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      假單胞菌中影響碳代謝的三種途徑及其調(diào)控機(jī)制

      2014-05-02 09:17:28戰(zhàn)崳華鄧志平
      生物技術(shù)進(jìn)展 2014年2期
      關(guān)鍵詞:氧化酶銅綠碳源

      谷 偉,戰(zhàn)崳華,鄧志平,陸 偉

      細(xì)菌已經(jīng)進(jìn)化出一些復(fù)雜的機(jī)制來(lái)適應(yīng)環(huán)境的改變,碳代謝抑制就是其中之一。最早發(fā)現(xiàn)的碳代謝抑制現(xiàn)象是大腸桿菌中糖的分級(jí)吸收。碳代謝抑制是細(xì)菌重要的全局調(diào)控現(xiàn)象,當(dāng)細(xì)菌處于多種碳源同時(shí)存在的條件時(shí),碳代謝抑制允許其優(yōu)先利用優(yōu)勢(shì)碳源,同時(shí)抑制劣勢(shì)碳源的利用。碳代謝抑制也決定著細(xì)菌生長(zhǎng)速度和碳源的選擇性吸收,能夠優(yōu)化細(xì)菌自身代謝,提高其在自然環(huán)境中的競(jìng)爭(zhēng)力。碳代謝抑制是一個(gè)復(fù)雜的調(diào)控過(guò)程,在不同菌種中的分子機(jī)制各異。大腸桿菌(Escherichia coli)和枯草芽胞桿菌(Bacillus subtilis)中的碳代謝抑制機(jī)制是誘發(fā)排斥和cAMP依賴的轉(zhuǎn)錄,但這些機(jī)制在假單胞菌(Pseudomonas)中并非主要作用。

      研究表明,假單胞菌中涉及三種碳代謝抑制的調(diào)控系統(tǒng),分別是CbrAB/Crc系統(tǒng)、CyoABCDE系統(tǒng)及PTSNtr系統(tǒng)。這些系統(tǒng)同時(shí)存在,各自獨(dú)立同時(shí)系統(tǒng)間存在聯(lián)系。這些系統(tǒng)已經(jīng)在惡臭假單胞菌(P.putica)和銅綠假單胞菌(P.aeruginosa)中得到深入研究。本文將對(duì)假單胞菌中的三種涉及碳代謝抑制的調(diào)控系統(tǒng)的機(jī)制進(jìn)行闡述。

      1 Cbr AB/Crc系統(tǒng)

      1.1 Cbr AB/Crc 系統(tǒng)的組成

      CbrAB/Crc系統(tǒng)由維持細(xì)菌碳氮平衡的雙組份CbrA/CbrB、非編碼的sRNA以及全局調(diào)控子Crc組成。CbrA為感應(yīng)蛋白,具有磷酸激酶功能,可感知環(huán)境因子的信號(hào),并相應(yīng)地催化自身以及CbrB的磷酸化。CbrB為效應(yīng)蛋白,它正調(diào)控sRNA,如 CrcZ和 CrcY sRNA。 Crc是 CbrAB/Crc系統(tǒng)中的重要組成元件,是一種全局調(diào)控子,其表達(dá)水平依據(jù)于生長(zhǎng)條件不同而變化,在后轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控基因的表達(dá)[1,2]。 效應(yīng)蛋白調(diào)控的 sRNA與細(xì)胞中自由的Crc結(jié)合,從而調(diào)節(jié)Crc在細(xì)胞內(nèi)的水平,而Crc的水平直接影響到劣勢(shì)碳源代謝基因的表達(dá)。

      1.2 Cbr AB/Crc 系統(tǒng)的調(diào)控機(jī)制

      Crc最早發(fā)現(xiàn)于銅綠假單胞菌中,其調(diào)控機(jī)制已經(jīng)在惡臭假單胞菌OCT質(zhì)粒的烷烴代謝途徑中被揭示,即AlkS轉(zhuǎn)錄激活子誘導(dǎo)烷烴代謝基因的表達(dá)。當(dāng)烷烴存在時(shí),Crc結(jié)合編碼AlkS蛋白的mRNA 5′末端,使其轉(zhuǎn)錄受到抑制,導(dǎo)致其不能完成翻譯,這就使得碳代謝抑制發(fā)生[3]。這種機(jī)制同樣存在于銅綠假單胞菌[4]和惡臭假單胞菌中[5],銅綠假單胞菌中amiE mRNA和惡臭假單胞菌中的 benR mRNA的轉(zhuǎn)錄都受到 Crc的抑制。

