廖明娟 藺萬煌 曹 庸
LIAO Ming-juan 1 LIN Wan-h(huán)uang 1 CAO Yong 2
歐陽文3 周雙德1 李昌珠1
OUYANG Wen 3 ZHOU Shuang-de 1 LI Chang-zhu 1
(1.湖南農(nóng)業(yè)大學植物激素與生長發(fā)育湖南省重點實驗室,湖南 長沙 410128;2.華南農(nóng)業(yè)大學食品學院,廣東 廣州 510642;3.湖南中醫(yī)藥大學藥學院,湖南 長沙 410208;4.湖南省林業(yè)科學院,湖南 長沙 410004)
(1.Key Laboratory of Phytohormones and Growth Development,Hunan Agricultural University,Changsha,Hunan 410128,China;2.College of Food Science,South China Agricultural University,Guangzhou,Guangdong 510642,China;3.Pharmaceutical College of Hunan University of Chinese Medicine,Changsha,Hunan 410208,China;4.Hunan Academy of Forestry,Changsha,Hunan 410004,China)
蓖麻(Ricinus communis L.)是世界十大油料作物之一,去油后粕中除含有豐富的蛋白質(zhì)、氨基酸及微量元素等多種營養(yǎng)物質(zhì)外,還含有0.23%的蓖麻堿[1]。蓖麻堿是一種小分子生物堿,具有較強的毒性[2]。研究[3]表明,人體攝入蓖麻堿后可造成惡心、嘔吐、出血性胃腸炎、肝臟和腎功能損害、抽搐、昏迷、低血壓、呼吸抑制甚至死亡。當飼料中蓖麻堿含量超過0.01%時可抑制雞的生長,含量超過0.1%時可使雞麻痹致死[3]。
目前,國內(nèi)外主要使用物理、化學、微生物法和聯(lián)合法來對蓖麻粕粕脫毒[4-7]。雖已取得了一定的成效,但同時也存在各方面的弊端和不足,物理脫毒法工藝一般比較復雜,耗能較大;化學脫毒工藝較簡單,但是需添加化學物質(zhì),營養(yǎng)成分受損;微生物發(fā)酵法脫毒時間過長,且不能保證其營養(yǎng)成分不流失。因此各種脫毒方法很難在實際生產(chǎn)中進行工業(yè)化生產(chǎn),故開發(fā)蓖麻脫毒的新工藝成為該領域研究的熱點。
本研究擬采用一種新型的具有自主產(chǎn)權(quán)的連續(xù)相變萃取裝置[8]去除蓖麻粕中的蓖麻堿,利用該裝置具有密閉、高效低溫和低壓的特點,探討一種簡單高效、省時、耗能低和營養(yǎng)成分不流失的新型脫毒工藝。通過考察溫度、時間和萃取壓力對蓖麻堿去除率的影響,對蓖麻堿去除工藝條件進行優(yōu)化,為蓖麻粕用作蛋白飼料提供技術(shù)基礎。
蓖麻粕:油含量低于3%,湖南省金匯有限公司;
電子天平:AL104型,梅特勒—托利多國際貿(mào)易(上海)有限公司;
電熱恒溫鼓風干燥箱:DHG-9070型,上海一恒科學儀儀器有限公司;
連續(xù)相變萃取:珠海共同機械有限公司;
冷凍干燥機:FD-1DF型,北京德天佑科技發(fā)展有限公司;
高效液相色譜儀:LC-10A型,日本島津公司。
1.2.1 蓖麻堿的提取及結(jié)構(gòu)鑒定 蓖麻粕按1∶10(m∶V)的比例加入甲醇,超聲(超聲頻率為40 k Hz,超聲功率為250 W)提取0.5 h,重復2次,將粗提物濃縮凍干后,采用中壓柱層析色譜法以及高效制備液相色譜法進行分離,得到蓖麻堿。首先采用高效液相色譜分析單體化合物的純度,然后采用核磁共振儀測定化合物的磁共振譜(1H-NMR、13CNMR),鑒定單體化學結(jié)構(gòu)。
