• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      miR-155種子序列的反義寡核苷酸對抗多發(fā)性骨髓瘤的作用*

      2014-08-09 00:37:36豐茂曉朱容萱駱小闖古春明
      中國病理生理雜志 2014年8期
      關(guān)鍵詞:寡核苷酸反義漿細胞

      豐茂曉, 朱容萱, 駱小闖, 古春明, 曾 雪, 費 嘉△

      (暨南大學(xué)醫(yī)學(xué)院 1生物化學(xué)與分子生物學(xué)系, 2臨床醫(yī)學(xué)系,廣東 廣州 510632)

      多發(fā)性骨髓瘤(multiple myeloma,MM)是惡性漿細胞克隆性增殖疾病,其發(fā)病機制涉及多個方面,包括染色體數(shù)量異常、易位、基因突變、表觀遺傳學(xué)改變以及骨髓微環(huán)境的改變[1]。多發(fā)性骨髓瘤發(fā)病呈現(xiàn)多步驟的過程,早期的染色體易位涉及到14號染色體(14q32.33)和4號染色體(4p16.3),結(jié)果導(dǎo)致4號染色體上相鄰的多發(fā)性骨髓瘤組蛋白(multiple myeloma SET protein,MMSET)基因和成纖維細胞生長因子受體3(fibroblast growth factor receptors 3,F(xiàn)GFR3)基因發(fā)生分離[2]。隨著疾病的發(fā)展,將再次發(fā)生染色體易位、相關(guān)基因的突變(涉及到K-RAS和N-RAS的激活)、復(fù)雜核型畸變、p53和FGFR3基因的突變以及細胞周期素依賴性激酶抑制劑2A (cyclin-dependent kinase inhibitor 2A,CDKN2A)和細胞周期素依賴性激酶抑制劑2C(cyclin-dependent kinase inhibitor 2C,CDKN2C)基因的失活[2]。這些遺傳畸變將導(dǎo)致惡性漿細胞黏附分子表達的改變,必然引起漿細胞和骨髓基質(zhì)的異常作用[2],進而引起人骨髓微環(huán)境(human bone marrow microenvironment, huBMM)中的漿細胞發(fā)生多級轉(zhuǎn)變,這些轉(zhuǎn)變對腫瘤細胞生長、存活和耐藥性有著重要的影響[3-5]。隨著研究的深入,發(fā)現(xiàn)MM細胞中的miRNAs呈顯著的異常表達,并認(rèn)為這些異常表達的miRNAs與漿細胞發(fā)生遺傳學(xué)畸變,特別是與染色體異常有密切的關(guān)聯(lián)[2,6-7]。

      Al Masri等[8]的研究發(fā)現(xiàn)在細胞系和病人的骨髓樣本中,惡性的漿細胞miRNA的表達水平出現(xiàn)明顯的差異,其中高表達的miRNAs包括miR-125b、miR-133a、miR-1和miR-124a。Bakkus等[9]也檢測出MM病人以及細胞系中一些高表達的miRNAs(let-7a、miR-16、miR-17-5p和miR-19b)。Picchiorri等[10]還發(fā)現(xiàn),miRNA-17~92群(miRNA-19a、-19b和-92)和miRNA-106~25 群(miRNA-106b、-93和-25)在MM樣品中也呈現(xiàn)高表達的現(xiàn)象,miRNA-17~92通過靶向負性調(diào)節(jié)凋亡前體蛋白Bim的表達,有助于骨髓瘤的形成。Lane等[11]對MM樣品中異常表達的miRNA 進行分析,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miRNA-21、miR-19a和miR-19b表達水平升高,并揭示這些miRNAs參與信號轉(zhuǎn)導(dǎo)子及轉(zhuǎn)錄激活子3(signal transducer and activator of transcription 3, STAT3)和白細胞介素 6(interleukin-6, IL-6)的抗凋亡途徑。根據(jù)染色體易位和周期蛋白D (translocation/cyclin D, TC)分類,Lionetti等[6]通過多重分析發(fā)現(xiàn)MM在5個TC組中有26個miRNAs具有顯著表達差異現(xiàn)象,其中值得注意的是在TC5組中有10種miRNAs相比于其它4個TC組有明顯的過表達趨勢。在這10種過表達的miRNAs中,miR-155在MM中高水平表達首次被發(fā)現(xiàn)。 目前已知miR-155在B細胞淋巴瘤中是一個重要的生物標(biāo)志物,有關(guān)miR-155在惡性漿細胞病中的功能還沒有文獻報道。由于漿細胞也是來源于B細胞,因此,miR-155在MM中是否具有類似B細胞淋巴瘤中癌基因功能,這引起我們極大的關(guān)注。