      當(dāng)Crc在細(xì)胞內(nèi)維持高水平時(shí),Crc能夠結(jié)合目的基因轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)前的Crc結(jié)合位點(diǎn),從而阻止其轉(zhuǎn)錄表達(dá)來(lái)抑制碳源利用的作用,但當(dāng)sRNA在細(xì)胞內(nèi)高水平表達(dá)時(shí),它們會(huì)結(jié)合自由的Crc,使得Crc的水平降低,劣勢(shì)碳源代謝基因的轉(zhuǎn)錄抑制被解除。目前發(fā)現(xiàn)的一些受Crc抑制的劣勢(shì)碳源代謝基因包括銅綠假單胞菌中涉及支鏈氨基酸吸收的基因bkd[6],惡臭假單胞菌中涉及吸收苯甲酸、4?羥基苯甲酸和4?羥苯基丙酮酸的基因[7],惡臭假單胞菌GPol中涉及烷烴降解的基因,惡臭假單胞菌pWW0質(zhì)粒中涉及甲苯降解的基因[8]以及假單胞菌 EST1001中涉及石碳酸降解的基因[9]。

      CrcZ sRNA的發(fā)現(xiàn)將CbrA/CbrB雙組份的活性與Crc的功能串聯(lián)起來(lái)。它首先在銅綠假單胞菌中被發(fā)現(xiàn)[10],全長(zhǎng) 407個(gè) nt,具有 6個(gè)特異的Crc識(shí)別位點(diǎn),其表達(dá)受CbrA/CbrB雙組份的調(diào)控。當(dāng)銅綠假單胞菌在非優(yōu)勢(shì)碳源(如甘露醇或乙酰胺)中生長(zhǎng)時(shí),CbrA/CbrB雙組份正調(diào)控crcZ基因并使其高效轉(zhuǎn)錄,高水平的CrcZ與自由的Crc結(jié)合,從而降低了其在細(xì)胞內(nèi)的水平,Crc對(duì)非優(yōu)勢(shì)碳源代謝基因表達(dá)的抑制被解除,如圖1所示[4]。 相反,當(dāng)琥珀酸作為碳源時(shí),CbrA/CbrB雙組份的活性受到抑制,CrcZ在細(xì)胞內(nèi)的水平較低,從而導(dǎo)致Crc蛋白抑制目標(biāo)mRNA,非優(yōu)勢(shì)碳源不能被利用[4]。

      圖1 降解物阻遏調(diào)控模型[4]Fig.1 Model of catabolite repression control[4].

      1.3 Cbr AB/Crc 系統(tǒng)的其他相關(guān)蛋白

      在惡臭假單胞菌中,除CrcZ sRNA外,還存在著另一個(gè)類似的sRNA,命名為CrcY[10]。它們具有相似的序列、二級(jí)結(jié)構(gòu)及功能。在碳代謝抑制條件下,CrcZ與CrcY的水平低于非抑制條件下的水平。單獨(dú)突變crcZ或crcY不會(huì)影響碳代謝抑制作用,因?yàn)楫?dāng)缺失crcZ或crcY后,剩下的另一個(gè)sRNA的表達(dá)量會(huì)大幅提高,來(lái)彌補(bǔ)缺失的sRNA,CrcZ與CrcY的功能互補(bǔ)使得缺失其中一個(gè)sRNA并不影響碳代謝抑制的發(fā)生[10]。但同時(shí)缺失crcZ與crcY后,碳代謝抑制作用明顯。在LB培養(yǎng)基中,當(dāng)細(xì)菌處在對(duì)數(shù)期時(shí),過(guò)表達(dá)CrcZ或CrcY會(huì)明顯減弱Crc依賴的碳代謝抑制,表明碳代謝抑制作用與sRNA關(guān)系緊密。當(dāng)優(yōu)勢(shì)碳源存在時(shí),CrcZ與CrcY的水平較低,而自由的Crc水平較高,它們能夠結(jié)合目標(biāo)RNA,抑制其翻譯;相反,當(dāng)無(wú)優(yōu)勢(shì)碳源存在時(shí),CrcZ與CrcY的水平明顯升高,從而抑制了Crc蛋白,無(wú)Crc蛋白結(jié)合抑制則目標(biāo)mRNA可與核糖體結(jié)合進(jìn)行正常翻譯。

