紀(jì)海茹, 孔 維, 孔令偉, 趙淑敏△, 孔祥玉△, 王 偉
( 1承德醫(yī)學(xué)院脊髓損傷與修復(fù)研究室,河北 承德 067000; 2南陽醫(yī)學(xué)高等??茖W(xué)校,河南 南陽 473000)
中風(fēng)是目前導(dǎo)致死亡和神經(jīng)功能障礙的主要原因,復(fù)雜的生化級聯(lián)反應(yīng)參與了腦缺血時神經(jīng)元損傷的主要過程,其中細胞內(nèi)、外環(huán)境的病理生理改變直接影響了神經(jīng)組織的損傷程度[1]。神經(jīng)血管單元的結(jié)構(gòu)改變,如血腦屏障(blood brain barrier,BBB)通透性發(fā)生變化,會引起細胞內(nèi)、外環(huán)境的劇變,導(dǎo)致血管源性腦水腫,加重腦損傷[2]。腦缺血時,基質(zhì)金屬蛋白酶類通過降解細胞外基質(zhì)參與了BBB的破壞和血管源性腦水腫的過程,其中基質(zhì)金屬蛋白酶9(matrix metalloproteinase 9,MMP-9)居主導(dǎo)地位[3]。觀察腦缺血再灌注損傷(cerebral ischemia-reperfusion injury, CIRI)后MMP-9表達水平的變化對評價BBB功能的變化具有重要意義[4]。
丁苯酞(3-n-butylphthalide,NBP)在臨床主要應(yīng)用于輕、中度急性缺血性腦卒中[5],對CIRI有肯定的治療效果[6],但對CIRI防護作用研究較少,本實驗將其預(yù)防性應(yīng)用于CIRI大鼠,探討其對腦保護的作用機制。
丁苯酞軟膠囊購自石藥集團恩必普藥業(yè)有限公司;伊文思藍購自TCI;免疫組化試劑盒購自北京四正柏生物科技有限公司;MMP-9Ⅰ抗購自宜康生物技術(shù)有限公司;RNasio Plus實時熒光定量PCR試劑盒購自TaKaRa。
成年SPF級雄性SD大鼠150只,體重260~280g,購于北京市維通利華實驗動物技術(shù)有限公司[許可證號:SCXK(京)2012-0001]。
大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,完全隨機分為5組,分別為假手術(shù)組(sham組)、模型組(IR組)、NBP預(yù)處理低劑量組(NBPⅠ組)、NBP預(yù)處理中劑量組(NBPⅡ組)和NBP預(yù)處理高劑量組(NBP Ⅲ組),NBPⅠ、Ⅱ和Ⅲ組分別給予NBP 20、40和80 mg/kg,sham組和IR組給予等體積的生理鹽水。全部大鼠于造模前7 d開始灌胃給藥,每天1次。
末次灌胃24 h后,IR組和NBP各組參照Zea 等[7]的方法制備大鼠大腦中動脈栓塞(middle cerebral artery occlusion,MCAO)模型,假手術(shù)組僅分離右側(cè)頸總、頸外及頸內(nèi)動脈,不插入線栓。術(shù)后單籠飼養(yǎng)并注意保暖。缺血2 h后將栓線抽提至頸外動脈殘端內(nèi)行再灌注,再灌注24 h后作相應(yīng)處理。
3.1腦水腫程度測定 采用干濕重法。各組均取6只大鼠麻醉后迅速取腦,分離出右側(cè)大腦,置于電子天平稱其濕重后,放到100 ℃烤箱中烤至恒重。腦組織含水量(%)=(濕重-干重)/濕重×100%。
3.2BBB通透性測定 采用伊文思藍(Evans blue,EB)作為示蹤劑監(jiān)測血腦屏障損傷程度的方法。每組取6只大鼠處死前1 h經(jīng)尾靜脈注入2%的EB(4 mL/kg),大鼠皮膚、球結(jié)膜等變藍表示注入成功。1 h后經(jīng)心臟灌注預(yù)冷的生理鹽水直至右心房流出清亮液體,快速取缺血側(cè)腦組織稱濕重后放入5 mL甲酰胺溶液中,54 ℃恒溫培養(yǎng)箱中孵育24 h,1 000 r/min離心5 min,酶標(biāo)儀測定其630 nm處的A值。甲酰胺溶液作為空白比色。腦組織EB含量(μg/g)=待測樣品EB含量(mg/L)×甲酰胺容量(mL)/腦濕重(g)。
3.3電鏡觀察血腦屏障結(jié)構(gòu)的變化 大鼠麻醉后,經(jīng)心臟快速灌注生理鹽水200 mL,待右心耳流出清亮液體時,再用2%戊二醛和4%多聚甲醛混合液灌注固定。取缺血側(cè)大腦皮質(zhì),常規(guī)透射電鏡樣品制備,半薄切片選區(qū)定位,超薄切片(片厚60 nm)鈾、鉛雙染,透射電鏡下觀察并攝片。
