耿艷 張紅紅 胡亞卓 韓志濤 耿淼 蔚文峰 甄里 夏征 王魯寧 張成崗
阿爾茨海默病(Alzheimer disease, AD)是一種慢性退行性疾病,發(fā)病率高,尤其多發(fā)于老年人群,臨床表現(xiàn)為進(jìn)行性的記憶和認(rèn)知障礙,其病理特征是細(xì)胞外β-淀粉樣蛋白(β-amyloid protein,Aβ)沉積所致老年斑和細(xì)胞內(nèi)過(guò)度磷酸化的tau蛋白所致神經(jīng)原纖維纏結(jié),其常見(jiàn)的沉積部位如海馬、額葉和顳葉[1-3]。隨著技術(shù)的發(fā)展,研究者們做了很多工作以期通過(guò)基因和蛋白標(biāo)志物來(lái)揭示AD分子或細(xì)胞水平的信息,為探討其病因和發(fā)病機(jī)制提供線索,從而便于AD的預(yù)測(cè)和臨床預(yù)防?;蚪M學(xué)因其遺傳易感性和不隨時(shí)間變化的特質(zhì),具有一定優(yōu)勢(shì),因此早期進(jìn)行了很多相關(guān)研究。但因未發(fā)現(xiàn)合適的特異性或靈敏性標(biāo)志物,其研究結(jié)果并不令人滿意。本研究采用相對(duì)和絕對(duì)定量同位素標(biāo)記(isobaric tags for relative and absolute quantitation,iTRAQ)結(jié)合二維液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(two-dimensional liquid chromatography-tandem mass spectrometry, 2D LC-MS/MS)的定量蛋白質(zhì)組學(xué)方法[4-6],以尸檢的老年人腦顳葉組織為標(biāo)本,通過(guò)分析AD和正常老年人腦組織中的主要差異蛋白,旨在發(fā)現(xiàn)疾病的生物標(biāo)志物,并試圖找到能闡明AD病理生理機(jī)制的研究方法。
1.1觀察對(duì)象12例尸檢的老年男性顳葉腦組織,年齡78~90歲,取自2005-12-2013-03解放軍總醫(yī)院老年醫(yī)學(xué)研究所老年組織庫(kù)收集的組織標(biāo)本。其中正常老年組6例,平均年齡(81.83±3.06)歲,死亡至尸檢的平均間隔時(shí)間為17.0 h;AD組6例,平均年齡(84.67±3.44)歲,死亡至尸檢的平均間隔時(shí)間為19.3 h。兩組間年齡、尸檢間隔時(shí)間比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。12例老年人生前營(yíng)養(yǎng)狀況均正常。腦組織標(biāo)本取材后均立即放入-80℃低溫冰柜保存。
正常老年人組均排除有神經(jīng)系統(tǒng)疾病以及可能影響中樞神經(jīng)系統(tǒng)的疾病、腦血管疾病、嗜酒、藥物成癮和精神方面疾??;AD組的老年人均為臨床(由解放軍總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科資深專(zhuān)家通過(guò)臨床癥狀、體征、相關(guān)實(shí)驗(yàn)室檢查確診)和病理(尸檢組織通過(guò)Aβ、Tau、Ubiquitin和Synuclin 的免疫組織化學(xué)染色,由解放軍總醫(yī)院病理科資深專(zhuān)家診斷)兩方面確診的癡呆個(gè)體;另外,查閱兩組老年人的病史,排除可能影響實(shí)驗(yàn)的其他因素。
1.2方法
1.2.1主要試劑與儀器:包括高效液相色譜儀(RIGOL 3220,北京普源精電)、液質(zhì)聯(lián)用質(zhì)譜儀(Eksigent液相-AB SCIEX TripleTOF 5600質(zhì)譜儀)、iTRAQ試劑盒(iTRAQ Reagent Multi-Plex Kit,Applied Biosystems)、丙酮、氨水(北京化工廠)、尿素(Urea,法瑪西亞USB)、二硫蘇糖醇 (DTT,法瑪西亞USB)。