      miRNA是一類內(nèi)源性,約22個核苷酸長度的非編碼小RNA,通過轉(zhuǎn)錄后負性調(diào)控機制在細胞過程中起著重要的作用。成熟的miRNA與靶mRNA的3’非翻譯區(qū)(3’-untranslated region,3’UTR)配對,從而抑制翻譯過程或降解靶mRNA。這些小分子RNA也可能在腫瘤形成過程中起重要作用[12],類似癌基因(oncomiRs)功能,因此oncomiRs被當(dāng)作為癌癥治療新的靶點[13]。另一方面,在miRNA的5’端具有7~8個高度保守序列,被稱為種子序列。種子序列通過與其靶基因mRNA的3’UTR進行堿基完全互補配對,促進靶基因mRNA降解或抑制mRNA翻譯,從而對靶基因的表達水平進行轉(zhuǎn)錄后的負性調(diào)控[14-16]。針對miRNA種子序列反義核酸可以干擾miRNA與靶基因的配對,從而阻止miRNA發(fā)揮功能。相對于成熟miRNA而言,針對種子序列的反義核酸具有分子量小、特異性強、轉(zhuǎn)染效率高等優(yōu)點,因而開始受到關(guān)注[17]。

      為了闡述miR-155在多發(fā)性骨髓瘤細胞中的作用,本研究針對miR-155的種子序列合成miR-155的微小反義核酸(tiny antimiR-155, t-antimiR-155),靶向作用于多發(fā)性骨髓瘤細胞RPMI-8266中的miR-155,探究t-antimiR-155對多發(fā)性骨髓瘤細胞的抑制效應(yīng),為腫瘤基因治療尋找新的方法,同時也為針對miRNA種子序列的反義核酸藥物開發(fā)創(chuàng)造有利條件。

      材 料 和 方 法

      1 反義寡核苷酸的設(shè)計與合成

      從microRNA Families數(shù)據(jù)庫中獲取人miR-155的種子序列,根據(jù)序列互補原理設(shè)計針對種子序列的反義寡核苷酸序列(t-antimiR-155),并采用BLAST軟件分析確定其反義寡核苷酸序列及隨機對照序列,見圖1。

      Figure 1. The sequences of miR-155 and t-antimiR-155.

      2 主要試劑

      MTT和DMSO購自Sigma;胎牛血清及RPMI-1640培養(yǎng)基購自Gibco;LipofectamineTM2000購自Invitrogen。反義寡核苷酸序列(t-antimiR-155):5’-AGCATTAA-3’;隨機序列(scrambled sequence,SCR):5’-TCATACTA-3’,均由上海生物工程有限公司合成,全硫代修飾,高效液相色譜(high-performance liquid chromatography, HPLC)純化。

      3 主要方法

      3.1細胞培養(yǎng) 將RPMI-8266細胞(多發(fā)性骨髓瘤細胞,南方醫(yī)科大學(xué)附屬珠江醫(yī)院惠贈)接種于含10%胎牛血清、無抗生素的RPMI-1640培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱,飽和濕度下培養(yǎng)。每2~3 d換液傳代。實驗選用對數(shù)生長期、0.2%臺盼藍拒染率>95%的細胞。

      3.2MTT法篩選反義寡核苷酸的最佳作用濃度 本實驗分t-antimiR-155組、SCR組和空白對照組,每組設(shè)5個復(fù)孔。t-antimiR-155組中t-antimiR-155的核酸終濃度為0.2、0.3、0.4 和0.5 μmol/L,SCR組中隨機序列的核酸終濃度為0.2、0.3、0.4和0.5 μmol/L。取對數(shù)生長期的RPMI-8266細胞,各組細胞以1×108cells/L的密度接種于96孔板,每孔50 μL,轉(zhuǎn)染終體積100 μL(轉(zhuǎn)染方法參照Invitrogen公司LipofectamineTM2000說明書),空白對照組加入50 μL無血清Opti-MEM培養(yǎng)基。轉(zhuǎn)染6 h后,每孔加入100 μL含20%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基,使每孔終體積為200 μL。48 h后每孔加入MTT液20 μL,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,1 000 r/min離心10 min,棄上清,每孔加入150 μL DMSO,振蕩10 min,使結(jié)晶充分溶解。在多功能酶標(biāo)儀上測定吸光度A570。實驗重復(fù)3次,計算增殖抑制率。增殖抑制率(%)=(1-A實驗組/A對照組)×100%。