1.2.2 蓖麻堿高效液相色譜(HPLC)分析條件 反相色譜柱C18(250 mm×4.6 mm,25μm);流動相:乙腈—水(1∶9),流速:1 m L/min;檢測波長:308 nm;進樣量:10 L[9]。
1.2.3 標準曲線的繪制 準確配制1 mg/m L蓖麻堿標準溶液,然 后 將 其 分 別 配 制 成 濃 度 為 0.8,0.6,0.4,0.2,0 mg/m L的標樣進行HPLC檢測,制作標準曲線。
1.2.4 響應面優(yōu)化連續(xù)相變萃取去除蓖麻堿的試驗設計
在單因素試驗基礎上,根據(jù)Box-Behnken中心組合設計原理,選取脫毒溫度、時間和萃取壓力為考察因素,試驗因素水平見表1,以蓖麻堿去除率為響應值,進行中心組合試驗設計。采用Design-expert 7.0對所得數(shù)據(jù)進行分析處理。
1.2.5 營養(yǎng)成分的測定
(1)粗蛋白測定:根據(jù)GB/T 6432—1994進行;
(2)粗纖維測定:根據(jù)GB/T 6434—2006進行;
(3)粗脂肪測定:根據(jù)GB/T 6433—2006進行;
(4)粗灰分測定:根據(jù)GB/T 6438—2007進行;
(5)鈣測定:根據(jù)GB/T 6436—2002進行;
(6)磷測定:根據(jù)GB/T 6437—2002進行。
表1 Box-Behnken試驗設計因素與水平Table 1 Factors and their level of Box-behnken experimental design
由于目前市場上尚無法購得蓖麻堿標準品,本試驗參考張海悅等的方法[10]以確定蓖麻堿。然后再對該物質(zhì)進行核磁共振分析,氫譜和碳譜結(jié)果為1H-NMR(600 MHz,CDCl3)δ:6.073(1H,d,J=7.5 Hz,5-H),7.535(1H,d,J=7.5 Hz,6-H),4.011(3H,s,OCH3),3.564(3H,s,NCH3)。13C-NMR(150 MHz,CDCl3)δ:161.286(C-2),88.717(C-3),172.363(C-4),93.363(C-5),143.444(C-6),57.111(- OCH3),37.551(-NCH3),113.614(-CN)。分析可得其化學式為3-氰基-4-甲氧基-1-甲基-2-吡啶酮,分子式為C8H8N2O2,確定該物質(zhì)為蓖麻堿。此結(jié)果與張海悅等[10]的報道相吻合。
利用本試驗提取得到的蓖麻堿作為標準品,采用HPLC檢測蓖麻堿含量,見圖1。以蓖麻堿含量為橫坐標,峰面積為縱坐標,繪制標準曲線,其回歸方程為y=7 005.2x+475 401(R2=0.996 7)。
圖1 蓖麻堿的HPLC圖譜Figure 1 HPLC diagram of ricinine
根據(jù)Box-Behnken中心組合設計原理,選用溫度、時間和萃取壓力3個影響因素,以蓖麻堿去除率為響應值(R),響應面試驗設計及結(jié)果見表2。
利用Design-Expert對試驗數(shù)據(jù)進行分析,得到溫度、時間、萃取壓力3個因素的三元二次回歸模型:
對此回歸模型進行方差分析,結(jié)果見表3。由表3可知,該模型達到顯著性差異(P=0.020 5),失擬項不顯著(P=0.071 2)。R2=0.826 2,說明該模型能解釋82.62%的響應值的變化,各因素值和響應值之間的關(guān)系可以用該模型函數(shù)化,并不需要引入更高次數(shù)的項,可以用該模型代替試驗點對試驗結(jié)果進行分析和預測。其中,B和A2為顯著性因素,即溫度、時間和萃取壓力3個影響因素中,時間對蓖麻堿去除率的影響力最為顯著(P=0.004 4)。
表2 Box-Benhnken試驗設計及結(jié)果Table 2 Box-Benhnken experimental design arrangement and experimental results
表3 回歸模型方差分析表Table 3 ANOVA for the regression model