1.2.2蛋白質(zhì)提?。悍謩e將兩個(gè)組的6份組織樣本80 μg混合,在液氮條件下研磨成粉末,以1∶5的比例加入裂解液〔8 mol/L Urea,0.1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))DTT〕,超聲破碎(超聲破碎1 s,停1 s,超聲破碎1 min)。以40 000g、4℃離心30 min,取上清。以考馬斯亮藍(lán)(Bradford)法定量后,每組樣本分別取 100 μg蛋白,以1∶3的體積比例加入已預(yù)冷的丙酮,-20℃放置2 h后,以20 000g、4℃離心5 min,棄上清,自然風(fēng)干。
1.2.3iTRAQ標(biāo)記:分別于正常腦組織樣本和AD患者腦組織樣本中加入裂解液(dissolution buffer),溶解蛋白并經(jīng)Bradford法定量。分別向蛋白溶液中加入胰蛋白酶(trypsin),分別取80 μg用iTRAQ試劑盒進(jìn)行酶切標(biāo)記。正常腦組織樣本用115標(biāo)記,AD患者腦組織樣本用117標(biāo)記,標(biāo)記后樣本合并。
1.2.4肽段分離及鑒定:(1)第一維高pH反向色譜分離:色譜柱:C18反相柱(Agela, C18 色譜柱,250 mm×4.6 mm i.d.,填料顆粒直徑5 μm);流動(dòng)相A:2%(液體)ACN-98% H2O(氨水調(diào)pH 10.0);流動(dòng)相B:98%(液體)ACN-2%(液體)H2O(氨水調(diào)pH 10.0);溶劑梯度:5%~8%流動(dòng)相B,1 min;8%~32%流動(dòng)相B,24 min;32%~95%流動(dòng)相B,2 min;95%流動(dòng)相B,4 min;95%~5%流動(dòng)相B,1 min;柱溫:45℃;流速:0.7 mL/min;檢測(cè)波長(zhǎng):214 nm。組分收集:每分鐘1管,在8~32 min時(shí)收集。有效梯度內(nèi),共24組分。(2)LC-MS質(zhì)譜上樣:5600參數(shù)設(shè)置:抽取干的樣本,溶解于A液(1.9%ACN/98%H2O/0.1%FA),12 000 r/min離心(離心半徑=3 cm)3 min,取上清采用Eksigent液相-AB SCIEX TripleTOFTM5600質(zhì)譜儀檢測(cè);色譜條件:液相:Eksigent Nano LC 2D plus;富集柱:自制C18,5 μm,ID 100 μm,20 mm Length;分離柱:自制C18,3 μm,ID 75 μm,120 mm Length;流動(dòng)相A:1.9%ACN+98% H2O+0.1%FA;流動(dòng)相B:98%ACN+1.9% H2O+0.1%FA;流速:330×10-3μL/min;洗脫條件:5% B 0 min, 5%~12%B 0~5 min, 12%~22% B 5~21 min, 22%~32% B 21.0~31.5 min, 32%~90% B 31.5~36.0 min, 90%~5% B 36~40 min;質(zhì)譜條件:數(shù)據(jù)采集時(shí)間40 min,噴霧電壓2.3 kV;毛細(xì)管溫度23.92℃;碰撞能量45;采集相對(duì)分子質(zhì)量范圍350~1250。
1.3數(shù)據(jù)分析ProteinPilotTMSoftware Beta (版本:4.2)搜索引擎,數(shù)據(jù)庫(kù)為human庫(kù);一級(jí)誤差為10 ppm,二級(jí)誤差為20 ppm;合并搜庫(kù),導(dǎo)出數(shù)據(jù)用PDST軟件分析。選擇差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)的結(jié)果報(bào)告。