      1.4 Cbr AB/Crc 系統(tǒng)涉及的其他功能

      除了對(duì)碳代謝途徑的控制,CbrAB/Crc信號(hào)傳導(dǎo)途徑還有許多功能。研究發(fā)現(xiàn),在惡臭假單胞菌中,Crc調(diào)控一些氨基酸轉(zhuǎn)運(yùn)基因的表達(dá),使得纈氨酸、亮氨酸、異亮氨酸、酪氨酸等氨基酸吸收基因的表達(dá)受到抑制[11]。在完全培養(yǎng)基中生長(zhǎng)時(shí),Crc抑制OprB1孔道蛋白表達(dá),阻礙葡萄糖的吸收,同時(shí)葡萄糖和果糖的內(nèi)膜運(yùn)輸?shù)鞍缀臀者@些糖所需的基因也被抑制。Crc的缺失導(dǎo)致葡萄糖酸和6?磷酸葡萄糖酸的吸收基因表達(dá)水平提高,這間接表明葡萄糖的吸收受Crc的抑制[11]。在銅綠假單胞菌中,蛋白質(zhì)組學(xué)分析顯示Crc抑制一些孔蛋白的合成,這解釋了crc突變株對(duì)特定抗生素敏感性增強(qiáng)的原因[12]。同時(shí)Crc也抑制藍(lán)色素和毒力因子綠膿菌素的產(chǎn)生,且Crc的缺失誘導(dǎo)編碼胞外多糖的基因簇過(guò)表達(dá),影響了蹭行運(yùn)動(dòng)、III型分泌器和生物質(zhì)膜的形成[13]。在銅綠假單胞菌中,cbrB的突變導(dǎo)致生物質(zhì)膜減少[14]。在惡臭假單胞菌中,CBrAB雙組份系統(tǒng)不僅控制生長(zhǎng)底物的吸收,而且還控制抗逆性和生物質(zhì)膜的形成[15]。

      2 CyoABCDE系統(tǒng)

      2.1 CyoABCDE 系統(tǒng)的組成

      CyoABCDE系統(tǒng)是由一些編碼電子鏈末端氧化酶的基因簇組成,在惡臭假單胞菌中,存在一個(gè)至少含有5個(gè)末端轉(zhuǎn)移酶的分支電子傳遞鏈,如圖2所示[16],這個(gè)分支同樣存在于銅綠假單胞菌中。(應(yīng)把電子鏈上的主要氧化酶分別介紹一下,編碼基因,酶的特性,信號(hào)傳遞的順序等,至少要單獨(dú)介紹一下cyo)這些氧化酶在氧充足條件下對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)起著重要作用,而且每一個(gè)末端氧化酶通常對(duì)氧具有不同的親和力,故具有不同的氧化還原能力,且作為質(zhì)子泵具有不同的效率。

      圖2 惡臭假單胞菌中的好氧呼吸鏈[16]Fig.2 Aerobic respiratory chain of Pseudomonas putida[16].

