)基,MS+0.5mg·L-16-BA+0.1mg·L-1NAA+0.2mg·L-1Hyg(潮霉素)+400 mg·L-1Carb(羧卞青霉素);生根培養(yǎng)基,WPM(木本植物用培養(yǎng)基)+0.4 mg·L-1IBA+0.1 mg·L-1Hyg(潮霉素)+600 mg·L-1Cefo(頭孢噻肟鈉)。

    植物表達載體構(gòu)建:用限制性內(nèi)切酶SacⅠ和BamHⅠ雙酶切質(zhì)粒pT1-3得到TCS啟動子及結(jié)構(gòu)基因,再回收目的片段;同樣使用限制性內(nèi)切酶SacⅠ和BamHⅠ雙酶切質(zhì)粒pCambia1301后得到載體片段并將其回收,將兩者用T4 DNA連接酶16℃過夜連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細胞。經(jīng)PCR鑒定的陽性菌液,提取質(zhì)粒,進行SacⅠ和BamHⅠ雙酶切鑒定和雙向測序。鑒定正確的質(zhì)粒命名為 pC-tPro-TCS[4]。

    農(nóng)桿菌介導轉(zhuǎn)化歐美楊108:將構(gòu)建好的植物表達載體用液氨凍融法導入農(nóng)桿菌中。采用葉盤法轉(zhuǎn)化歐美楊108,從平板上挑取經(jīng)PCR驗證的陽性單菌落放入5 mL含有相應抗生素(50 mg·L-1Rif、40 mg·L-1Strep、50 mg·L-1Kan)的 LB 液體培養(yǎng)基中,28℃,190 rpm振蕩培養(yǎng)過夜;取1 mL菌液加入20 mL無抗生素的LB液體培養(yǎng)基中,振蕩培養(yǎng)6~8 h,在無菌條件下用無菌水稀釋菌液至OD600(光密度)為0.4左右;在無菌條件下,取生長良好的無菌苗葉片,將葉片橫斜切成2~3段,葉背向下在黑暗條件下預培養(yǎng)2 d;放入農(nóng)桿菌侵染液中侵染15 min,在這一過程中輕輕振蕩,取出葉片段,用無菌濾紙吸干;將葉片轉(zhuǎn)入共培養(yǎng)基中于培養(yǎng)室中暗培養(yǎng)2d[5]。葉片枯化后進行數(shù)據(jù)記錄,數(shù)據(jù)用 SPSS和DPS軟件分析。

    轉(zhuǎn)化效率=(形成抗性芽(或抗性愈傷)的葉片數(shù)/總的葉片數(shù))×100%。

    抗性植株的分子生物學檢測:抗性植株的PCR擴增檢測。采用CTAB法[6]提取植物材料總DNA。以質(zhì)粒DNA作為陽性對照,以未轉(zhuǎn)化的歐美楊108 DNA作為陰性對照,抗性苗進行PCR檢測,根據(jù)TCS結(jié)構(gòu)基因設計引物為 5'-GGGAAGCTTTGCCATATTGTTTCGATTC-3'和 5'-GGGCATATGGATGTTAGCTTCCGGTTA-3';PCR反應的總體積 25 μL,PCR反應條件為94℃預變性4 min,94℃變性1 min,55℃退火1 min,72℃延伸 1 min,30 個循環(huán),再72℃延伸10 min。擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

    抗性植株的PCR-Southern雜交:采用地高辛標定的探針進行分子雜交。分子雜交試劑盒為DIG High Prime DNA Labeling and Detection Starter KitⅠ,Cat.No.11745832910。將 PCR 擴增產(chǎn)物電泳后印跡于硝酸纖維素膜上,以陽性質(zhì)粒擴增回收產(chǎn)物為模板合成探針,進行PCR-Southern雜交檢測。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 植物表達載體pC-tPro-TCS鑒定