1.4生物信息學(xué)分析基于iTRAQ定量比值,對(duì)蛋白質(zhì)的定量信息取Log值后符合正態(tài)分布曲線,然后利用95%置信區(qū)間法則來(lái)計(jì)算蛋白差異是否具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,篩選出存在統(tǒng)計(jì)學(xué)差異的蛋白質(zhì),作為后續(xù)分析的備選。通過(guò)生物信息學(xué)分析工具DAVID[7]對(duì)鑒定蛋白進(jìn)行Gene Ontology (GO)功能注釋、功能富集分析及定位分析。GO功能注釋包括生物學(xué)過(guò)程、分子功能以及細(xì)胞組分3個(gè)方面內(nèi)容。GO功能富集分析是指利用功能注釋工具高通量地對(duì)每個(gè)蛋白質(zhì)進(jìn)行注釋?zhuān)玫綄?shí)驗(yàn)鑒定蛋白質(zhì)在各類(lèi)生物學(xué)過(guò)程或分子功能上的分布情況,并將該分布與總體蛋白質(zhì)的分布進(jìn)行比較,從而確認(rèn)實(shí)驗(yàn)鑒定蛋白質(zhì)在哪幾類(lèi)生物學(xué)過(guò)程或分子功能上顯著富集(P<0.05)。通過(guò)KEGG (kyoto encyclopedia of genes and genomes)軟件對(duì)鑒定的蛋白質(zhì)進(jìn)行通路分析。
表 1 AD組與正常老年組腦組織表達(dá)上調(diào)的蛋白質(zhì)
注:*AD組與正常老年組中同一蛋白含量的比值
2.1蛋白質(zhì)譜鑒定及表達(dá)差異分析在正常老年組和AD組中共同鑒定到的蛋白質(zhì)有3071種,差異蛋白質(zhì)146種,與正常老年組相比,AD組中有62種蛋白質(zhì)表達(dá)上調(diào)(表1)和84種蛋白質(zhì)表達(dá)下調(diào)(表2)。
2.2蛋白質(zhì)功能聚類(lèi)分析結(jié)果如圖1所示。從生物學(xué)過(guò)程來(lái)說(shuō),在146種差異蛋白質(zhì)中,有8%涉及細(xì)胞呼吸,14%涉及細(xì)胞代謝,兩者均與AD的能量代謝相關(guān)。根據(jù)分子功能注釋發(fā)現(xiàn),結(jié)合功能和結(jié)構(gòu)分子活性相關(guān)蛋白所占比例較多。根據(jù)細(xì)胞成分注釋發(fā)現(xiàn),其最主要的為細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器相關(guān)蛋白,占50%,其中又以線粒體相關(guān)蛋白為主,與生物學(xué)過(guò)程中的細(xì)胞呼吸和代謝過(guò)程相吻合。
表 2 AD組與正常老年組腦組織表達(dá)下調(diào)的蛋白質(zhì)
續(xù)表 2 AD組與正常老年組腦組織表達(dá)下調(diào)的蛋白質(zhì)
注:*AD組與正常老年組中同一蛋白含量的比值
圖1兩組差異蛋白的GO功能分類(lèi)
表 3 各種生物過(guò)程相關(guān)蛋白質(zhì)的富集度分析
注:*富集分值最高的前7位;#每個(gè)分類(lèi)中所涉及到的基因數(shù)目
進(jìn)一步對(duì)參與各種生物過(guò)程的蛋白質(zhì)進(jìn)行富集度分析,結(jié)果顯示細(xì)胞骨架蛋白、細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞器及細(xì)胞呼吸和代謝相關(guān)蛋白在細(xì)胞內(nèi)顯著富集(表3)。所有蛋白質(zhì)匹配到11條KEGG通路,可信度最高的通路為AD通路(匹配到通路中的基因?yàn)?個(gè),P=0.0078)。在此通路中,基因轉(zhuǎn)錄翻譯的差異蛋白質(zhì)為:絲裂原活化蛋白激酶1(MAPK1)、NADH脫氫酶 (亞基Ⅵ、亞基Ⅹ)和細(xì)胞色素C氧化酶(COX;亞基Ⅰ、亞基Ⅱ、亞基Ⅲ和亞基Ⅳ)。
AD主要的病理特征包括老年斑和神經(jīng)原纖維纏結(jié)。神經(jīng)原纖維纏結(jié)是由細(xì)胞內(nèi)tau蛋白過(guò)度磷酸化所致。tau蛋白磷酸化與絲裂原活化蛋白激酶(mitogen activated protein kinase,MAPK)信號(hào)通路關(guān)系密切[8]。