      2.2 CyoABCDE系統(tǒng)的調(diào)控機(jī)制

      CyoABCDE系統(tǒng)通過(guò)假單胞菌好氧呼吸鏈中電子的轉(zhuǎn)移來(lái)調(diào)控基因的表達(dá)[17]。由乳酸、琥珀酸等電子供體通過(guò)好氧呼吸鏈將電子傳遞給細(xì)胞膜上的泛醌,由泛醌傳遞給Cyo末端氧化酶,再由Cyo通過(guò)一系列的信號(hào)傳導(dǎo)來(lái)調(diào)控非優(yōu)勢(shì)碳源代謝基因的表達(dá),從而影響細(xì)菌對(duì)碳源的利用,但Cyo調(diào)控基因表達(dá)的信號(hào)尚不清楚。目前只知道在一些細(xì)菌中,雙組份系統(tǒng)能夠感應(yīng)來(lái)自電子傳遞鏈的信號(hào),例如處在氧化還原狀態(tài)的醌或者是末端轉(zhuǎn)移酶中的電子流[18,19]。通過(guò)磷酸化轉(zhuǎn)錄調(diào)控子來(lái)產(chǎn)生感應(yīng)效應(yīng),它能夠直接激活或抑制基因的表達(dá)。假單胞菌中很可能含有接受Cyo末端氧化酶信息的雙組份,通過(guò)這一過(guò)程實(shí)現(xiàn)信號(hào)傳遞進(jìn)而完成基因的調(diào)控,但是目前這種假設(shè)還沒(méi)有實(shí)驗(yàn)來(lái)證明。

      Cyo氧化酶基因的表達(dá)依據(jù)生長(zhǎng)條件改變而變化。當(dāng)細(xì)胞處于完全培養(yǎng)基對(duì)數(shù)期且氧充足條件時(shí),它的表達(dá)量高;當(dāng)氧被限制或細(xì)胞進(jìn)入穩(wěn)定期時(shí),它的表達(dá)量降低[20,21]。 不僅如此,Cyo 氧化酶基因的表達(dá)也依賴于碳源。當(dāng)細(xì)菌在能夠誘導(dǎo)碳代謝抑制的碳源存在的培養(yǎng)基生長(zhǎng)時(shí)(如琥珀酸或氨基酸),它的表達(dá)量高于細(xì)胞在檸檬酸中水平,檸檬酸在惡臭假單胞菌中不能抑制烷烴代謝途徑[21]。Cyo不僅是電子傳遞鏈的末端氧化酶,而且還是全局調(diào)控系統(tǒng)的組成部分,它通過(guò)感應(yīng)和轉(zhuǎn)換電子傳遞鏈的活性的信號(hào)影響碳氮代謝,所以Cyo的水平可能與碳代謝抑制強(qiáng)度相關(guān)。

      轉(zhuǎn)錄組分析表明,Cyo氧化酶的失活不僅影響烷烴或石碳酸降解基因的誘導(dǎo)表達(dá),而且在豐富培養(yǎng)基中調(diào)控100多個(gè)基因的表達(dá)[20],這也表明Cyo參與了全局調(diào)控過(guò)程。大部分被Cyo影響的是編碼質(zhì)子泵的基因,包括有機(jī)酸、芳香化合物的運(yùn)輸子,各種轉(zhuǎn)錄調(diào)控子以及電子傳遞鏈的組成部分。Crc和Cyo的同源性很低,說(shuō)明它們處于各自獨(dú)立的全局調(diào)控系統(tǒng)。在惡臭假單胞菌中,Cyo氧化酶的失活影響了一些氨基酸、苯甲酸、果糖和各種有機(jī)酸作為碳源的利用以及氨基酸和尿素作為氮源的利用,這進(jìn)一步表明在假單胞菌中碳氮代謝調(diào)控中,Cyo末端氧化酶具有重要作用。

      3 PTSNtr系統(tǒng)

      3.1 PTSNtr系統(tǒng)的組成與功能

      在假單胞菌中,存在一類不涉及糖類攝取的PTS分支系統(tǒng),叫做PTSNtr系統(tǒng)。它由PtsP、PtsO及PtsN蛋白組成,這些蛋白分別同源于EINtr、NPr和 EIINtr蛋白[22]。

