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    條斑紫菜抗壞血酸過氧化酶基因的克隆及生物信息學(xué)分析

    2014-05-23 22:44陳旸升等
    天津農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年4期
    關(guān)鍵詞:生物信息學(xué)克隆

    陳旸升等

    摘 要:結(jié)合電子克隆及RT-PCR技術(shù)獲得條斑紫菜(Porphyrayezoensis)過氧化物酶基因。該基因cDNA序列長(zhǎng)847 bp,包含編碼245個(gè)氨基酸的開放閱讀框。生物信息學(xué)分析結(jié)果顯示,該基因編碼蛋白無信號(hào)肽序列,與高等植物擬南芥的細(xì)胞質(zhì)抗壞血酸過氧化物酶蛋白序列同源性較高,在細(xì)胞質(zhì)中行使功能。此外,該基因的進(jìn)化歷程基本符合植物從低等到高等的進(jìn)化過程。

    關(guān)鍵詞:條斑紫菜;抗壞血酸過氧化物酶;克??;生物信息學(xué)

    中圖分類號(hào):S968.43+1 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A DOI編碼:10.3969/j.issn.1006-6500.2014.04.003

    植物在干旱、高鹽、低溫、高溫等逆境中產(chǎn)生過量的活性氧基團(tuán)(Reactive oxygen species,ROS),細(xì)胞內(nèi)高濃度的ROS會(huì)引起細(xì)胞凋亡甚至壞死??箟难徇^氧化酶(Ascorbate peroxidase,APX)是一類清除體內(nèi)過氧化氫的酶,對(duì)于植物和藻類不可缺少,它保護(hù)葉綠體及其他細(xì)胞器免受過氧化氫和由過氧化氫分解的羥基造成損傷。APX是植物抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)中的關(guān)鍵酶之一[1]。APX屬于多基因家族,由植物細(xì)胞質(zhì)、葉綠體、線粒體、過氧化物酶等細(xì)胞器中的多條同源基因組成[2]。大量研究表明,非生物脅迫條件下,植物以APX基因迅速表達(dá)、體內(nèi)抗壞血酸含量變化來響應(yīng)脅迫信號(hào)[3-6]。同時(shí),大量APX基因過表達(dá)和抑制表達(dá)的轉(zhuǎn)基因植物均不同程度地提高了對(duì)氧化脅迫環(huán)境的抵抗能力[7-9]。

    條斑紫菜(Porphyrayezoensis)屬于紅毛藻綱,由于它可以小規(guī)模培養(yǎng),生長(zhǎng)周期短(實(shí)驗(yàn)室條件2~3月),基因組比較?。?60 Mbp),適合作為研究海藻生理學(xué)和分子生物學(xué)的模式生物而得到廣泛關(guān)注。目前,已經(jīng)可以得到條斑紫菜配子體和孢子體的大量EST序列。條斑紫菜生長(zhǎng)在潮間帶,長(zhǎng)期暴露于空氣,處于高鹽等惡劣環(huán)境中,這也使它成為研究藻類響應(yīng)非生物脅迫的優(yōu)良材料[10]。本研究克隆了條斑紫菜APX基因的cDNA序列,進(jìn)行了序列測(cè)定和生物信息學(xué)分析,為該基因在藻類中的作用機(jī)理和利用該基因進(jìn)行作物耐鹽轉(zhuǎn)基因改良奠定基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 材料與試劑

    條斑紫菜葉狀體采自大連旅順黃金山近海海域。Qiagen Rneasy Plant Mini試劑盒購自Qiagen公司,PrimeScript II 1st Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒、TAKARA LA Taq和dNTPs購自TAKARA公司,引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,DEPC、乙醇等其他試劑均購自國內(nèi)外相關(guān)公司。

    1.2 條斑紫菜葉狀體總RNA提取

    取100 mg材料經(jīng)液氮研磨成粉末,用RNeasy Plant Mini試劑盒提取總RNA,按實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)書進(jìn)行,電泳檢測(cè)RNA質(zhì)量和提取量,-20 ℃保存。