MAPK是細(xì)胞內(nèi)的一類(lèi)絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,是多種細(xì)胞外信號(hào)從細(xì)胞表面?zhèn)鲗?dǎo)到細(xì)胞內(nèi)的重要傳遞者[9],這類(lèi)激酶主要包括細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)通路、P38MAPK通路、c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)通路和ERK5/大絲裂素活化蛋白激酶轉(zhuǎn)導(dǎo)通路等。其中ERK包括ERK1和ERK2,相對(duì)分子質(zhì)量(Mr)分別為44 000和42 000,兩者的同源性為85%。MAPK/ERK信號(hào)通路有4條激活途徑,這些途徑的底物包括轉(zhuǎn)錄因子、組蛋白、細(xì)胞內(nèi)其他重要的激酶以及K+通道等。這些物質(zhì)均是學(xué)習(xí)記憶形成的必要條件。
Feld等研究表明,ERK與長(zhǎng)時(shí)程增強(qiáng)(long term potentiation,LTP)存在效應(yīng)關(guān)系,而LTP 和學(xué)習(xí)、記憶過(guò)程密切相關(guān),被許多學(xué)者命名為“學(xué)習(xí)、記憶的突觸模型”,從而確定了ERK在學(xué)習(xí)記憶發(fā)生機(jī)制中的重要地位[10]。
在對(duì)可以引起學(xué)習(xí)記憶功能減退的AD研究中發(fā)現(xiàn),ERK通路也發(fā)揮著重要作用。神經(jīng)元的異常死亡是AD的常見(jiàn)現(xiàn)象。而在神經(jīng)元死亡的過(guò)程中,ERK的含量增加,一方面磷酸化胞漿底物,另一面進(jìn)行核轉(zhuǎn)移。核轉(zhuǎn)移的ERK發(fā)揮著促進(jìn)細(xì)胞死亡的作用。這與該實(shí)驗(yàn)結(jié)果AD患者的顳葉腦組織中ERK表達(dá)上調(diào)相吻合。但值得注意的是,在Subramaniam等[11]的研究中,ERK激活促進(jìn)神經(jīng)元的死亡與常規(guī)細(xì)胞凋亡形式有所不同,其細(xì)胞死亡的特點(diǎn)為壞死的胞膜損傷和凋亡樣核固縮,這提示ERK促進(jìn)神經(jīng)元死亡是一種非凋亡式的細(xì)胞死亡。
對(duì)于老年人,能量代謝異常引起神經(jīng)元死亡是導(dǎo)致AD的重要原因,這與該研究中與能量代謝相關(guān)的蛋白COX和煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)在疾病中表達(dá)降低的結(jié)果相吻合。
COX為線粒體呼吸鏈復(fù)合物Ⅳ,是線粒體呼吸鏈電子傳遞的終末復(fù)合物,由13個(gè)蛋白亞基組成,蛋白亞基Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ由線粒體DNA編碼,其余10個(gè)蛋白亞基由核DNA編碼[12]。COX是位于線粒體內(nèi)膜上呼吸鏈末端的限速酶[13],是線粒體呼吸鏈氧化磷酸化(oxidative phosphorylation,OXPH)過(guò)程中的關(guān)鍵酶,把氧化還原反應(yīng)中的能量通過(guò)氧化磷酸化轉(zhuǎn)變?yōu)楹吣芰姿徭I的ATP。該研究發(fā)現(xiàn)AD患者腦組織COX表達(dá)顯著下降。這與既往研究結(jié)果相一致[14-16],由此導(dǎo)致呼吸鏈復(fù)合體Ⅳ活性改變,細(xì)胞線粒體能量代謝障礙,葡萄糖攝取和ATP產(chǎn)生減少。ATP輕微減少時(shí)導(dǎo)致氧化應(yīng)激性細(xì)胞損傷,當(dāng)其減少到不能滿足神經(jīng)元正常生理功能所需時(shí),會(huì)引起神經(jīng)元功能異常,甚至細(xì)胞死亡。