    質(zhì)粒pCambia 1301為11.8 kb,在多克隆位點上有SacⅠ和BamHⅠ酶切位點,SacⅠ和BamHⅠ之間有10 bp。質(zhì)粒pT1-3的SacⅠ與BamHⅠ位點之間約為96 bp,TCS啟動子及結(jié)構(gòu)基因長為1.9 kb,所以構(gòu)建的重組質(zhì)粒 pC-tPro-TCS大小約為13.7 kb。提取重組質(zhì)粒pC-tPro-TCS,進行KpnⅠ和BglⅡ雙酶切鑒定,得到約2.0 kb和11.7 kb兩個片段,所得酶切產(chǎn)物片段大小與預期相符。此外,雙向測序結(jié)果也表明,克隆的TCS啟動子及結(jié)構(gòu)基因序列是正確的。

    2.2 植物表達載體轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌

    將構(gòu)建好的植物表達載體經(jīng)凍融法轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌LBA4404,在附加卡那霉素、利福平和鏈霉素的LB培養(yǎng)基上篩選。挑取陽性克隆,一部分搖菌、提取質(zhì)粒進行PCR擴增,另一部分進行菌落直接PCR鑒定,兩者均特異的擴增出約760 bp大小的TCS結(jié)構(gòu)基因;除此之外,提取質(zhì)粒進行KpnⅠ和BglⅡ雙酶切鑒定,所得酶切產(chǎn)物大小與預期相符,結(jié)果表明,已成功地將含有天花粉蛋白(TCS)基因的pC-tPro-TCS植物表達載體導入了根癌農(nóng)桿菌LBA4404。

    2.3 歐美楊108轉(zhuǎn)化抗性再生植株的獲得

    歐美楊108葉片經(jīng)農(nóng)桿菌侵染和共培養(yǎng)后,在含有2 mg·L-1Hyg(潮霉素)的篩選培養(yǎng)基中進行篩選,2個月后,移入生根培養(yǎng)基中誘導生根,獲得再生植株(圖1、圖2)。本研究轉(zhuǎn)化420個外植體,共獲得18個抗性愈傷和抗性芽,轉(zhuǎn)化效率為4.3%。

    2.4 抗性植株的PCR擴增檢測

    取抗性植株基因組DNA做模板,以農(nóng)桿菌質(zhì)粒DNA作為陽性對照,以未轉(zhuǎn)化植株為陰性對照,用TCS結(jié)構(gòu)基因的特異性引物進行PCR擴增。結(jié)果如圖3所示,未轉(zhuǎn)化植株的基因組未出現(xiàn)PCR特異擴增片斷,抗性植株與質(zhì)粒DNA的擴增條帶相同,大小均為760 bp。因此,初步證明了目的基因TCS已經(jīng)整合到受體歐美楊108的基因組中。

    圖1 選擇培養(yǎng)基上抗性芽的獲得

    圖2 轉(zhuǎn)基因苗

    圖3 Hyg抗性再生植株的PCR檢測電泳分析

    2.5 抗性植株的PCR-Southern雜交

    為了進一步證明PCR擴增產(chǎn)物是目的基因片段,將PCR擴增產(chǎn)物電泳后印跡于硝酸纖維素膜上,以陽性質(zhì)粒擴增回收產(chǎn)物為模板合成探針,進行PCR-Southern雜交檢測,結(jié)果表明,轉(zhuǎn)入TCS基因植株和對照一樣,均顯示出較強的雜交信號。結(jié)果見圖4。在檢測過的4個抗性植株中,全部呈陽性。進一步證明了TCS基因已整合到了歐美楊108基因組中。

    圖4 Hyg抗性再生植株的PCR-Southern檢測

    3 結(jié)束語

    近年來,天花粉蛋白(Trichosanthin,TCS)基因被轉(zhuǎn)入不同植物中,徐瓊芳等[7]將天花粉蛋白基因?qū)胄←溨?,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)天花粉蛋白基因的小麥對黃矮病的抗性得到顯著提高。Yan et al.[8]、Ming et al.[9]將天花粉蛋白基因與35S啟動子融合,通過改進的基因槍技術,轉(zhuǎn)入到Zhonghua 8中,獲得了天花粉蛋白穩(wěn)定表達的陽性植株,同時,還發(fā)現(xiàn)天花粉蛋白作為外源基因的引入并沒有對水稻的生長發(fā)育產(chǎn)生影響。周長梅[10]采用根癌農(nóng)桿菌介導法首次將天花粉蛋白基因?qū)肽颈局参锲咸阎?,并獲得了PCR陽性植株。2011年劉靜等[11]將 TCS基因轉(zhuǎn)化泡桐,通過抗性試驗表明,轉(zhuǎn)TCS基因泡桐對叢枝病具有一定的抗性。到目前為止,還未見有利用農(nóng)桿菌介導法將TCS基因轉(zhuǎn)入歐美楊108的研究報道。