      3.3甲基纖維素細胞集落培養(yǎng)實驗觀察細胞集落形成情況 實驗分組同前,根據(jù)文獻改進[11],取對數(shù)生長期的RPMI-8266細胞,按1×103cells/well接種于含20%胎牛血清、2 mmol/L L-谷氨酰胺、5 μmol/L β-疏基乙醇和0.9%甲基纖維素的半固體培養(yǎng)基中,置37 ℃、5%CO2和飽和濕度條件下培養(yǎng)7 d。倒置顯微鏡下計數(shù)集落數(shù)和觀察集落形態(tài),以大于40個細胞的細胞團為1個集落。實驗重復(fù)3次,計算相對集落形成率=(實驗組/空白對照組)×100%。

      3.4流式細胞儀計量分析RPMI-8266細胞凋亡情況 實驗分組同前,各組細胞以5×107cells/L的密度接種于24孔板,每孔400 μL,轉(zhuǎn)染終體積500 μL,空白對照組加入與實驗組同體積的RPMI-1640培養(yǎng)基。6 h后加入500 μL 含20%胎牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。反義寡核苷酸組和隨機對照組的核酸終濃度為0.4 μmol/L。48 h后離心收集細胞,采用Annexin V/PI二重染色,流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡情況。

      4 統(tǒng)計學(xué)處理

      數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,使用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件,采用單因素方差分析法(one-way AVONA)分析各組數(shù)據(jù)差異的顯著性。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 MTT法篩選反義寡核苷酸最佳作用濃度

      t-antimiR-155在0.2 μmol/L和0.4 μmol/L之間有效抑制RPMI-8266細胞增殖活性,其最佳作用濃度為0.4 μmol/L,與SCR組相比差異顯著(P<0.05)。t-antimiR-155在0.5 μmol/L的濃度顯示出非特異性作用,見圖2。

      Figure 2. Inhibition rate of RPMI-8266 cells after transfected with t-antimiR-155.Mean±SD.n=3. *P<0.05 vs SCR group.

      2 反義寡核苷酸對細胞集落形成的影響

      采用甲基纖維素為支持物的集落形成法(colony forming method)檢測RPMI-8266細胞的自我更新和增殖能力。7 d后,與SCR組相比,0.4 μmol/L反義寡核苷酸作用于RPMI-8266細胞后,細胞集落形成能力較弱,集落形成抑制率較高,差異顯著(P<0.05),見圖3。

      3 反義寡核苷酸對細胞凋亡的影響

      0.4 μmol/L反義寡核苷酸作用于RPMI-8266細胞48 h后,經(jīng)Annexin V/PI二重染色,流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率為7.56%。與SCR組相比,其凋亡率明顯增加(P<0.05),見圖4。以上實驗結(jié)果表明t-antimiR-155作用于RPMI-8266細胞后,細胞生長受到抑制,細胞凋亡明顯增加。

      Figure 3. Cell colony formation assay of RPMI-8266 cells.Mean±SD.n=3. *P<0.05 vs SCR.

      Figure 4. Flow cytometry analysis of the apoptosis of RPMI-8266 cells.Mean±SD.n=3. *P<0.05 vs SCR.

      討 論

      多發(fā)性骨髓瘤是起源于漿細胞的惡性克隆增殖性疾病,以血清或尿液中出現(xiàn)單克隆免疫球蛋白以及多器官功能損害為特征,約占血液系統(tǒng)惡性腫瘤的10%。常規(guī)化療緩解率低,迄今難以治愈[18-19],因此,需要尋找新的治療手段。

      miR-155位于21號染色體上,參與人體造血、炎癥和免疫等功能[6]。作為一個類似癌基因, miR-155在多個腫瘤中高水平表達[20],與白血病、乳腺癌、肺癌、胃癌的形成過程都有密切的關(guān)系[21]。在華氏巨球蛋白血癥(Waldenstrom macroglobulinemia,WM)中,失調(diào)的miR-155通過調(diào)節(jié)絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)/細胞外信號調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase, ERK)、磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)/Akt和核因子κB信號通路,影響WM細胞生存和生長[22];通過敲除miR-155,導(dǎo)致位于G1期的WM細胞明顯降低,同時導(dǎo)致細胞周期依賴激酶和細胞周期蛋白D下調(diào)并刺激p53蛋白過表達。這意味著miR-155在WM細胞中通過調(diào)節(jié)細胞周期蛋白導(dǎo)致G1期阻滯[22]。雖然WM和MM一樣,也是漿細胞病的一種,但miR-155在MM中確切的功能還不清楚。