再者,AD患者細(xì)胞色素氧化酶表達(dá)降低,使線粒體呼吸鏈損傷,進(jìn)而導(dǎo)致活性氧(reactive oxygen species,ROS)產(chǎn)生增加,而ROS又能激活β-分泌酶和γ-分泌酶,進(jìn)而促進(jìn)淀粉樣前體蛋白(amyloid precursor protein,APP)分解為Aβ,而Aβ可損傷線粒體,進(jìn)一步導(dǎo)致 ROS 產(chǎn)生增加,形成惡性循環(huán)[17]。第三,Du等[18]研究表明,COX表達(dá)降低所致線粒體損傷可引起天冬氨酸特異性半胱氨酸蛋白酶(cysteine-containing aspartate-specific proteases,caspase) 依賴性途徑和凋亡誘導(dǎo)因子(apoptosis-inducing factors,AIFs) 參與的 caspae 非依賴性途徑,導(dǎo)致線粒體外膜破裂,引起鈣離子和一系列凋亡相關(guān)因子釋放,啟動(dòng)細(xì)胞的線粒體凋亡途徑??傊?,COX表達(dá)下降可能是AD導(dǎo)致中樞神經(jīng)系統(tǒng)功能障礙的機(jī)制之一。
另一種在細(xì)胞中與能量代謝相關(guān)的蛋白NADH,其為線粒體呼吸鏈復(fù)合物Ⅰ,Mr大約980 000,由45~46個(gè)蛋白亞基組成。NADH為介于三羧酸循環(huán)和線粒體內(nèi)膜之間的主要媒介物,參與細(xì)胞新陳代謝和能量反應(yīng)的重要輔酶。其功能主要有3方面:其一,NADH能夠加強(qiáng)機(jī)體抗氧化能力[19],這主要通過(guò)清除和減少氧自由基對(duì)機(jī)體的組織細(xì)胞損傷起作用;其二,NADH參與細(xì)胞氧化還原反應(yīng),調(diào)節(jié)組織細(xì)胞受體的表達(dá)和信號(hào)傳遞;第三,NADH作為參與能量代謝和呼吸鏈電子傳遞的重要輔酶,1分子NADH可產(chǎn)生3分子ATP,ATP耗竭可引起細(xì)胞死亡或凋亡[20]。該實(shí)驗(yàn)中,NADH在AD患者顳葉組織中表達(dá)降低,上述三方面的功能均受到影響,ATP生成減少,當(dāng)其減少至低于大腦神經(jīng)元維持正常生理功能所需閾值時(shí),神經(jīng)元可能因ATP不足而引起細(xì)胞死亡或凋亡。神經(jīng)元死亡發(fā)生在顳葉、額葉和海馬等部位時(shí),可促進(jìn)AD的進(jìn)展。
綜上,該研究應(yīng)用iTRAQ及2D LC-MS/MS技術(shù),通過(guò)對(duì)正常老年人和AD患者尸檢顳葉腦組織差異蛋白質(zhì)進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)兩組中差異表達(dá)蛋白質(zhì)共146種,在疾病組中上調(diào)蛋白質(zhì)62種,下調(diào)84種,其中能匹配到可信度最高的AD通路中的蛋白質(zhì)有7種,概括為:表達(dá)上調(diào)的MAPK1、下調(diào)的NADH和COX。MAPK1在疾病中高表達(dá)促進(jìn)神經(jīng)元的細(xì)胞死亡,而NADH和COX均為細(xì)胞呼吸鏈的組成成分,其表達(dá)下調(diào),使線粒體呼吸鏈損傷,能量代謝障礙,引起神經(jīng)元功能異常或死亡。總之,這3種蛋白質(zhì)表達(dá)的變化均與AD的發(fā)生密切相關(guān),這為AD疾病的預(yù)防或后續(xù)治療等相關(guān)研究提供了線索。
[1]Burns A, Iliffe S. Alzheimer’s disease[J]. BMJ, 2009, 338: b158.
[2]溫蒲圓,周軍. 阿爾茨海默病治療的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)老年學(xué)雜志, 2013, 33: 3524-3527.
