彭美蓮
浙江省立同德醫(yī)院婦產(chǎn)科,浙江杭州 310012
隨著經(jīng)濟(jì)的發(fā)展,近年來不孕不育癥的發(fā)生率逐年增高,卵母細(xì)胞體外成熟(IVM)是一項(xiàng)新的輔助生殖技術(shù)[1],是指應(yīng)用少量促性腺激素或者不經(jīng)過促排卵而直接從卵巢中獲取體內(nèi)未成熟的卵子,經(jīng)過適當(dāng)條件的體外培養(yǎng),促使卵子成熟并具備受精能力,可以因減少刺激或無刺激而降低常規(guī)體外受精(IVF)中促排卵過程的高額費(fèi)用,降低常規(guī)促排卵藥物引起的卵巢過度刺激綜合征等不良反應(yīng)的發(fā)生率[2-3]。1991年人未成熟卵母細(xì)胞IVM技術(shù)獲得首次成功[4],此后其發(fā)展一直較為緩慢,而卵母細(xì)胞IVM技術(shù)的一項(xiàng)重要內(nèi)容即為IVM培養(yǎng)液,IVM培養(yǎng)液是IVM技術(shù)發(fā)展的首要前提。目前臨床使用的培養(yǎng)液大多為在常規(guī)基礎(chǔ)培養(yǎng)液上加入血清等成分,目前還沒有一種價(jià)廉、現(xiàn)成、穩(wěn)定和安全的商品化的IVM培養(yǎng)液。本研究中將小鼠各個(gè)時(shí)期卵母細(xì)胞置入不同配方卵母細(xì)胞IVM培養(yǎng)液中培養(yǎng)并進(jìn)行IVF,比較所獲得的卵母成熟率、卵裂率、IVF受精率,研制一種相對(duì)穩(wěn)定的改良培養(yǎng)液,通過對(duì)IVM培養(yǎng)液成分的干預(yù),改善卵母細(xì)胞IVM的條件,為探索輔助生殖新途徑及臨床應(yīng)用提供參考。
昆明小鼠50只,普通級(jí),均為健康雌鼠未孕,6~10周齡,體重20 g左右,由中國科學(xué)院遺傳與發(fā)育生物學(xué)研究所實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,所有小鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周,給予光照14 h,暗適應(yīng)10 h,自由攝食攝水。根據(jù)培養(yǎng)液的不同將50只小鼠分為A組和B組,每組各25只。
A組:低糖培養(yǎng)基(DMEM),由美國Gibco公司生產(chǎn);孕馬血清促性腺激素(PMSG),由寧波第二激素廠生產(chǎn);人絨毛膜促性腺激素(β-HCG)由珠海麗珠生物工程有限公司生產(chǎn),加入基礎(chǔ)培養(yǎng)液中進(jìn)行培養(yǎng)。B組:采用含15%~20%胎牛血清的人類輸卵管液 (HTF)加入基礎(chǔ)培養(yǎng)液中進(jìn)行培養(yǎng)(國產(chǎn)杭州四季青)[4]。
所有小鼠首先給予10 U PMSG(寧波激素制品廠)腹腔注射,46~48 h后收集卵母細(xì)胞。將小鼠斷頸處死后取出卵巢,置于M2操作液沖洗過濾除去脂滴,在顯微鏡下用刺卵針收集卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體(COCs),得到小鼠GⅤ期、MⅡ期卵母細(xì)胞[5-6],移入IM液中進(jìn)行漂洗,再將A、B組移入IVM培養(yǎng)基中培養(yǎng)。
在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)[7],卵母細(xì)胞成熟的標(biāo)志:拆除顆粒細(xì)胞后以排出第一極體即為卵母細(xì)胞成熟的標(biāo)志[8]。對(duì)體外和體內(nèi)成熟卵母細(xì)胞進(jìn)行常規(guī)卵胞漿內(nèi)單精子注射受精。觀察受精12~16 h后原核的形成情況,隨后將受精卵移入GM培養(yǎng)基中,每8小時(shí)觀察1次胚胎發(fā)育情況。