為了使各因素及其相互作用能有效直觀的反映,采用Design-expert分析軟件繪制響應面曲線及等高值線,見圖2~4。由圖2可知,當時間不變時,蓖麻堿的去除率隨溫度升高而增大,到達最高點后又隨之減小;當溫度不變時,蓖麻堿的去除率隨時間的延長呈現(xiàn)先增大后下降的趨勢。由圖3可知,當保持溫度不變時,蓖麻堿去除率隨著萃取壓力的升高先降低;當萃取壓力一定時,蓖麻堿去除率隨溫度的升高呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢。由圖4可知,當時間保持一定時,蓖麻堿去除率隨著萃取壓力的升高而呈現(xiàn)逐漸升高的趨勢;在萃取壓力一定時,蓖麻堿去除率隨著時間的升高呈現(xiàn)先上升后降低的趨勢。
為了檢驗預測的優(yōu)化培養(yǎng)條件,按照模型給出的優(yōu)化條件:溫度、時間、泵壓相對應的編碼值分別為0.34,0.47,-1,將其轉(zhuǎn)化為實際參數(shù)值,得出溫度為76.8℃,時間為2.25 h,萃取壓力為0.1 MPa,此時蓖麻堿去除率的模型理論預測值為92.01%。采用以上所得最佳脫毒條件進行驗證實驗,經(jīng)3次平行實驗測得蓖麻堿去除率為91.75%與預測值相比,相對誤差為0.002 6,表明預測值和實際值有很好的擬合性,證明該響應面分析方法優(yōu)化得到的工藝參數(shù)準確可靠,具有較高的應用價值。
圖2 溫度和時間對蓖麻堿去除率影響的曲面和等高線Figure 2 Curved surfaces and contours affected by temperature and time on the removal of ricinine
圖3 溫度和萃取壓力對蓖麻堿去除率影響的曲面和等高線Figure 3 Curved surfaces and contours affected by temperature and extracting pressure on the removal of ricinine
由表4可知,除粗脂肪外,脫毒前后其余各營養(yǎng)成分并無明顯變化,這是由于脂肪類物質(zhì)可能在甲醇萃取過程中被帶至解析斧中,使粗蛋白含量相對有所增加,其他營養(yǎng)成分變化差異并不明顯。粗脂肪的去除,可以防止蓖麻粕蛋白的氧化酸敗,有利于長期保存。整體來說,該脫毒方法對蛋白和礦物質(zhì)元素等營養(yǎng)成分變化并不明顯。脫毒后蓖麻粕的蛋白質(zhì)含量為39.30%。
表4 脫毒前后各成分含量的變化Table 4 Content of each componential before and after detoxification /%
蓖麻餅粕中含有約0.36%的蓖麻堿,在作為飼料之前必須進行脫毒處理。本研究主要應用新型的脫毒工藝——連續(xù)相變萃取法脫毒,在單因素的基礎上,重點對脫毒時間、溫度和萃取壓力及其相互作用進行探討,經(jīng)響應面優(yōu)化法獲得蓖麻堿脫毒的最佳條件為脫毒溫度76.8℃,時間2.25 h,萃取壓力0.1 MPa。在該條件下蓖麻堿去除率為91.75%,此時蓖麻堿含量約為0.03%。在此條件下經(jīng)脫毒后的蓖麻粕無需過多的后續(xù)處理即可直接添加到飼料中,添加量可達30%。脫毒后的蓖麻粕跟脫毒前的蓖麻粕除粗脂肪外其余營養(yǎng)成分并沒有太大變化,在保證了粗蛋白等主要養(yǎng)分不流失的情況下,達到了很好的脫毒效果,為蓖麻粕作為動物蛋白飼料奠定了基礎,同時也為緩解蛋白飼料供需偏緊的局面[11,12]和大豆的大量進口[13,14]帶來福音。
圖4 萃取壓力和時間對蓖麻堿去除率影響的曲面和等高線Figure 4 Curved surfaces and contours affected by extracting pressure and time on the removal of ricinine
