吳佳梅 劉曉寧 趙軍
摘要[目的]建立roGFP1探針響應(yīng)玉米體內(nèi)氧化還原狀態(tài)變化的穩(wěn)定表達(dá)系統(tǒng)。[方法]首先利用基因槍介導(dǎo)玉米幼胚轉(zhuǎn)化法瞬時表達(dá)roGFP1基因,利用激光共聚焦顯微鏡405和488 nm激發(fā)光通道對10 mmol/L H2O2和2 mmol/L DTT溶液處理下的幼胚進(jìn)行510 nm的GFP熒光成像,后通過ImageJ處理圖像和分析熒光比值[405/488 nm];同時利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)玉米幼胚轉(zhuǎn)化法開展roGFP1基因的玉米穩(wěn)定轉(zhuǎn)化,進(jìn)行Southern Blot鑒定和熒光顯微鏡觀察。[結(jié)果]在玉米幼胚瞬時表達(dá)系統(tǒng)中,經(jīng)10 mmol/L H2O2處理后,roGFP1探針的熒光強度比值[405/488 nm]由原來的0.844升高至1.837,而在2 mmol/L DTT溶液處理下的熒光強度比值下降至0.911;經(jīng)Southern Blot鑒定和GFP熒光檢測獲得了roGFP1轉(zhuǎn)基因陽性植株。[結(jié)論]在玉米幼胚瞬時表達(dá)系統(tǒng)中,roGFP1探針能夠響應(yīng)由外源氧化還原劑引起的體內(nèi)氧化還原狀態(tài)改變;獲得了表達(dá)roGFP1的轉(zhuǎn)基因玉米植株。
關(guān)鍵詞roGFP1;熒光強度比值;玉米;瞬時表達(dá);穩(wěn)定轉(zhuǎn)化
中圖分類號S188文獻(xiàn)標(biāo)識碼A文章編號0517-6611(2014)12-03491-03
作者簡介吳佳梅(1990- ),女,江蘇常州人,碩士研究生,研究方向:植物抗逆分子生物學(xué)。
玉米是我國重要的糧食作物和飼料來源,自然條件下,干旱、低溫、高鹽等非生物逆境制約了玉米的生長發(fā)育和產(chǎn)量?;钚匝酰≧eactive Oxygen Species,ROS)在植物遭受非生物逆境時大量積累[1],曾一度被認(rèn)為是有氧代謝過程中具有毒性的副產(chǎn)物。然而近年來的研究發(fā)現(xiàn),活性氧作為不可或缺的成分參與調(diào)控植物的生長發(fā)育以及各種脅迫反應(yīng),是細(xì)胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)過程中一種重要的信號分子[1]。ROS的作用機制成為當(dāng)今的研究熱點,利用植物的ROS信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)在提高擬南芥、紫花苜蓿、小麥和水稻等的抗逆性研究上取得了較大進(jìn)展[2,13-14],而測定植物體內(nèi)ROS含量的動態(tài)變化對于研究植物ROS信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)具有重要意義。以往通常使用單態(tài)氧(Singlet Oxygen Sensor Green,SOSG)探針,超氧化物陰離子(Dihydroethidium,DHE)探針,二氫羅丹明(Dihydrorhodamine 123,DHR)染料,Amplex Red試劑,OxyBurst green試劑和Dihydrodichlorofluorescein(H2DCF)等熒光探針來測定植物體內(nèi)ROS含量[3],但是這些方法都存在著諸多不足。一方面,由于不可逆性,無法得知植物體內(nèi)ROS含量的動態(tài)變化;另一方面,探針自身也存在潛在的問題,比如當(dāng)OxyBurst green接觸到氧氣時就會被氧化[4]。Hanson[5]等對野生型綠色熒光蛋白(Green Fluorescent Protein,GFP)進(jìn)行改造后得到氧化還原敏感的roGFP1 biosensor (C48S,S147C和Q204C),在氧化環(huán)境下,roGFP1的147位和204位的半胱氨酸殘基形成二硫鍵[6],由于生色團的中性電子和陰離子之間的內(nèi)在平衡,roGFP1探針在400 nm和475~490 nm的激發(fā)光下的熒光強度比值發(fā)生改變,這種熒光強度比值法僅受激發(fā)光的影響,從而消除了由探針濃度、光漂白以及組織厚度等引起的誤差[5]。roGFP探針在哺乳動物細(xì)胞中能夠響應(yīng)氧化還原狀態(tài)改變[5,7]得到證實后,被廣泛應(yīng)用于擬南芥[8-9]、煙草葉肉細(xì)胞[10]、酵母[11]和小鼠表皮細(xì)胞[12]中。
