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      鼠疫耶爾森氏菌YopD抗原基因在大腸桿菌中的克隆表達(dá)

      2014-07-13 03:36:32申小娜張渝疆
      關(guān)鍵詞:耶爾森氏菌鼠疫

      郭 榮, 申小娜, 李 博, 陳 艷, 張渝疆

      (1新疆醫(yī)科大學(xué), 烏魯木齊 830011; 2新疆維吾爾自治區(qū)疾病預(yù)防控制中心, 烏魯木齊 830002; 3中國(guó)疾病預(yù)防控制中心, 北京 102206)

      鼠疫(Plague)是一種由鼠疫耶爾森氏菌(Yersinia pestis,簡(jiǎn)稱鼠疫菌)引起的一種自然疫源性疾病,是一種古老但至今為止仍嚴(yán)重威脅人類健康的烈性傳染病。20世紀(jì)80年代之后,在全球范圍內(nèi)鼠疫疫情呈明顯上升趨勢(shì)[1]。鼠疫免疫學(xué)診斷是鼠疫防治工作中的重要環(huán)節(jié),是快速、敏感診斷鼠疫的方法之一。近年來(lái),由于DNA疫苗能夠誘導(dǎo)出較好的體液免疫和細(xì)胞免疫而日益受到重視[2]。YopD是耶爾森氏菌屬特異蛋白,是由70 kb的毒力質(zhì)粒-pCD1編碼的,該編碼質(zhì)粒保守且對(duì)耶爾森氏菌毒力的發(fā)揮起到重要作用。YopD具有調(diào)節(jié)或轉(zhuǎn)運(yùn) Yops定位攻擊靶細(xì)胞的功能[3-4]。正是由于上述外膜蛋白的作用,使巨噬細(xì)胞不能有效吞噬病原體從而造成耶爾森氏菌僅在感染早期維持細(xì)胞內(nèi)寄生,而在以后階段主要是在細(xì)胞外存活和繁殖的現(xiàn)象。另有研究發(fā)現(xiàn),重組的 YopD 抗原免疫小鼠能抵抗鼠疫耶爾森氏菌 C12 株(無(wú)莢膜) 的攻擊(但不能抵抗同等劑量的有莢膜鼠疫耶爾森氏菌的攻擊)[5]。有關(guān)研究認(rèn)為,YopD可作為潛在的診斷靶點(diǎn)[6]。本研究選取鼠疫菌重要功能蛋白YopD進(jìn)行克隆表達(dá),為鼠疫潛在診斷靶點(diǎn)及新型疫苗的選擇奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1菌株與載體質(zhì)粒以云南玉龍鼠疫菌株(D106004)DNA為聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)-PCR的模板(由中國(guó)疾病預(yù)防控制中心傳染病預(yù)防控制所鼠疫室提供),表達(dá)質(zhì)粒pET-32a(+)和感受態(tài)菌株E.coliBL21(DE3)分別購(gòu)自Novagen和TaKaRa公司。

      1.2主要試劑及儀器Taq DNA聚合酶購(gòu)自上海生工生物工程公司,dNTP 購(gòu)自TaKaRa BIOTECH公司,蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)購(gòu)自BIO-RAD公司,DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)購(gòu)自TransGen公司,質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自天根生工生物工程公司,PCR產(chǎn)物純化試劑盒購(gòu)自QIAGEN公司,Easy PAGE Kit 購(gòu)自Genstar公司,限制性內(nèi)切酶(BamHI、XhoI)均購(gòu)自Biolabs公司,T4 DNA Ligase 購(gòu)自Promega公司,IPTG(異丙基-β-D-硫代半乳糖苷)購(gòu)自Bio Basic INC。PCR 基因擴(kuò)增儀、凝膠成像分析系統(tǒng)、核酸蛋白測(cè)定儀及垂直電泳儀均為Bio-Rad 公司產(chǎn)品,空氣震蕩培養(yǎng)箱為Forma Scientific 公司產(chǎn)品。

      1.3方法

      1.3.1 鼠疫相關(guān)蛋白的選取 通過(guò)查閱文獻(xiàn)及基因比對(duì)的方法,選取鼠疫重要功能蛋白進(jìn)行克隆表達(dá),蛋白YopD長(zhǎng)度921 bp,分子量52.8 ku,是耶爾森氏菌屬特異蛋白。

      1.3.2 重組表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建

      1.3.2.1 引物設(shè)計(jì) 根據(jù)NCBI公布的鼠疫菌D106004菌株的相應(yīng)基因序列進(jìn)行設(shè)計(jì)(表1),利用Primer5.0進(jìn)行引物設(shè)計(jì),引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。