      基于文獻報道m(xù)iR-155在MM中的高水平表達[6],可能具有類似癌基因的作用,本研究針對miR-155的種子序列合成反義寡核苷酸t(yī)-antimiR-155,研究其在多發(fā)性骨髓瘤中的抑制作用。我們的數(shù)據(jù)顯示t-antimiR-155經(jīng)脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染,顯著抑制RPMI-8266細胞的增殖,其最佳作用濃度為0.4 μmol/L(圖2)。其他的研究揭示乳腺癌中miR-155靶基因編碼的蛋白是轉(zhuǎn)錄因子FOXO3a(forkhead box O3a),涉及細胞的存活[23]。同時,Linnstaedt等[24]也證實在大細胞淋巴瘤和彌散性大B細胞淋巴性淋巴瘤中,抑制miR-155的水平也可以抑制細胞的生長,與我們的結(jié)果一致。本研究首次采用了克隆形成實驗來研究t-antimiR-155對RPMI-8266細胞惡性程度的影響,數(shù)據(jù)顯示t-antimiR-155可以降低RPMI-8266細胞集落形成的能力(圖3),有效抑制RPMI-8266細胞的惡性進展。流式細胞術(shù)檢測結(jié)果顯示t-antimiR-155可以明顯促進RPMI-8266細胞的凋亡(圖4)。

      在體內(nèi)和體外實驗中,針對于mRNA的反義核苷酸已經(jīng)被廣泛用于評價靶基因的功能[25],同時有些反義核酸治療方法已經(jīng)用于臨床實驗[25-26],反義核苷酸藥物具有安全性高、易合成、直接抑制靶基因表達等優(yōu)點。miRNA反義核苷酸也是根據(jù)堿基互補配對原理,化學(xué)或生物合成與特定的miRNA初級轉(zhuǎn)錄物、miRNA前體或成熟的miRNA互補的DNA或RNA序列。在細胞中miRNA反義DNA與靶miRNA形成miRNA-DNA雜化鏈,激活RNA酶H,引起miRNA的降解,從而達到基因控制和治療的目的。由于成熟miRNA只有19~24個核苷酸,目前認(rèn)為用反義核苷酸抑制它們的功能是最好、也可能是唯一的方法[27]。

      反義核苷酸技術(shù)在實際應(yīng)用中也存在一些不容忽視的問題,比如高濃度藥物也有一定的毒副作用,與靶序列的親和力低,特別是藥物在體內(nèi)易被降解以及向靶器官傳遞效果不佳等制約了反義藥物開發(fā)的進程等。對反義寡核苷酸進行一系列的化學(xué)修飾,可以增加反義寡核苷酸的親和力,提高其抗性和在體內(nèi)的輸送效率。提高反義寡核苷酸與靶RNA親和力的修飾涉及糖環(huán)部分,常用的修飾方法有鎖核苷酸(locked nucleic acid, LNA)修飾、2′-O-甲基(2′-O-methyl)修飾、2′-O-甲氧乙基(2′-O-methoxyethyl)修飾、2′-氟代(2′-fluoro)修飾,而在這些修飾中提升與互補RNA親和性最佳的為LNA修飾,可使雙聯(lián)熔解溫度(Tm)上升2~8 ℃[28]。另一方面,通過對反義寡核苷酸骨架的硫代修飾和嗎啉代修飾,可以提高反義寡核苷酸抗性和體內(nèi)的輸送效率[28]。我們設(shè)計合成的miR-155種子序列的反義寡核苷酸進行了全硫代修飾,本文中缺少對miR-155沉默的直接實驗驗證,這是本文章的不足之處,將作為我們今后進一步研究的內(nèi)容。