前人對roGFP探針的研究主要集中在哺乳動物細(xì)胞和擬南芥等模式植物細(xì)胞中,在作物細(xì)胞中的研究鮮有報道。探究roGFP 探針能否響應(yīng)玉米體內(nèi)的氧還改變對于進(jìn)一步研究玉米ROS信號轉(zhuǎn)導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)、提高玉米抗逆性具有重要意義。筆者利用玉米幼胚瞬時表達(dá)系統(tǒng)檢測roGFP1探針的熒光強度比值[405/488 nm]是否響應(yīng)動態(tài)的氧化還原環(huán)境,然后利用農(nóng)桿菌介導(dǎo)玉米幼胚轉(zhuǎn)化法創(chuàng)制轉(zhuǎn)基因陽性植株,旨在為規(guī)?;b定ROS信號轉(zhuǎn)導(dǎo)基因提供直觀便捷的檢測工具。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1研究對象。雜交種Hi II和自交系綜31玉米幼胚。
1.1.2供試菌株以及載體。大腸桿菌DH5α和農(nóng)桿菌C58C1由實驗室保存;含有9zf(-)PubiTnos載體的DH5α大腸桿菌菌株由實驗室保存;pCAMBIA1304P35SroGFP1 Tnos載體,由Keni Jiang惠贈。
1.1.3主要儀器。PTC0200型PCR儀和PDS1000/He臺式基因槍,購自BioRad公司;LSM 700激光共聚焦顯微鏡和HAL 100熒光顯微鏡,購自ZEISS公司。
1.1.4主要試劑。限制性內(nèi)切酶,購自New England Biolabs(NEB)公司;Taq DNA聚合酶和dNTP等試劑,均購自寶生物工程(大連)有限公司;引物合成及測序,由生工生物工程(上海)有限公司完成;纖維素酶和離析酶,均購自日本Yakult Pharmaceutical公司;甘露醇、PEG以及一些常用試劑,均購自Amresco公司。
1.2方法
1.2.1roGFP1基因表達(dá)載體的構(gòu)建。按照圖1的方法構(gòu)建roGFP1基因表達(dá)載體9zf(-)PubiroGFP1Tnos和pCAMBIA1304PubiroGFP1Tnos;用NcoI和Afl II雙酶切pCAMBIA1304P35sroGFP1Tnos質(zhì)粒獲得roGFP1片段,同時用EcoR V酶切9zf(-)PubiTnos獲得大片段,roGFP1roGFP1片段經(jīng)Klenow聚合酶補平后和9zf(-)PubiTnos回收片段經(jīng)酶連后獲得9zf(-)PubiroGFP1Tnos載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,經(jīng)酶切鑒定和測序,于-80 ℃保存陽性克隆。9zf(-)PubiroGFP1Tnos質(zhì)粒經(jīng)Bam HI和Afl II酶切后獲得ubiroGFP1片段,用Bam HI和Afl II酶切pCAMBIA1304P35s roGFP1Tnos后獲得大片段,將ubiroGFP1和pCAMBIA1304P35sroGFP1Tnos回收片段酶連后獲得pCAMBIA1304 PubiroGFP1Tnos,轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌C58C1,經(jīng)酶切鑒定和測序后,于-80 ℃保存陽性克隆。
圖1roGFP1基因的玉米表達(dá)載體構(gòu)建流程1.2.2玉米幼胚瞬時表達(dá)系統(tǒng)的建立。以Hi II雜交系授粉后20 d的玉米幼穗為材料,經(jīng)過5% NaClO處理后剝幼胚,將幼胚用MS清洗2次后轉(zhuǎn)移至固體高滲培養(yǎng)基中;用10 μl金粉包裹1 μg質(zhì)粒制成微彈;轟擊幼胚過程按照基因槍說明書進(jìn)行,氣壓為7.586 MPa,完成后放置植物培養(yǎng)箱內(nèi)過夜培養(yǎng)。