      目前PTSNtr系統(tǒng)中各蛋白的研究還還處于起步階段。研究發(fā)現(xiàn)在一些革蘭氏陰性菌中,并非pstP基因位于rpoN操縱子內(nèi)部,而是pstN,且與rpoN 共轉(zhuǎn)錄[22,23]。 rpoN 基因編碼選擇性 δ 因子,它涉及碳源與氮源的代謝、鞭毛的合成和其它功能基因的表達(dá)[24]。PstN在PTSNtr系統(tǒng)中極為重要,PstN的磷酸化導(dǎo)致碳代謝抑制的產(chǎn)生。PtsN基因在不同菌中的缺失突變揭示了其在調(diào)控中的部分功能。例如在肺炎桿菌(Klebsiella pneumoniae)中,缺失突變pstN的會(huì)導(dǎo)致nifH的轉(zhuǎn)錄增強(qiáng),nifH是一種涉及氮代謝的基因[25]。在銅綠假單胞菌中,缺失突變pstN后一些δ54依賴的基因不能被誘導(dǎo)[26]。大腸桿菌中,缺失突變pstN會(huì)影響其在含有劣勢(shì)氮源的培養(yǎng)基中生長(zhǎng),但對(duì)含豐富氮源(谷氨酰胺或銨)的培養(yǎng)基影響不大[23]。缺失突變ptsN還會(huì)導(dǎo)致大腸桿菌對(duì)亮氨酸的生長(zhǎng)抑制非常敏感[27]。這些缺失突變pstN后的現(xiàn)象都表明PTSNtr系統(tǒng)提供了一個(gè)細(xì)菌碳氮吸收調(diào)控連接。

      3.2 PTSNtr系統(tǒng)的調(diào)控機(jī)制

      PTSNtr系統(tǒng)通過(guò)系統(tǒng)內(nèi)的磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)碳源的調(diào)控,磷酸基團(tuán)從PEP轉(zhuǎn)移到PtsP上,然后再磷酸化PtsO,最終將磷酸基團(tuán)轉(zhuǎn)移到PtsN[22,28]。 與涉及糖類攝取的 PTS 系統(tǒng)不同的是,未磷酸化的PtsN也參與了一些代謝基因的調(diào)控,但具體調(diào)控機(jī)制尚不清楚。PTSNtr系統(tǒng)也沒(méi)有相當(dāng)于EIIBCA糖類轉(zhuǎn)移系統(tǒng)的膜組分,它的磷酸化過(guò)程也不像糖類PTS系統(tǒng)那樣依賴于磷酸基團(tuán)的流動(dòng)。目前無(wú)證據(jù)表明PtsN能夠向底物轉(zhuǎn)移磷酸基團(tuán),PtsP/PtsO/PtsN蛋白功能可能只傳導(dǎo)信號(hào),而磷酸化的PtsN提供調(diào)控信號(hào),見(jiàn)圖 3[16]。

      圖 3 PTSNtr系統(tǒng)[16]Fig.3 The PTSNtr system[16].

      近期研究也發(fā)現(xiàn)了一些能與PTSNtr系統(tǒng)中PtsN蛋白相互作用的新靶標(biāo),這些發(fā)現(xiàn)擴(kuò)展了PTSNtr系統(tǒng)的調(diào)控范圍。比如,大腸桿菌中未磷酸化的PtsN能與親和力較低的鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)子TrkA相互作用,抑制TrkA對(duì)鉀離子的吸收[27]。此外,未磷酸化的PtsN也能刺激編碼親和力較高的鉀離子轉(zhuǎn)運(yùn)子KdpFABC的基因表達(dá)[29]。這些發(fā)現(xiàn)表明PTSNtr系統(tǒng)可能在維持鉀離子體內(nèi)平衡方面發(fā)揮重要作用。PTSNtr系統(tǒng)還會(huì)影響一些響應(yīng)碳代謝抑制信號(hào)的基因的表達(dá)。在惡臭假單胞菌pWW0質(zhì)粒中,δ54依賴的Pu啟動(dòng)子涉及甲苯和二甲苯的吸收。當(dāng)甲苯或二甲苯存在時(shí),效應(yīng)轉(zhuǎn)錄激活子X(jué)ylR能夠誘導(dǎo)Pu啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄。但當(dāng)同時(shí)存在甲苯和某些生理信號(hào)(如葡萄糖或琥珀酸)時(shí),XylR對(duì)Pu啟動(dòng)子轉(zhuǎn)錄的誘導(dǎo)作用會(huì)被減弱,誘導(dǎo)作用將下調(diào)到一定范圍內(nèi)[30,31]。 然而,PtsN的失活會(huì)使葡萄糖或琥珀酸對(duì)Pu啟動(dòng)子的抑制減弱[32,33],但不會(huì)影響葡萄糖的消耗。 這一現(xiàn)象表明減少糖類運(yùn)輸而能夠間接影響由PtsN的失活產(chǎn)生的抑制減弱。