      表1 擴(kuò)增所選蛋白編碼基因序列的引物

      1.3.2.2 PCR擴(kuò)增 以鼠疫菌D106004菌株DNA為模板及相應(yīng)引物擴(kuò)增目的基因,PCR擴(kuò)增體系25 μL。PCR反應(yīng)條件:95℃ 預(yù)變性5 min;94℃ 變性40 s,60℃ 退火40 s,72℃ 延伸1 min(35個(gè)循環(huán));72℃ 延伸5 min。產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)或置4℃?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.2.3 PCR產(chǎn)物電泳鑒定及純化 擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè),電泳條件為120 V,30 min,凝膠成像儀檢測(cè)拍照。將上述產(chǎn)物用 DNA 純化回收試劑盒純化回收,按操作手冊(cè)進(jìn)行,用 Nano Drop ND-1000 Spectrophotometer 檢測(cè)濃度。

      1.3.2.4 質(zhì)粒的提取 將購(gòu)買的PET-32a(+)用化學(xué)轉(zhuǎn)化法轉(zhuǎn)入E.coliBL21(DE3)中,挑取菌落于20 mL含氨芐抗生素(100 μg/mL)的LB液體培養(yǎng)基中,置搖床37℃培養(yǎng)至OD值約為2.0后,用小量質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒備用,操作方法按說(shuō)明書(shū)步驟進(jìn)行。產(chǎn)物以1%瓊脂糖凝膠電泳,紫外燈下觀察提取產(chǎn)物。

      1.3.2.5 目的基因與質(zhì)粒的雙酶切、連接反應(yīng) 將PCR 純化產(chǎn)物與載體質(zhì)粒PET-32a(+)分別進(jìn)行雙酶切,將酶切產(chǎn)物置于37℃過(guò)夜。隨后用DNA純化試劑盒純化,將純化后的目的基因和酶切載體質(zhì)粒進(jìn)行連接,酶切和連接參照產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)的方法進(jìn)行。

      1.3.2.6 轉(zhuǎn)化 采用化學(xué)轉(zhuǎn)化法將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入感受態(tài)細(xì)胞E.coliBL21(DE3)中,轉(zhuǎn)化的細(xì)菌在Amp100 μg/mL的LB培養(yǎng)基平板上進(jìn)行篩選。

      1.3.3 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) 將陽(yáng)性的克隆子接種在5 mL含Amp 100 μg/mL的LB液體培養(yǎng)基中,37℃,220 r/mim,培養(yǎng)3~4 h至OD值為0.3~0.4時(shí),取1 mL菌液作為誘導(dǎo)對(duì)照,向剩余菌液中加誘導(dǎo)劑IPTG(終濃度為1 mmol/L),37℃、160 r/min,誘導(dǎo)4 h。

      1.3.4 電泳分析 將誘導(dǎo)及未誘導(dǎo)菌液均進(jìn)行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝(SDS-PAGE)電泳(12%分離膠,5%積層膠)。 恒壓電泳,積層膠用80 V,30 min,1%考馬斯亮藍(lán)R250染色,于脫色液中脫色,直至背景無(wú)色,將凝膠放于成像儀下進(jìn)行成像分析。

      2 結(jié)果

      2.1目的基因的擴(kuò)增產(chǎn)物目的基因的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖如圖1所示,結(jié)果顯示擴(kuò)增產(chǎn)物片段長(zhǎng)度與理論片段相符。

      1: Marker; 2: YopD; 3: Blank圖1 目的基因的PCR擴(kuò)增結(jié)果

      2.2重組質(zhì)粒的酶切鑒定結(jié)果重組質(zhì)粒的酶切鑒定結(jié)果顯示,重組質(zhì)粒的雙酶切切出了2個(gè)片段,其中較大片段為載體片段,較小片段即目的基因片段,通過(guò)分子量比對(duì),切出的目的片段大小與實(shí)際基因的大小一致,說(shuō)明重組質(zhì)粒構(gòu)建成功(圖2)。

      1: Marker; 2: YopD+pET-32a(+)圖2 重組質(zhì)粒的酶切鑒定圖

      2.3重組質(zhì)粒的序列分析鑒定采用T7通用引物進(jìn)行測(cè)序,由北京生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成,以pET-YopD為例,測(cè)序結(jié)果如圖3所示。