應用連續(xù)相變萃取蓖麻堿脫毒條件,具有以下優(yōu)勢:① 對比現(xiàn)有脫毒工藝[1,4,6],該工藝僅以甲醇為萃取劑,且脫毒后蓖麻粕中甲醇殘留量少,只需在60℃烘箱進行揮發(fā)即可直接添加到飼料中,無需水洗等過程。② 萃取劑可反復回收利用,與常規(guī)方法相比,該工藝流程簡單、可操作性強,生產(chǎn)成本低,溶劑消耗和能耗低,脫毒效率高,營養(yǎng)成分不流失,污染小,重復性好,可實現(xiàn)大規(guī)模工業(yè)化連續(xù)性生產(chǎn)。③ 整個脫毒過程在密閉條件下進行,因此在保證高去除率的情況下,還能保證營養(yǎng)成分的不流失。④ 中國蓖麻粕資源豐富,此研究可有效提高蓖麻粕的綜合利用效率,同時也解決了蛋白飼料緊缺的一大問題。
1 Anadan S,Kumar G K,Ghosh J,et al.Effect of different physical and chemical treatments on detoxification of ricin in castor cake[J].Animal Feed Science Technological,2005,120(1):159~168.
2 劉進進,袁慧慧,王金威,等.蓖麻不同部位蓖麻堿的含量及其殺蟲活性[J].農(nóng)藥學學報,2013,15(2):239~242.
3 林啟壽.中草藥成分化學[M].北京:科學出版社,1977:706.
4 Dubois J,Piccrilli A,Magne J,et al.Detoxification of castor meal through reactive seed crushing[J].Industrial Crops and Products,2013(43):194~199.
5 De Oliveira A S,Campos J,Oliveira M,et al.Nutrient digestibility,nitrogen metabolism and hepatic function of sheep fed diets containing solvent or expeller castorseed meal treated with calcium hydroxide[J].Animal Feed Science and Technology,2010,158(1):15~28.
6 Barnes D J,Baldwin B S,Braasch D A.Degradation of ricin in castor seed meal by temperature and chemical treatment[J].In-dustrial Crops and Products,2009,29(2):509~515.
7 許振華,邵桂林,聶紀萍.微生物法對蓖麻餅去毒的研究[J].湖北民族學院學報(自然科學版),2007(4):451~454.
8 曹庸,劉漢槎,周雙德,等.一種多功能連續(xù)相變萃取裝置:中國,CN201310306553.5.X[P].2013—07—22.
9 陳海霞,陳祥勝.氯仿萃取法制備蓖麻堿[J].湖北中醫(yī)藥大學學報,2011,13(5):37~38.
10 張海悅,趙增琳,徐鶴.蓖麻堿的提取純化及結(jié)構(gòu)分析[J].分析化學,2010,38(6):916.
11 彭海蘭.2011年三季度蛋白粕飼料走勢分析[J].飼料與畜牧:新飼料,2011(6):58~61.
12 李祥.飼料資源的開發(fā)及相關(guān)技術(shù)[J].當代畜禽養(yǎng)殖業(yè),2012(7):52~58.
13 康立寧,田志剛,王曙文,等.經(jīng)濟全球化格局下中國大豆產(chǎn)業(yè)的發(fā)展路徑及策略選擇[J].食品與機械,2008,24(4):161~165.
14 江連洲.大豆加工利用現(xiàn)狀及發(fā)展趨勢[J].食品與機械,2000(1):7~10.