①臨床妊娠:指B超下能見到胚囊。②生化妊娠:指發(fā)生在妊娠5周內(nèi)的早期流產(chǎn),血中可以檢測到HCG升高,大于25 U/mL或者尿妊娠試驗(yàn)陽性,但超聲檢查看不到孕囊,提示受精卵著床失敗,又被稱為“亞臨床流產(chǎn)”。③卵裂胚胎評(píng)級(jí):1級(jí)胚胎:細(xì)胞大小均勻,形態(tài)規(guī)則,透明帶完整,胞質(zhì)均勻清晰,沒有顆?,F(xiàn)象;碎片0%~<10%之間。2級(jí)胚胎:細(xì)胞大小略不均勻,形態(tài)略不規(guī)則;胞質(zhì)可有顆?,F(xiàn)象;碎片10%~<20%之間。3級(jí)胚胎:細(xì)胞大小明顯不均勻,可有明顯的形狀不規(guī)則;胞質(zhì)可有顆?,F(xiàn)象;碎片20%~<50%之間。4級(jí)胚胎:細(xì)胞大小嚴(yán)重不均勻,胞質(zhì)可有嚴(yán)重顆?,F(xiàn)象;碎片在50%以上。其中1~3級(jí)為正常卵裂胚胎。④優(yōu)質(zhì)胚胎:正常受精來源,第2天為3~5個(gè)細(xì)胞,第3天為7~9個(gè)細(xì)胞,碎片≤20%,卵裂球大致均一且無多核、空泡等現(xiàn)象。⑤可移植胚胎:是指發(fā)育良好的正常卵裂胚胎,可以進(jìn)行移植,為可移植胚胎。其中,正常受精率=(雙原核受精卵數(shù)/成熟卵數(shù))×100%;優(yōu)質(zhì)胚胎率=(優(yōu)質(zhì)胚胎數(shù)/正常卵裂胚胎數(shù))×100%;卵裂率=(正常卵裂胚胎數(shù)/雙原核受精卵數(shù))×100%;可移植胚胎率=(可移植胚胎數(shù)/正常卵裂胚胎數(shù))×100%;胚胎種植率=(胎數(shù)/種植胚胎數(shù))×100%;妊娠率=[(臨床妊娠周期數(shù)+生化妊娠周期數(shù))]/種植周期數(shù)×100%;活產(chǎn)率=(活產(chǎn)周期數(shù)/臨床妊娠周期數(shù))×100%[9]。
采用SPSS 18.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)數(shù)資料用率表示,組間比較采用χ2檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
在顯微鏡下(400×)不同發(fā)育階段的卵母細(xì)胞的具體發(fā)育情況見圖1。
圖1 不同發(fā)育階段的卵母細(xì)胞
A 組小鼠的體外受精率[71.4%(140/196)]、正常受精率[65.7%(92/140)]及卵裂率[89.1(82/92)]與 B 組[67.6%(138/204)、68.1%(94/138)、85.1%(80/94)]比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);A組小鼠的優(yōu)質(zhì)胚胎率[31.7%(26/82)]和可移植胚胎率[56.1%(46/82)]均優(yōu)于 B 組[25.0%(40/80)、42.5%(34/80)],差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。 見表 1。
表1 兩種培養(yǎng)液對(duì)對(duì)卵子成熟及胚胎發(fā)育影響的比較(%)
A組小鼠的妊娠率為23.3%(21/90),低于B組的32.6%(31/95),兩組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);但A組小鼠的活產(chǎn)率及胚胎種植率[17.8%(16/90)、66.7%(30/45)]與 B 組[18.9%(18/95)、68.8%(22/32)]比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表2。
表2 兩種培養(yǎng)液對(duì)妊娠影響的比較(%)