1.2.3激光共聚焦顯微鏡觀察。將基因槍轉(zhuǎn)化后培養(yǎng)過的幼胚制成橫切片置于載玻片上蓋上蓋玻片后利用ZEISS LSM700,選取405和488 nm 2個通道進(jìn)行roGFP1觀察和拍攝,隨后加入10 mmol/L H2O2處理5~10 min并拍攝圖像,完畢后吸去H2O2溶液,加入2 mmol/L DTT溶液處理5~10 min再次拍攝圖像。
1.2.4農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)化玉米幼胚。用pCAMBIA1304PubiroGFP1Tnos載體轉(zhuǎn)化C58C1農(nóng)桿菌獲得轉(zhuǎn)化菌株;用該轉(zhuǎn)化菌株菌液浸染綜31野生型玉米幼胚,經(jīng)過共培養(yǎng)后,轉(zhuǎn)入到含潮霉素B(Hygromycin B)的選擇培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選,將誘導(dǎo)分化的玉米幼苗移栽至大棚繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.5PCR 和Southern Blot鑒定轉(zhuǎn)基因植株。PCR鑒定所用引物為FWhyg和RV35S(表1),條件為變性溫度95 ℃,45 s,退火溫度60 ℃,40 s,延伸溫度72 ℃,1 min,30個循環(huán),陽性植株P(guān)CR產(chǎn)物應(yīng)出現(xiàn)大小為542 bp,然后熒光觀察玉米葉片。結(jié)合兩者的初步鑒定,將篩選出的玉米材料做Southern Blot鑒定,大致過程如下:利用roGFPF和roGFPR(表1)擴增出roGFP1基因特異的探針;用CTAB法大量提取玉米基因組DNA,Hind III 酶切40 V電泳過夜后將凝膠進(jìn)行酸堿變性,利用毛細(xì)管堿性轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)膜18 h,將膜80 ℃烤箱烘烤2 h后進(jìn)行預(yù)雜交,2 h后用同位素標(biāo)記的roGFP1探針進(jìn)行雜交試驗,18 h后洗膜和壓片。
1.2.6統(tǒng)計分析。利用ImageJ軟件對圖片進(jìn)行處理,熒光強度比值計算過程如前所述[8]。
2結(jié)果與分析
2.1RoGFP1探針響應(yīng)H2O2和DTT引起的玉米幼胚氧化還原狀態(tài)改變?yōu)榱颂骄縭oGFP1探針是否響應(yīng)玉米體內(nèi)氧化還原狀態(tài)的改變,試驗利用基因槍介導(dǎo)轉(zhuǎn)化法在玉米幼胚中瞬時表達(dá)roGFP1基因,通過激光共聚焦顯微鏡觀察不同氧化還原處理下幼胚中的405和488 nm熒光強度并計算比值。結(jié)果發(fā)現(xiàn),roGFP1基因能在玉米幼胚中成功表達(dá);向幼胚切片中先后加入10 mmol/L H2O2溶液roGFP1探針迅速被氧化,熒光強度比值從0.844升高至1.837,而再加入2 mmol、L DTT溶液后roGFP1探針又被還原,熒光強度比值下降至0.911(圖2)。這表明roGFP1基因能夠在玉米幼胚中成功表達(dá),并且對幼胚細(xì)胞內(nèi)的可逆性氧化還原狀態(tài)改變作出響應(yīng)。
注:(A)為未處理的玉米幼胚;比值的顏色代表roGFP1的氧化還原狀態(tài),藍(lán)色表示roGFP1的完全還原狀態(tài),黃色表示roGFP1的完全氧化狀態(tài);(B)為經(jīng)10 mmol/LH2O2溶液處理的幼胚;(C)為經(jīng)2 mmol/LDTT溶液處理的幼胚;Scale bar=300 pixel。
roGFP探針在眾多植物細(xì)胞中的研究備受關(guān)注,然而在玉米中還缺乏研究。試驗首先通過在Hi II植株授粉后20 d的玉米幼胚中瞬時表達(dá)roGFP1基因試驗證實,roGFP1能夠在玉米中響應(yīng)H2O2和DTT引起的可逆性氧化還原狀態(tài)改變,這與Meyer[8]利用roGFP2探針在擬南芥根中的研究結(jié)果相吻合。試驗隨后利用農(nóng)桿菌浸染綜31玉米幼胚,誘導(dǎo)分化的玉米幼苗經(jīng)熒光顯微鏡觀察和Southern Blot鑒定后存在陽性植株,表明roGFP1基因已經(jīng)整合到玉米基因組中。