      目前,有關(guān)于miR-155的反義寡核苷酸經(jīng)過LNA修飾可以沉默miR-155的報道。他們選用miR-155的多個靶基因做成熒光報告基因,用來檢測miR-155是否被沉默。檢測的結(jié)果顯示,經(jīng)過LNA修飾的antimiR-155可以使miR-155的多個靶基因(SOCS1、SMAD5、CEBPβ、MAFB、SHANK2和SH3PXD2A)的表達量明顯增加[29]。由于全硫代修飾的t-antimiR-155的序列和t-LNA-155的序列相同,從理論上看,他們的生物學(xué)功能應(yīng)當(dāng)是相似的。

      我們雖然沒有通過檢測miR-155的靶基因來獲得全硫代修飾的t-antimiR-155沉默miR-155的直接實驗證據(jù),但在我們以前的研究中,將miR-21的靶基因程序性細胞死亡4(programmed cell death 4,PDCD4)做成熒光報告基因,轉(zhuǎn)染硫代修飾的anti-miR-21后,PDCD4的熒光活力明顯比SCR和空白組要高[30]。此結(jié)果可以證明經(jīng)過全硫代修飾的反義寡核苷酸同樣也可以使靶miRNA沉默。

      本研究顯示miR-155在多發(fā)性骨髓瘤中具有重要的類似癌基因的作用,針對種子序列的t-antimiR-155顯著抑制多發(fā)性骨髓瘤的進展,可用于腫瘤的實驗治療研究,有一定的藥物開發(fā)前景。

      [參 考 文 獻]

      [1] Raab MS, Podar K, Breitkreutz I, et al. Multiple myeloma[J]. Lancet, 2009,374(9686):324-339.

      [2] Benetatos L, Vartholomatos G. Deregulated microRNAs in multiple myeloma[J]. Cancer, 2012, 118(4): 878-887.

      [3] Tassone P, Tagliaferri P, Rossi M, et al. Genetics and molecular profiling of multiple myeloma: novel tools for clinical management?[J]. Eur J Cancer, 2006, 42(11): 1530-1538.

      [4] Palumbo A, Anderson K. Multiple myeloma[J]. N Engl J Med, 2011, 364(11): 1046-1060.

      [5] Tassone P, Tagliaferri P, Teresa Fulciniti M, et al. Novel therapeutic approaches based on the targeting of microenvironment-derived survival pathways in human cancer: experimental models and translational issues[J]. Curr Pharm Des, 2007, 13(5): 487-496.

      [6] Lionetti M, Biasiolo M, Agnelli L, et al. Identification of micro-RNA expression patterns and definition of a microRNA/mRNA regulatory network in distinct molecular groups of multiple myeloma[J]. Blood, 2009, 114(25): e20-e26.

      [7] Lionetti M, Agnelli L, Lombardi L, et al. MicroRNAs in the pathobiology of multiple myeloma[J]. Curr Cancer Drug Targets, 2012, 12(7): 823-837.

      [8] Al Masri A, Price-Troska T, Chesi M, et al. MicroRNA expression analysis in multiple myeloma [J]. Blood, 2005, 106(11):1554.

      [9] Bakkus M, Dujardin S, Van Riet I, et al. MicroRNA expression analysis in multiple myeloma plasma cells and cell lines by a quantitative real-time PCR approach[J]. Blood, 2007, 110(11): 2472.

      [10] Pichiorri F, Suh SS, Ladetto M, et al. MicroRNAs regulate critical genes associated with multiple myeloma pathogenesis[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008, 105(35): 12885-12890.

      [11] Lane SW, Scadden DT, Gilliland DG. The leukemic stem cell niche: current concepts and therapeutic opportunities[J]. Blood, 2009, 114(6): 1150-1157.

      [12] Calin GA, Sevignani C, Dumitru CD, et al. Human microRNA genes are frequently located at fragile sites and genomic regions involved in cancers[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004, 101(9): 2999-3004.

      [13] Garzon R, Marcucci G, Croce CM. Targeting microRNAs in cancer: rationale, strategies and challenges[J]. Nat Rev Drug Discov, 2010, 9(10): 775-789.

      [14] Bartel DP. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions[J]. Cell, 2009, 136(2): 215-233.

      [15] Guo H, Ingolia NT, Weissman JS, et al. Mammalian microRNAs predominantly act to decrease target mRNA levels[J]. Nature, 2010, 466(7308):835-840.

      [16] Djuranovic S, Nahvi A, Green R. miRNA-mediated gene silencing by translational repression followed by mRNA deadenylation and decay[J]. Science, 2012, 336(6078): 237-240.

      [17] Obad S, dos Santos CO, Petri A, et al. Silencing of microRNA families by seed-targeting tiny LNAs[J]. Nat Genet, 2011, 43(4): 371-378.