卵母細(xì)胞IVM是一項(xiàng)新的輔助生殖技術(shù),其通過體外培養(yǎng),使卵泡內(nèi)的未成熟卵母細(xì)胞發(fā)育成為成熟的第2次減數(shù)分裂中期(MⅡ)卵母細(xì)胞,受精分裂成胚胎并移植獲得妊娠的技術(shù)[9-10]。卵母細(xì)胞的內(nèi)在質(zhì)量是影像卵母細(xì)胞IVM的重要因素,卵母細(xì)胞的IVM包括核成熟、胞質(zhì)成熟、胞膜成熟[11],細(xì)胞核完成第一次減數(shù)分離排出的極體即為核成熟,第一極體是判斷核成熟的重要依據(jù)。卵母細(xì)胞在體內(nèi)的發(fā)育過程中,胞質(zhì)成熟和核成熟是同步完成的,卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)后可恢復(fù)減數(shù)分裂并達(dá)到MⅡ期,可以受精、發(fā)育為正常胚胎[12]。與體內(nèi)成熟的卵母細(xì)胞相比較,體外培養(yǎng)的卵母細(xì)胞可能并不能中分的成熟,卵母細(xì)胞的成熟依賴于特定時(shí)段特定基因的表達(dá)[13],卵母細(xì)胞的成熟受磷酸化/去磷酸化及蛋白質(zhì)合成/降解等作用的影響[14]。目前關(guān)于卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)的研究較多,但是各個(gè)研究報(bào)道的結(jié)果的差異較大,說明IVM技術(shù)尚未完全成熟,仍然需要進(jìn)一步地改進(jìn)和完善。雖然有大量的關(guān)于人類和哺乳類未成熟卵母細(xì)胞IVM的機(jī)制和能力的研究[15-16],但是IVM卵母細(xì)胞的妊娠率仍然比常規(guī)的體內(nèi)成熟卵IVF的妊娠率低,說明IVM技術(shù)還有待進(jìn)一步深入研究。
如何創(chuàng)建適合卵子發(fā)育的體外培養(yǎng)環(huán)境是完善未成熟卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)系統(tǒng)的關(guān)鍵[17],目前雖然有大量關(guān)于人類和哺乳動(dòng)物卵母細(xì)胞IVM的研究[18],但是其受精后的妊娠率均較低,效果不甚理想,說明卵母細(xì)胞細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核的成熟過程在體內(nèi)是同步進(jìn)行的,可以進(jìn)一步闡明哺乳動(dòng)物卵及胚胎在體外生長代謝時(shí)所需的營養(yǎng)條件。人類IVM技術(shù)專門針對(duì)一些卵子成熟障礙的不孕患者,特別是頑固的多囊卵巢綜合征、卵巢過度刺激征、卵泡發(fā)育遲緩的患者,將此類患者未成熟的卵母細(xì)胞取出,在體外進(jìn)行培養(yǎng)、受精,然后將胚胎移植到母親子宮腔內(nèi)生長,可能避免藥物和治療的副作用,減少費(fèi)用,降低促排卵的風(fēng)險(xiǎn)。卵泡的大小和卵丘細(xì)胞對(duì)卵母細(xì)胞的成熟具有重要影響,卵泡的大小在一定程度上反映了卵母細(xì)胞的發(fā)育能力,正常的生理狀態(tài)下只有優(yōu)勢卵泡可以排卵,多個(gè)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究證實(shí),小卵泡中卵母細(xì)胞卵裂率和成熟率較低;多層卵丘包裹的卵母細(xì)胞的發(fā)育能力較強(qiáng),卵丘細(xì)胞與卵母細(xì)胞之間的縫隙連接對(duì)卵母細(xì)胞的成熟有重要的意義,可能于一些生長因子可以通過兩者的縫隙連接調(diào)節(jié)卵母細(xì)胞的成熟有關(guān)。