    1.3 引物設(shè)計(jì)及基因克隆

    在條斑紫菜EST數(shù)據(jù)庫中以ascorbate peroxidase為關(guān)鍵詞進(jìn)行搜索,將得到的結(jié)果下載存盤,利用DNAman軟件進(jìn)行序列拼接,重疊序列拼接后用NCBI的ORF Finder在線預(yù)測(cè)開放閱讀框,推測(cè)其編碼的氨基酸序列。針對(duì)開放閱讀框設(shè)計(jì)一對(duì)引物:上游5`-CACCGCTGCCTGATCGTGCT-3`,下游5`-CAAACAACCAAGTGGCGGCTAC-3`,預(yù)計(jì)擴(kuò)增長(zhǎng)度847 bp,包含APX基因完整ORF。

    取總RNA2 μL,以O(shè)ligo(dT)為引物,用PrimeScriptTM II 1st Strand cDNA Synthesis Kit試劑盒按說明書合成cDNA第一鏈。以合成的第一鏈為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系為50 μL,其中10×LA PCR Buffer II (Mg2+ Plus)5 μL,dNTP Mixture (各2.5 mmol·L-1)8 μL,上、下游引物各1 μL,LA taq(5 U·μL-1)0.5 μL,模板2 μL,水32.5 μL。

    PCR擴(kuò)增程序如下:94 ℃、3 min;94 ℃、30 s,55 ℃、30 s,72 ℃、1 min,30個(gè)循環(huán);72 ℃、10 min。反應(yīng)后取5 μL產(chǎn)物電泳。將PCR產(chǎn)物送生工測(cè)序。

    1.4 生物信息學(xué)分析

    利用NCBI(www.ncbi.nlm.nih.gov)的BLAST軟件對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行分析,用SIGNALp4.0分析信號(hào)肽。收集NCBI數(shù)據(jù)庫中的不同物種的APX序列,使用clustalW程序進(jìn)行多序列比對(duì),保守結(jié)構(gòu)域分析利用prosite(http://prosite.expasy.org/)和NCBI中的CDD預(yù)測(cè)工具(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/)進(jìn)行預(yù)測(cè),然后用MEGA5.1進(jìn)化分析樹構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 條斑紫菜APX基因的克隆與序列測(cè)定

    以ascorbate peroxidase為關(guān)鍵詞在條斑紫菜EST數(shù)據(jù)庫中檢索,得到AV43956、AV433118、AU189028、AU189855、AV433538等多條高度相似并彼此重疊的EST序列,拼接后得到一條1 041 bp的序列。PCR產(chǎn)物大小為847 bp(圖1、圖2),與預(yù)期大小相符,含有完整的ORF。

    2.2 條斑紫菜APX基因的生物信息學(xué)分析

    條斑紫菜APX基因編碼蛋白的保守結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)(圖3)。此蛋白具有高度保守的底物結(jié)合區(qū)域,屬于植物過氧化物酶超家族的一員。

    擬南芥中的8種APX蛋白分布于不同的細(xì)胞器內(nèi),成員之間同源性較低。選取這8種APX蛋白的氨基酸序列與條斑紫菜APX蛋白的氨基酸序列進(jìn)行比對(duì)。結(jié)果表明,條斑紫菜APX蛋白與擬南芥細(xì)胞質(zhì)基質(zhì)中的APX蛋白(AtAPx01,AtAPx02)同源性最高,為51%~54%。該基因與其他幾條APX蛋白的氨基酸序列同源性較低,為12%~48%。信號(hào)肽分析結(jié)果顯示,此序列不含信號(hào)肽,所以這條APX基因可能為細(xì)胞質(zhì)基質(zhì)APX。