    本研究構(gòu)建了含有TCS啟動子和結(jié)構(gòu)基因的植物表達載體,對構(gòu)建的植物表達載體pC-tPro-TCS的鑒定時,采用的是KpnⅠ和BglⅡ雙酶切,而不是SacⅠ和BamHⅠ雙酶切鑒定,KpnⅠ和BglⅡ分別位于SacⅠ的上游和BamHⅠ的下游,這樣酶切和測序的結(jié)果更為準確。將構(gòu)建好的植物表達載體通過農(nóng)桿菌介導法成功導入歐美楊108植株中,抗性體經(jīng)PCR和PCR-Southern檢測可以初步證實外源基因整合到基因組中[12-14],而對于TCS基因是否真正整合到歐美楊108的基因組中則需要進一步試驗,例如是否有報告基因蛋白表達的染色等[15]。

    [1]閆新甫.轉(zhuǎn)基因植物[M].2 版.北京:科學出版社,2003:426.

    [2]汪猷.天花粉蛋白[M].北京:科學出版社,1990.

    [3]姜金仲,李云,薛諾穩(wěn),等.林木遺傳轉(zhuǎn)化及其潛在生態(tài)風險研究進展[J].西北林學院學報,2012,27(1):103-108,123.

    [4]鄒莉.天花粉蛋白基因表達載體的構(gòu)建及轉(zhuǎn)化楊樹的研究[D].哈爾濱:東北林業(yè)大學,2005.

    [5]許繼飛.歐美楊108再生體系的優(yōu)化及轉(zhuǎn)天花粉蛋白基因的研究[D].哈爾濱:東北林業(yè)大學,2006.

    [6]Mccouch S R,Chen X,Panaud O,et al.Microsatellite marker development,mapping and applications in rice genetics and breeding[J].Plant Molecular Biology,1997,35(1/2):89-99.

    [7]徐瓊芳,李連城,馬有志,等.用天花粉蛋白基因轉(zhuǎn)化小麥獲得轉(zhuǎn)基因植株[J].遺傳,2001,23(2):135-137.

    [8]Yan Yuanxin,An Chengcai,Li Li,et al.The sense and antisense expression of gibberellin 20-oxidase gene(rga5)in rice and its effects on GA1 level and agronomic traits[J].Chinese Science Bulletin,2003,48(5):443-448.

    [9]Ming Xiaotian,Yuan Huayi,Wang Lijiang,et al.Agrobacteriummediated transformation of rice with help of bombardment[J].Acta Botanica Sinica,2001,43(1):72-76.

    [10]周長梅.農(nóng)桿菌介導法將天花粉蛋白基因?qū)肫咸训难芯縖D].哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學,2002.

    [11]劉靜,黃艷艷,翁曼麗,等.TCS基因轉(zhuǎn)化泡桐及抗病能力[J].林業(yè)科學,2011,47(5):171-176.

    [12]張書利,劉麗君,唐曉飛,等.利用農(nóng)桿菌介導法將BrCS基因?qū)氪蠖沟难芯縖J].大豆科學,2011,30(4):569-573.

    [13]金華,尚敏克,姜國斌.導入抗逆基因的轉(zhuǎn)雙抗蟲基因741楊的獲得[J].東北林業(yè)大學學報,2012,40(1):28-31.

    [14]徐書舉,楊曉欽,張仁和,等.不同玉米自交系中導入SAMS基因的轉(zhuǎn)化與檢測[J].西北農(nóng)業(yè)學報,2012,21(3):59-62.

    [15]梁海永,劉興菊,蘇彥蘋,等.RolB基因?qū)θ扼w毛白楊的轉(zhuǎn)化研究[J].西北林學院學報,2011,26(2):86-90.

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