培養(yǎng)液是卵母細(xì)胞IVM技術(shù)發(fā)展的一項(xiàng)重要內(nèi)容,卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)基礎(chǔ)培養(yǎng)液有組織培養(yǎng)基(TCM-199)、Ham F10、B2、Eagle 基本 DMEM、HTF 等[19]。體外基礎(chǔ)培養(yǎng)液的選取對(duì)卵母細(xì)胞成熟率的高低有重要的影響,人類IVM的培養(yǎng)基通常加入一些生長因子、激素或者卵泡液,最常用的是胎兒胚胎血清和臍帶血清[20]。目前關(guān)于人類卵母細(xì)胞培養(yǎng)基成分的報(bào)道少見,可能于GⅤ期卵母細(xì)胞的提取難度較大有關(guān)。有研究報(bào)道顯示[21],激活素和抑制素也具有促進(jìn)細(xì)胞核成熟和成熟卵母細(xì)胞的受精的作用。生長因子、激素或者卵泡液可顯著促進(jìn)卵母細(xì)胞的成熟率和卵裂率。
在IVM培養(yǎng)期間,人類卵母細(xì)胞對(duì)促性腺激素十分敏感,加入卵泡刺激素(FSH)和黃體生成素能夠促進(jìn)人類卵母細(xì)胞的成熟和卵裂,F(xiàn)SH能夠加速細(xì)胞核的成熟,減少染色體異常的發(fā)生。另外,添加生長激素GH可以促進(jìn)卵泡細(xì)胞的增殖,抑制細(xì)胞調(diào)亡。在培養(yǎng)基中加入5 mmol的視黃醛能夠增加卵裂率,應(yīng)用抗氧化劑有利胚胎的發(fā)育。但目前還沒有一種現(xiàn)成、價(jià)廉、穩(wěn)定和安全的商品化的IVM培養(yǎng)液提供。由此很有必要研制一種改良的IVM培養(yǎng)液并能夠推廣使用。
本研究結(jié)果顯示,A組培養(yǎng)液的優(yōu)質(zhì)胚胎率和可移植胚胎率均優(yōu)于B組,A組小鼠的妊娠率為23.3%,低于B組的32.6%,兩組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),說明A組所有培養(yǎng)液的應(yīng)用前景較佳。在卵母細(xì)胞的培養(yǎng)過程中,游離卵泡常出現(xiàn)聚集生長現(xiàn)象,抑制卵泡的生長,當(dāng)較大卵泡在形成腔卵泡而被破壞或退化后,其緊鄰的較小卵泡有些仍可恢復(fù)生長發(fā)育能力,繼續(xù)生長,直至形成囊腔,說明卵泡之間存在一種相互作用機(jī)制,仍有待于深入研究。
[1]黃荷鳳.現(xiàn)代輔助生育技術(shù)[M].北京:人民軍醫(yī)出版社,2003:116.
[2]孫新明,魏泓,趙永聚,等.昆明小鼠成熟卵母細(xì)胞體外受精及受精卵體外培養(yǎng)的研究[J].中國比較醫(yī)學(xué)雜志,2005,15(3):129-132.
[3]錢云,師蔚群,丁家桐.哺乳動(dòng)物體外受精的研究進(jìn)展[J].動(dòng)物科學(xué)與動(dòng)物醫(yī)學(xué),2000,17(1):26-281.
[4]Ebeling S,T?pfer D,Weitzel JM,et al.Bone morphogenetic protein-6 (BMP-6):mRNA expression and effect on steroidogenesis during in vitro maturation of porcine cumulus oocyte complexes [J].Reprod Fertil Dev,2011,23(8):1034-1042.
[5]Tahaei LS,Eimani H,Yazdi PE,et al.Effects of retinoic acid on maturation of immature mouse oocytes in the presence and absence of a granulosa cell co-culture system[J].J Assist Reprod Genet,2011,28(6):553-558.
[6]Li Z,Zhang P,Zhang Z,et al.A co-culture system with preantral follicular granulosa cells in vitro induces meiotic maturation of immature oocytes[J].Histochem Cell Biol,2011,135(5):513-522.