    將條斑紫菜APX編碼蛋白與擬南芥(AtAPX)、辣椒(CfAPX)、番茄(SlAPX)、棉花(GhAPX)、甜菜(BvAPX)、大豆(GmAPX)、水稻(OsAPX)、玉米(ZmAPX)、大麥(HvAPX)、小立碗蘚(PpAPX)、兩種溫泉紅藻(CcAPX,GaAPX)、萊茵衣藻(CrAPX)、小球藻(CvAPX)的蛋白進(jìn)行同源分析,然后用MEGA軟件鄰接法(NJ法)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖4)。從結(jié)果可以看出,雙子葉植物聚為一類,單子葉植物水稻、玉米、大麥,聚為一類。苔蘚植物小立碗蘚處在藻類與高等植物之間的過渡位置。條斑紫菜與兩種溫泉紅藻親緣關(guān)系較近。綠藻處于進(jìn)化樹的底部。其中紅藻和綠藻中的單細(xì)胞藻類分別處于各自分枝的底部。聚類結(jié)果與來源物種的系統(tǒng)發(fā)育模式一致。節(jié)點(diǎn)自展值較高,可以認(rèn)為得到的進(jìn)化樹結(jié)果可信。由此可見,抗壞血酸過氧化物酶基因的進(jìn)化歷程基本符合植物從低等到高等的進(jìn)化過程。

    3 結(jié) 論

    運(yùn)用電子克隆及RT-PCR技術(shù)得到條斑紫菜葉狀體抗壞血酸過氧化物酶基因的cDNA序列。該基因編碼蛋白無信號(hào)肽,其蛋白結(jié)構(gòu)域與高等植物相似,與其他藻類抗壞血酸過氧化物酶蛋白親緣關(guān)系接近,于細(xì)胞質(zhì)中行使功能。由于藻類中的相關(guān)報(bào)道較少,本研究為藻類中抗壞血酸相關(guān)生理生化過程的研究奠定了基礎(chǔ)。

    參考文獻(xiàn):

    [1] Shigeoka S. Regulation and function of ascorbate peroxidase isoenzymes[J]. J Exp Bot, 2002, 53(372): 1 305-1 319.

    [2] Jimenez A. Evidence for the presence of the ascorbate-glutathione cycle in mitochondria and peroxisomes of pea leaves[J]. Plant Physiol, 1997, 114(1):275-284.

    [3] Hemavathi. Enhanced ascorbic acid accumulation in transgenic potato confers tolerance to various abiotic stresses[J]. Biotechnol Lett, 2010,32(2): 321-330.

    [4] Diaz-Vivancos P. Ectopic expression of cytosolic superoxide dismutase and ascorbate peroxidase leads to salt stress tolerance in transgenic plums[J]. Plant Biotechnol J, 2013, 11(8):976-985.

    [5] Zhang Z. Gene knockout study reveals that cytosolic ascorbate peroxidase 2(OsAPX2) plays a critical role in growth and reproduction in rice under drought, salt and cold stresses[J]. PLoS One, 2013,8(2): 57 472.

    [6] Li Z Q, Li J X, Zhang G F. Expression regulation of plant ascorbate peroxidase and its tolerance to abiotic stresses[J]. Yi Chuan, 2013,35(1): 45-54.

    [7] Danna C H. Thylakoid-bound ascorbate peroxidase mutant exhibits impaired electron transport and photosynthetic activity[J]. Plant Physiol, 2003,132(4):2 116-2 125.

    [8] Wang W, Vinocur B, Altman A. Plant responses to drought, salinity and extreme temperatures: towards genetic engineering for stress tolerance[J]. Planta, 2003,218(1): 1-14.

    [9] Gupta A S. Overexpression of superoxide dismutase protects plants from oxidative stress (induction of ascorbate peroxidase in superoxide dismutase-overexpressing plants)[J]. Plant Physiol, 1993,103(4):1 067-1 073.

    [10] Uji T. Molecular characterization and expression analysis of sodium pump genes in the marinered alga Porphyra yezoensis[J]. Mol Biol Rep, 2012,39(8): 7 973-7 980.

    將條斑紫菜APX編碼蛋白與擬南芥(AtAPX)、辣椒(CfAPX)、番茄(SlAPX)、棉花(GhAPX)、甜菜(BvAPX)、大豆(GmAPX)、水稻(OsAPX)、玉米(ZmAPX)、大麥(HvAPX)、小立碗蘚(PpAPX)、兩種溫泉紅藻(CcAPX,GaAPX)、萊茵衣藻(CrAPX)、小球藻(CvAPX)的蛋白進(jìn)行同源分析,然后用MEGA軟件鄰接法(NJ法)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖4)。從結(jié)果可以看出,雙子葉植物聚為一類,單子葉植物水稻、玉米、大麥,聚為一類。苔蘚植物小立碗蘚處在藻類與高等植物之間的過渡位置。條斑紫菜與兩種溫泉紅藻親緣關(guān)系較近。綠藻處于進(jìn)化樹的底部。其中紅藻和綠藻中的單細(xì)胞藻類分別處于各自分枝的底部。聚類結(jié)果與來源物種的系統(tǒng)發(fā)育模式一致。節(jié)點(diǎn)自展值較高,可以認(rèn)為得到的進(jìn)化樹結(jié)果可信。由此可見,抗壞血酸過氧化物酶基因的進(jìn)化歷程基本符合植物從低等到高等的進(jìn)化過程。