      [18] 夏 盈,鄭 冬,張瓏涓,等. 重組人血管內(nèi)皮抑素對人多發(fā)性骨髓瘤細胞RPMI8226增殖和相關(guān)蛋白表達的影響[J]. 中國病理生理雜志,2013,29(5):826-832.

      [19] 馬泳泳,周淑娟,葛杭萍,等. 丙戊酸對RPMI8226和U266細胞增殖及IL-6/JAK/STAT信號通路的影響[J]. 中國病理生理雜志,2013,29(5):833-838.

      [20] Esquela-Kerscher A, Slack FJ. Oncomirs: microRNAs with a role in cancer[J]. Nat Rev Cancer,2006,6(4): 259-269.

      [21] Tili E, Michaille JJ, Adair B, et al. Resveratrol decreases the levels of miR-155 by upregulating miR-663, a microRNA targeting JunB and JunD[J]. Carcinogenesis, 2010, 31(9): 1561-1566.

      [22] Roccaro AM, Sacco A, Chen C, et al. microRNA expression in the biology, prognosis, and therapy of Waldenstrom macroglobulinemia[J]. Blood, 2009,113(18): 4391-4402.

      [23] Kong W, He L, Coppola M, et al. MicroRNA-155 regulates cell survival, growth, and chemosensitivity by targeting FOXO3a in breast cancer[J]. J Biol Chem, 2010, 285(23): 17869-17879.

      [24] Linnstaedt SD, Gottwein E, Skalsky RL, et al. Virally induced cellular microRNA miR-155 plays a key role in B-cell immortalization by Epstein-Barr virus[J]. J Virol, 2010, 84(22): 11670-11678.

      [25] Lee Y, Vassilakos A, Feng N, et al. GTI-2501, an antisense agent targeting R1, the large subunit of human ribonucleotide reductase, shows potent anti-tumor activity against a variety of tumors[J]. Int J Oncol, 2006, 28(2): 469-478.

      [26] Chi KN, Eisenhauer E, Fazli L, et al. A phase I pharmacokinetic and pharmacodynamic study of OGX-011, a 2′-methoxyethyl antisense oligonucleotide to clusterin, in patients with localized prostate cancer[J]. J Natl Canxer Inst, 2005, 97(17): 1287-1296.

      [27] Esau CC. Inhibition of microRNA with antisense oligonucleotides[J]. Methods, 2008, 44(1): 55-60.

      [28] Stenvang J, Petri A, Lindow M, et al. Inhibition of microRNA function by antimiR oligonucleotides[J]. Silence, 2012, 3: 1.

      [29] Zhang Y, Roccaro AM, Rombaoa C, et al. LNA-mediated anti-miR-155 silencing in low-grade B-cell lymphomas[J]. Blood, 2012, 120(8): 1678-1686.

      [30] Li Y, Zhu X, Gu J, et al. Anti-miR-21 oligonucleotide enhances chemosensitivity of leukemic HL60 cells to arabinosylcytosine by inducing apoptosis[J]. Hematology, 2010, 15(4): 215-221.

      猜你喜歡
      寡核苷酸反義漿細胞
      粗寡核苷酸的純化方法現(xiàn)狀及進展
      認(rèn)識反義詞
      反義疑問句小練
      椎旁軟組織髓外漿細胞瘤1例
      以喉炎為首發(fā)臨床表現(xiàn)的原發(fā)性漿細胞白血病1例并文獻復(fù)習(xí)
      這山望著那山高
      寡核苷酸藥物及寡核苷酸制備技術(shù)研究進展
      漿細胞唇炎1例
      原發(fā)性皮膚漿細胞瘤一例
      反相離子對色譜法對寡核苷酸藥物分析的進展
      虞城县| 土默特左旗| 华容县| 青阳县| 麻江县| 通河县| 上杭县| 白沙| 宁南县| 旬邑县| 梅河口市| 红安县| 临颍县| 丹阳市| 道真| 工布江达县| 浠水县| 岳阳市| 富裕县| 昌平区| 通城县| 桃源县| 瓦房店市| 札达县| 武穴市| 平武县| 开原市| 正镶白旗| 安西县| 定南县| 涿州市| 潞西市| 大埔县| 林口县| 新竹县| 石首市| 呼玛县| 阜宁县| 泾源县| 彰化县| 阿拉善左旗|