[7]李媛,姜晶晶,陳子江,等.未成熟卵母細(xì)胞評(píng)分系統(tǒng)對(duì)人類未成熟卵體外成熟及發(fā)育潛能的評(píng)價(jià)[J].生殖與避孕,2006,26(7):408-413.
[8]Tkachenko OY,Delimitreva S,Isachenko E,et al.Epidermal growth factor effects on marmoset monkey(Callithrix jacchus)oocytein vitro maturation,IVF and embryo development are altered by gonadotrophin concentration during oocyte maturation[J].Hum Reprod,2010,25(8):2047-2058.
[9]宣恒華,馮定慶,劉然.干細(xì)胞條件培養(yǎng)液促進(jìn)小鼠卵母細(xì)胞體外成熟[J].解剖學(xué)雜志,2012,35(3):272-276.
[10]Asimakopoulos B,Kotanidis L,Nikolettos N.In vitro maturation and fertilization of vitrified immature human oocytes,subsequent vitrification of produced embryos,and embryo transfer after thawing[J].Fertil Steril,2011,95(6):21-23.
[11]Kim M,Hong SJ,Lee JH,et al.Comparison of in vitro maturation media of immature oocytes:the effectiveness of blastocyst culture media[J].Fertil Steril,2011,95(2):554-557.
[12]Somfai T,Imai K,Kaneda M,et al.The effect of ovary storage and in vitro maturation on mRNA levels in bovine oocytes;a possible impact of maternal ATP1A1 on blastocyst development in slaughterhouse-derived oocytes[J].J Reprod Dev,2011,57(6):723-730.
[13]Pereira GR,Lorenzo PL,Carneiro GF,et al.Effect of incubation with different concentrations and durations of FSH for in-vitromaturation of murine oocytes[J].Zygote,2011,23(1):111-117.
[14]De Vos M,Ortega-Hrepich C,Albuz FK,et al.Clinical outcome of non-hCG-primed oocyte in vitro maturation treatment in patients with polycystic ovaries and polycystic ovary syndrome[J].Fertil Steril,2011,96(4):860-864.
[15]Vanhoutte L,Nogueira D,De Sutter P.Prematuration of human denuded oocytes in a three-dimensional co-culture system:effects on meiosis progression and developmental competence[J].Hum Reprod,2009,24(3):658-669.
[16]Leon PM,Campos VF,Kaefer C,et al.Expression of apoptoticgenes in immature and in vitro matured equine oocytesand cumulus cells[J].Zygote,2013,21(3):279-285.
[17]王輝田,羅光彬,王忠彬,等.兔卵母細(xì)胞體外成熟、體外受精及受精卵體外培養(yǎng)條件的研究[J].沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2013,44(2):172-177.
[18]梅樹江,林曉潭,王曉梅,等.小鼠腔前卵泡體外培養(yǎng)成熟染色體分析技術(shù)的建立[J].癌變·畸變·突變,2009,21(6):463-466.
[19]Pereira GR,Lorenzo PL,Carneiro GF,et al.The effect of growth hormone (GH)and insulin-like growth factor-I(IGF-I)on in vitro maturation of equine oocytes[J].Zygote,2012,20(4):353-360.
[20]韋多,謝娟珂,宋小兵,等.未成熟卵母細(xì)胞體外成熟培養(yǎng)技術(shù)研究進(jìn)展[J].河南醫(yī)學(xué)研究,2011,20(2):237-240.
[21]Vanhoutte L,Nogueira D,Dumortier F,et al.Assessment of a new in vitro maturation system for mouse and human cumulus-enclosed oocytes:three-dimensional prematuration culture in the presence of a phosphodiesterase 3-inhibitor[J].Human Reproduction,2009,24(8):1946-1959.
[22]張文紅,朱偉杰,鐘瑜,等.小鼠未成熟卵母細(xì)胞體外培養(yǎng)[J].暨南大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2001,22(3):122-125.