    3 結(jié) 論

    運(yùn)用電子克隆及RT-PCR技術(shù)得到條斑紫菜葉狀體抗壞血酸過氧化物酶基因的cDNA序列。該基因編碼蛋白無信號(hào)肽,其蛋白結(jié)構(gòu)域與高等植物相似,與其他藻類抗壞血酸過氧化物酶蛋白親緣關(guān)系接近,于細(xì)胞質(zhì)中行使功能。由于藻類中的相關(guān)報(bào)道較少,本研究為藻類中抗壞血酸相關(guān)生理生化過程的研究奠定了基礎(chǔ)。

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    [9] Gupta A S. Overexpression of superoxide dismutase protects plants from oxidative stress (induction of ascorbate peroxidase in superoxide dismutase-overexpressing plants)[J]. Plant Physiol, 1993,103(4):1 067-1 073.

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    將條斑紫菜APX編碼蛋白與擬南芥(AtAPX)、辣椒(CfAPX)、番茄(SlAPX)、棉花(GhAPX)、甜菜(BvAPX)、大豆(GmAPX)、水稻(OsAPX)、玉米(ZmAPX)、大麥(HvAPX)、小立碗蘚(PpAPX)、兩種溫泉紅藻(CcAPX,GaAPX)、萊茵衣藻(CrAPX)、小球藻(CvAPX)的蛋白進(jìn)行同源分析,然后用MEGA軟件鄰接法(NJ法)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖4)。從結(jié)果可以看出,雙子葉植物聚為一類,單子葉植物水稻、玉米、大麥,聚為一類。苔蘚植物小立碗蘚處在藻類與高等植物之間的過渡位置。條斑紫菜與兩種溫泉紅藻親緣關(guān)系較近。綠藻處于進(jìn)化樹的底部。其中紅藻和綠藻中的單細(xì)胞藻類分別處于各自分枝的底部。聚類結(jié)果與來源物種的系統(tǒng)發(fā)育模式一致。節(jié)點(diǎn)自展值較高,可以認(rèn)為得到的進(jìn)化樹結(jié)果可信。由此可見,抗壞血酸過氧化物酶基因的進(jìn)化歷程基本符合植物從低等到高等的進(jìn)化過程。

    3 結(jié) 論

    運(yùn)用電子克隆及RT-PCR技術(shù)得到條斑紫菜葉狀體抗壞血酸過氧化物酶基因的cDNA序列。該基因編碼蛋白無信號(hào)肽,其蛋白結(jié)構(gòu)域與高等植物相似,與其他藻類抗壞血酸過氧化物酶蛋白親緣關(guān)系接近,于細(xì)胞質(zhì)中行使功能。由于藻類中的相關(guān)報(bào)道較少,本研究為藻類中抗壞血酸相關(guān)生理生化過程的研究奠定了基礎(chǔ)。

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    [6] Li Z Q, Li J X, Zhang G F. Expression regulation of plant ascorbate peroxidase and its tolerance to abiotic stresses[J]. Yi Chuan, 2013,35(1): 45-54.

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    [9] Gupta A S. Overexpression of superoxide dismutase protects plants from oxidative stress (induction of ascorbate peroxidase in superoxide dismutase-overexpressing plants)[J]. Plant Physiol, 1993,103(4):1 067-1 073.

    [10] Uji T. Molecular characterization and expression analysis of sodium pump genes in the marinered alga Porphyra yezoensis[J]. Mol Biol Rep, 2012,39(8): 7 973-7 980.

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