      2.4重組鼠疫相關(guān)蛋白誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果重組蛋白誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果顯示,重組鼠疫相關(guān)蛋白有較好的表達(dá),與rYopD的理論分子量52.8 ku一致(圖4)。

      圖3 重組質(zhì)粒的測(cè)序結(jié)果圖

      1: Marker; 2: rYopD圖4 重組鼠疫相關(guān)蛋白誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果

      3 討論

      鼠疫診斷是鼠疫預(yù)防控制中的重要內(nèi)容和關(guān)鍵環(huán)節(jié),是發(fā)現(xiàn)鼠疫、證實(shí)鼠疫的重要手段,是治療鼠疫及防控鼠疫的主要依據(jù)。鼠疫檢測(cè)的準(zhǔn)確性與及時(shí)性關(guān)系到鼠疫防治工作的總體水平與成效。對(duì)于鼠疫而言,任何的誤診與漏診都可能帶來(lái)嚴(yán)重的公共衛(wèi)生事件。長(zhǎng)期以來(lái),我國(guó)鼠疫的免疫診斷是以天然F1為基礎(chǔ)的,當(dāng)然這些診斷方法在我國(guó)的鼠疫檢測(cè)中發(fā)揮了重要作用,但由于提取高純度的天然F1抗原比較困難,且在沒(méi)有參比診斷方法的情況下,其可信度將會(huì)受到質(zhì)疑,因此尋找鼠疫新的診斷靶點(diǎn)和發(fā)展新的診斷技術(shù)對(duì)于鼠疫這樣一種甲類傳染病是極為重要的。

      現(xiàn)研究發(fā)現(xiàn)的鼠疫桿菌中主要抗原成分或毒力因子除 F1(莢膜抗原)外,還有 Lcr(低鈣反應(yīng)蛋白,包括LcrG、LcrV、LcrH等)、 Yops(耶爾森氏菌外膜蛋白)、 Pgm(色素沉著) 和Pst 1(鼠疫菌素)等,這些毒力因子的編碼基因主要位于細(xì)菌質(zhì)粒上[7-9]。

      本研究通過(guò)查看文獻(xiàn)及基因比對(duì),選取了鼠疫重要功能蛋白——YopD,采用基因工程的技術(shù)手段進(jìn)行克隆表達(dá),其是由70 kb的毒力質(zhì)粒(pCD1)編碼的,是耶爾森氏菌屬特異蛋白。本實(shí)驗(yàn)使用原核表達(dá)系統(tǒng)pET-32a(+)作為表達(dá)質(zhì)粒的載體,經(jīng)過(guò)反復(fù)摸索誘導(dǎo)條件,該載體可以使重組蛋白在基因工程菌中得到穩(wěn)定高效的表達(dá),為鼠疫潛在診斷靶點(diǎn)及新型疫苗的選擇奠定了基礎(chǔ),這也將是今后研究工作的重點(diǎn)。

      參考文獻(xiàn):

      [1] 張春華,劉振才,閆衛(wèi)東,等.世界鼠疫態(tài)勢(shì)及流行特點(diǎn)[J].中國(guó)地方病防治雜 志,2001,16(5):280-282.

      [2] 韓岳,王希良,董梅,等.鼠疫菌重組質(zhì)粒pcDNATE/F1-V的構(gòu)建及其免疫效果的研究[J].免疫學(xué)雜志,2005,21(3):208-211.

      [3] Cornelis GR.Molecular and cell biology aspects of plague[J].Proc Natl Acad Sci USA,2000,97(16):8778.

      [4] Galan JE,Collmer A.Type Ⅲ secretion mahines:baterial devices for protein delivery into host cells[J].Science,1999,284:1322.

      [5] 江凌曉,楊瑞馥,俞守義.鼠疫疫苗的研究[J].中國(guó)地方病學(xué)雜志,2004,23(3):285-287.

      [6] Li B,Guo Y,Guo Z,et al.Serologic survey of the sentinel animals for Plague surveillance and screening for complementary diagnostic markers to F1 antigen by protein microarray[J]. Am J Trop Med Hyg,2008,79:799-802.

      [7] Protsenko OA, Anisimov PI, Mozharov OT, et al. Detection and characterization of Yersinia pestis plasmids determining pesticin I, Fraction I antigen, and “Mouse” toxin synthesis[J]. Genetika, 1983,19:1081-1090.

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      [9] Sodeinde OA, Goguen J. Genetic analysis of the 9.5-kilobase virulence plasmid of Yersinia pestis [J]. Infect Immun , 1988, 56:2743-2748.

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