3.4免疫組織化學(xué)法檢測MMP-9蛋白的表達水平 采用SP法進行免疫組織化學(xué)染色。大鼠麻醉后,經(jīng)左室快速灌注生理鹽水200 mL,隨后先快后慢地灌注4%多聚甲醛250 mL左右,快速斷頭取腦,常規(guī)脫水、透明、石蠟包埋,以5 mm厚度連續(xù)切片,切片經(jīng)60 ℃烤片2 h后依次脫蠟、脫水,高壓鍋行抗原修復(fù)2 min后冷卻至室溫;PBS沖洗2次,每次5 min, 3% H2O2孵育10 min去除內(nèi)源性過氧化物酶;PBS沖洗2次,每次5 min,滴加山羊封閉血清,室溫孵育10 min后傾去;滴加1∶200的MMP-9Ⅰ抗,室溫孵育2 h;PBS沖洗3次,每次5 min,擦干切片周圍水分后,滴加Ⅱ抗,37 ℃溫箱孵育20 min;PBS沖洗3次,每次5 min,擦干切片周圍水分后,滴加SP復(fù)合物即鏈酶親和素-生物素-過氧化物酶復(fù)合物,37 ℃溫箱孵育20 min;PBS沖洗3次,每次5 min;DAB顯色3~5 min,水洗終止顯色,蘇木素復(fù)染30 s,分化水洗,氨水返藍,脫水透明后中性樹膠封片。顯微鏡觀察,MMP-9蛋白的陽性表達為包膜和胞質(zhì)內(nèi)的棕黃色顆粒。采用JD801形態(tài)學(xué)圖像分析系統(tǒng)(Version 1.0)測定陽性細胞的平均灰度值,行半定量分析。平均灰度值與陽性細胞數(shù)呈反比。
3.5實時熒光定量PCR方法檢測MMP-9 mRNA表達 根據(jù)GenBank中MMP-9 的基因序列,以β-actin為內(nèi)參照,設(shè)計合成引物。各引物的序列分別為:MMP-9的上游引物為5′-CGCTGACAAGAAGTGGGGTTT-3′,下游引物為5′-TACAGATGGTGGATGCCTTTTATG-3′;β-actin的上游引物為5′-GGAGATTACTGCCCTGGCTCCTA-3′,下游引物為5′ -GACTCATCGTACTCCTGCTTGCTG-3′。根據(jù)TaKaRa公司提供的實時熒光定量試劑盒采用SYBR Green法對MMP-9 的mRNA表達水平進行測定??偡磻?yīng)體系為25 μL,包括Premix Ex TaqⅡ 12.5 μL cDNA 2 μL,滅菌蒸餾水8.5 μL,上、下游引物各1 μL(10 μmol/L),放入實時定量PCR反應(yīng)儀,反應(yīng)條件:預(yù)變性95 ℃ 30 s,變性95 ℃ 5 s,退火51 ℃ 30 s,延伸72 ℃ 30 s,反應(yīng)循環(huán)數(shù)為40,設(shè)置熔解曲線判斷是否有非特異性的擴增和引物二聚體的出現(xiàn)。用2-ΔΔCt的方法進行數(shù)據(jù)處理。
采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)的表示,不同組間的均數(shù)比較用單因素方差檢驗,各組間的兩兩比較采用SNK-q檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
與sham組比較,IR組大鼠腦組織含水量顯著增加(P<0.01);與IR組比較,NBP預(yù)處理組大鼠腦組織含水量均顯著減少(P<0.01),且NBPⅡ、Ⅲ組較Ⅰ組減少更明顯(P<0.05),但Ⅱ、Ⅲ組之間無顯著差異(P>0.05),見圖1。
Figure 1. Water content alterations in the rats with different treatments. Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs sham;## P<0.01 vs IR; △P<0.05 vs NBP I .
IR組大鼠的BBB通透性較sham組顯著增高(P<0.01);NBP各組大鼠的BBB通透性較IR組均顯著降低(P<0.01),且NBPⅡ、Ⅲ組比Ⅰ組降低更為顯著(P<0.05),但Ⅱ、Ⅲ組之間差異不明顯(P>0.05),見圖2。
Figure 2. BBB permeability alterations in the rats with different treatments. Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs sham;##P<0.01 vs IR; △P<0.05 vs NBP Ⅰ.