[3]剛寶芝,張?chǎng)? 阿爾茨海默病與腦微血管病變的研究現(xiàn)狀[J]. 中國(guó)神經(jīng)免疫學(xué)和神經(jīng)病學(xué)雜志, 2013, 20: 427-430.
[4]Zieske LR. A perspective on the use of iTRAQ reagent technology for protein complex and profiling studies[J]. Exp Bot, 2006, 57: 1501-1508.
[5]Ralhan R, Desouza LV, Matta A, et al. Discovery and verification of head-and-neck cancer biomarkers by differential protein expression analysis using iTRAQ labeling, multidimensional liquid chromatography, and tandem mass spectrometry[J]. Mol Cell Proteomics, 2008,7: 1162-1173.
[6]Pierce A, Unwin RD, Evans CA, et al. Eight-channel iTRAQ enables comparison of the activity of six leukemogenic tyrosine kinases[J]. Mol Cell Proteomics, 2008, 7: 853-863.
[7]Huang DW, Sherman BT, Lempicki RA. Systematic and integrative analysis of large gene lists using DAVID bioinformatics resources[J]. Nat Protoc, 2009,4:44-57.
[8]崔虎. 絲裂原活化蛋白激酶(MAPK) 在動(dòng)脈粥樣硬化中的意義[J]. 吉林醫(yī)學(xué), 2013,34:132-134.
[9]Sweatt JD. Mitogen-activated protein kinases in synaptic plasticity and memory[J]. Curr Opin Neurobiol,2004,14:311-317.
[10]Feld M, Dimant B, Delorenzi A, et al. Phosphorylation of extra-nuclear ERK/MAPK is required for long-term memory consolidation in the crab Chasmagnathus[J]. Behav Brain Res,2005,158:251-261.
[11]Subramaniam S, Zirrgiebel U, von BUHO, et al. ERK activation promotes neuronal degeneration predominantly through plasma membrane damage and independently of caspase-3[J]. Cell Biol, 2004, 165: 357-369.
[12]Long J, He P, Shen Y, et al. New evidence of mitochondria dysfunction in the female Alzheimer’s disease brain: deficiency of estrogen receptor-beta[J]. Alzheimers Dis, 2012,30: 545-558.
[13]李玉梅,付劍亮. 阿爾茨海默病的線粒體功能紊亂機(jī)制[J]. 國(guó)際神經(jīng)病學(xué)神經(jīng)外科學(xué)雜志,2013,40: 70-74.
[14]Takuma K, Yao J, Huang J, et al. ABAD enhances Abeta-induced cell stress via mitochondrial dysfunction[J]. FASEB, 2005,19: 597-598.
[15]Rhein V, Baysang G, Rao S, et al. Amyloid-beta leads to impaired cellular respiration, energy production and mitochondrial electron chain complex activities in human neuroblastoma cells[J]. Cell Mol Neurobiol,2009,29:1063-1071.
[16]Mohan N, Alleyne T, Joseph J, et al. Low activity and poor membrane tethering for rabbit brain cytochrome C oxidase in cholesterol-copper Alzheimer’s model[J]. Mol Neurosci, 2009, 38: 273-279.
[17]Devi L, Prabhu BM, Galati DF, et al. Accumulation of amyloid precursor protein in the mitochondrial import channels of human Alzheimer’s disease brain is associated with mitochondrial dysfunction[J]. Neuroscience, 2006, 26: 9057-9068.
[18]Du H, Yan SS. Mitochondrial permeability transition pore in Alzheimer’s disease: cyclophilin D and amyloid beta[J]. Biochim Biophys Acta, 2010, 1802: 198-204.
[19]Lambeth JD, Kawahara T, Diebold B. Regulation of Nox and Duox enzymatic activity and expression[J]. Free Radic Biol Med, 2007, 43: 319-331.
[20]Abdulwahid AI, Ahmad KH. Environmental toxins and Parkinson’s disease: putative roles of impaired electron transport chain and oxidative stress[J]. Toxicol Ind Health, 2010, 26: 121-128.