      磷酸化對(duì)PTSNtr系統(tǒng)的調(diào)控作用十分重要。研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)ptsO基因失活后,無(wú)論培養(yǎng)環(huán)境中是否存在葡萄糖,Pu啟動(dòng)子的活性都被抑制。ptsO基因失活對(duì)Pu啟動(dòng)子影響與ptsN基因失活后相反[34]。這些都證明了磷酸化在PTSNtr系統(tǒng)調(diào)控中的重要性。ptsN與ptsO雙突變株的表型與rpoN突變株的表型相同,即葡萄糖對(duì)Pu的抑制減弱[35]。PtsO可以作為磷酸基團(tuán)的受體,因?yàn)槎c(diǎn)突變PtsO蛋白保守的His殘基會(huì)使其失活。所以磷酸化的PtsO可能需要葡萄糖對(duì)Pu調(diào)控的抑制。PtsN的活性也可能受 PtsO調(diào)控,因?yàn)镻tsO可以作為PtsN去磷酸化過(guò)程中磷酸基團(tuán)的受體。當(dāng)葡萄糖存在時(shí),PtsO接受磷酸基團(tuán),從而增加非磷酸化的PtsN的水平,這一過(guò)程可能是對(duì)Pu抑制的調(diào)控。而當(dāng)葡萄糖耗盡時(shí),磷酸基團(tuán)會(huì)被轉(zhuǎn)移回PtsN[34]。目前對(duì)引起PtsN的磷酸化或去磷酸化的生理信號(hào)還不完全了解。惡臭假單胞菌中存在一些葡萄糖代謝的誘導(dǎo)物,如2?酮基?3?脫氧?6?磷酸葡萄糖(KDPG),它對(duì)于葡萄糖調(diào)控的代謝抑制很重要,推測(cè)其可能直接或間接地影響了 PtsN 的磷酸化[35,36]。

      4 討論

      在假單胞菌中,碳代謝抑制是一個(gè)復(fù)雜的調(diào)控過(guò)程,涉及到 CbrAB/Crc、CyoABCDE及 PTSNtr三種系統(tǒng)。它們同時(shí)存在,相互獨(dú)立,可能也存在著聯(lián)系。研究表明惡臭假單胞菌中可能存在接受Cyo末端氧化酶信息的雙組份,而CbrAB/Crc系統(tǒng)中就包含維持細(xì)菌碳氮平衡的雙組份CbrA/CbrB,它們之間可能存在聯(lián)系來(lái)協(xié)同產(chǎn)生碳代謝抑制,但這種假設(shè)尚無(wú)實(shí)驗(yàn)來(lái)證明。而PTSNtr系統(tǒng)與糖轉(zhuǎn)運(yùn)PTS系統(tǒng)之間存在交集,PTSNtr系統(tǒng)中非磷酸化的PtsN也參與基因的調(diào)控,這些可能把PTSNtr系統(tǒng)對(duì)代謝的調(diào)控與前兩個(gè)系統(tǒng)聯(lián)系起來(lái)。細(xì)胞內(nèi)可能存在三個(gè)系統(tǒng)同時(shí)發(fā)揮作用,協(xié)同調(diào)控碳代謝抑制。三個(gè)系統(tǒng)之間聯(lián)系對(duì)于碳代謝抑制的研究意義重大,對(duì)其進(jìn)行深入研究,會(huì)進(jìn)一步提高我們對(duì)碳代謝抑制調(diào)控機(jī)制的認(rèn)識(shí)。

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