Sham組毛細血管內(nèi)皮細胞核膜、核仁形態(tài)規(guī)則,染色質(zhì)密度均一,內(nèi)皮細胞基膜清晰,厚薄均勻,緊密連接結(jié)構(gòu)完好。IR組毛細血管明顯變形,管腔狹窄,血管周圍見大片電子空白區(qū),內(nèi)皮細胞大量溶解,殘存的線粒體空泡變性,多處基膜片狀溶解、斷裂,緊密連接融合、擴張。NBP各組均有不同程度的改善,NBPⅠ組血管周圍仍可見電子空白區(qū),毛細血管基膜有溶解、斷裂現(xiàn)象,內(nèi)皮細胞內(nèi)線粒體空泡變性,緊密連接融合、擴張;NBPⅡ、Ⅲ組的情況較Ⅰ組有明顯改觀,見圖3。
Figure 3. BBB ultrastructure alterations in the rats with different treatments (×20 000).
IR組的MMP-9蛋白表達平均灰度值(139.49±5.53)明顯低于sham組(179.52±6.35;P<0.01);NBP各組MMP-9蛋白的表達平均灰度值較IR組均有不同程度增高(均P<0.01),且NBPⅡ組(162.22±3.76)、NBPⅢ組(166.69±6.85)比NBPⅠ組(151.32±3.83)增高更為顯著(P<0.05),但是NBPⅡ、Ⅲ組之間無顯著差異(P>0.05),見圖4。
Figure 4. The protein expression of MMP-9 in the rats with different treatments (immunohistochemical staining, ×200).
Sham組MMP-9有微量表達;IR組MMP-9的表達較正常組明顯升高(P<0.01),NBP各組MMP-9含量均減少,且NBPⅡ、Ⅲ組比Ⅰ組減少更為顯著(均P<0.05),但Ⅱ、Ⅲ組之間差異不明顯(P>0.05),見圖5。
Figure 5. The mRNA expression of MMP-9 in the rats with different treatments. Mean±SD.n=6.**P<0.01 vs sham; ## P<0.01 vs IR; △P<0.05 vs NBP Ⅰ.
目前研究表明,腦水腫是腦缺血再灌注損傷后BBB破壞所引起的主要表現(xiàn)。同時,BBB通透性增強會導(dǎo)致大量有害物質(zhì)進入腦組織,引起細胞內(nèi)外環(huán)境的改變,進一步加重腦水腫,導(dǎo)致神經(jīng)元損傷[8]。MMP-9因有較強降解細胞外基質(zhì)的能力,常被作為評價BBB完整性的檢測指標(biāo)[1, 9-10]。EB作為一種示蹤劑可直接反映BBB的通透情況,腦含水量是評價腦水腫的直接指標(biāo)[11],可間接反映BBB的開放程度。電鏡下的觀察,是對血腦屏障形態(tài)學(xué)變化最有力的說明[12]。
本實驗?zāi)X缺血2 h再灌注24 h后,MMP-9表達明顯上調(diào),EB含量和腦含水量大幅增加,電鏡攝片也顯示血腦屏障緊密連接融合、擴張,毛細血管明顯變形,內(nèi)皮細胞大量溶解,多處基膜片狀溶解、斷裂,與文獻報道一致[13]。
丁苯酞是人工合成的消旋體,可改善腦缺血所致的腦損傷,有較強的抗缺血作用,能夠明顯縮小腦缺血的梗死體積,減輕腦水腫,抑制細胞凋亡,改善缺血區(qū)的微循環(huán)和腦能量代謝[14]。本實驗不再探討丁苯酞的治療作用,而是將其預(yù)處理于腦缺血再灌注損傷的大鼠,探討其對腦缺血的預(yù)防性保護作用。結(jié)果顯示,丁苯酞20 mg/kg預(yù)處理后,腦水腫減輕,BBB通透性降低,MMP-9表達下調(diào),提示預(yù)防性應(yīng)用丁苯酞后,小劑量即可起到保護作用。
為了探討丁苯酞預(yù)處理大鼠的合適劑量,我們又做了中、高(40、80 mg/kg)劑量的探索。結(jié)果發(fā)現(xiàn),這2個劑量組與低劑量組相比,腦水腫進一步減輕,BBB通透性降低,MMP-9表達明顯減少,同時,中、高劑量組之間在上述指標(biāo)中雖有數(shù)值的差異,但并無統(tǒng)計學(xué)的意義,提示應(yīng)用40 mg/kg的丁苯酞預(yù)處理腦缺血再灌注損傷大鼠,可發(fā)揮較好的保護作用。
綜上所述,丁苯酞預(yù)處理可減輕腦水腫,減少BBB的通透性,發(fā)揮一定的預(yù)防性保護作用。其機制可能是通過調(diào)節(jié)MMP-9的表達,降低因血腦屏障通透性增加帶來的神經(jīng)損傷。此外,本研究還采用了不同劑量的分組,找到了預(yù)處理應(yīng)用于大鼠的最佳劑量,為臨床進一步應(yīng)用提供有力的基礎(chǔ)支持。
[參 考 文 獻]
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