張翠琴, 林麗麗, 王祎玲
(山西師范大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院, 臨汾 041004)
五角楓(AcermonoMaxim),隸屬于槭樹科(Aceraceae)槭屬(Acer),為落葉喬木,生長旺盛,分布于東北、華北和長江流域各省[1]。在秋天因樹齡不同葉片呈現(xiàn)不同顏色,觀賞價值很高,而且凈化空氣的作用效果也好,已成為中國許多地區(qū)重要的街道種植植物和風(fēng)景林樹種[2];同時樹體含水量大,枯枝落葉分解快,也是極好的防火樹種[3];五角楓單寧具有鎮(zhèn)靜、催眠、鎮(zhèn)痛作用,抗凝血作用明顯,是治療抗腦血栓的新藥;五角楓油對腫瘤細(xì)胞有一定抑制作用,可促進(jìn)新組織生長[4],有廣闊應(yīng)用前景。而五角楓種群現(xiàn)處于下降的趨勢,分布也較以前零散 ,在《中國物種紅色名錄》被列為“近危種”,因此,研究五角楓遺傳多樣性和遺傳結(jié)構(gòu)十分迫切。
相關(guān)序列擴(kuò)增多態(tài)性(Sequence—related amplified polymorphism,SRAP) 是由美國加州大學(xué)作物系Li 和Quiros博士于2001年開發(fā)出來的一種新型分子標(biāo)記技術(shù)[5]。它克服了SSR(Simple amplified polymorphic DNA)位點較少、AFLP(Amplified fragment length polymorphism)成本高的缺點[6],是簡單經(jīng)濟(jì)、有效可靠的分子標(biāo)記系統(tǒng),已成功應(yīng)用于光核桃[6]、白花樹[7]、麥冬[8]、鴨茅[9]等植物的遺傳多樣性研究。
據(jù)姬志峰等[10]的山西霍山五角楓天然種群表型性狀研究發(fā)現(xiàn):五角楓表型性狀多樣性較高,且各個性狀之間存在一定的遺傳變異。在不同種群中,高海拔種群的表型變異較豐富,其表型多樣性就相對較高,而低海拔變異較低,表型多樣性就貧乏。本文采用相關(guān)序列擴(kuò)增多態(tài)性(SRAP)技術(shù)探討山西霍山不同海拔五角楓種群的遺傳多樣性及其遺傳結(jié)構(gòu),揭示五角楓種群的遺傳變異,了解種群內(nèi)和種群間的變異大小,分析影響五角楓遺傳結(jié)構(gòu)的因素及其與生境因子的相互關(guān)系,為合理開發(fā)利用及保護(hù)五角楓資源提供科學(xué)依據(jù)。
供試材料于2011年5月初采自山西霍山興唐寺,野外研究調(diào)查發(fā)現(xiàn),五角楓在興唐寺分布于海拔1400 m至2200 m之間, 由于海拔1400 m位于五角楓分布的邊緣地段,個體稀疏且分布不集中,受人為干擾嚴(yán)重,根據(jù)五角楓所處的地理環(huán)境,從1550 m開始采集,每個采集樣地的海拔相隔約150 m,每個采集樣地作為一個種群處理,共采集到5個種群,分別標(biāo)記為種群1(1550 m)、2(1700 m)、3(1850 m)、4(2000 m)、5(2150 m)。為避免由于營養(yǎng)繁殖所致的同一株系基因型的重復(fù)采樣,植株間距不小于30 m,每個種群隨機(jī)選取20~30個個體,同時采集每個樣地的土壤樣品和地理信息(表1)。所采集的葉片用變色硅膠迅速干燥,帶回實驗室,于-80℃超低溫冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.1DNA的提取與純度檢測
本文采用改良的2×CTAB法[11]提取五角楓基因組總DNA。
用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測樣品DNA的完整性,并用紫外分光光度計測定OD260和OD280的值,計算其純度及濃度。
1.2.2PCR擴(kuò)增與引物篩選
表2 本文中所用SRAP引物序列
選用Li和Quriros[5]所報道的引物,從88對引物組合中篩選出擴(kuò)增條帶清晰、重復(fù)性好的11對引物組合(表2),用于所有個體的DNA樣本的擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增采用10 μL的反應(yīng)體系,并對不同退火溫度、PCR擴(kuò)增循環(huán)數(shù)以及反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化。最終確定PCR的反應(yīng)體系為10 μL:0.4 μL引物(0.2 μL Me+0.2 μL Em),1 μL DNA模板,5 μL Mix,3.6 μL ddH2O,正反向引物均為0.2 μL(0.75 μmol/L),每管加10 μL礦物油覆蓋?;驍U(kuò)增儀為PTC-100型,反應(yīng)程序為94℃預(yù)變性5 min,94℃變性1 min,35℃退火1 min,72℃延伸90 s,共5個循環(huán);94℃變性1 min,60℃退火1 min,72℃延伸1 min,共30個循環(huán);72℃延伸10 min,4℃保存。擴(kuò)增結(jié)束后,取10 μL擴(kuò)增產(chǎn)物于12%的非變性的聚丙烯酰胺凝膠上電泳。電泳結(jié)束后用硝酸銀染色并照相。
對PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳圖譜進(jìn)行位點統(tǒng)計,在相近遷移位置上以有條帶的記為1,無條帶的記為0,形成原始數(shù)據(jù)。應(yīng)用POPGENE(version 1.31)[12]軟件統(tǒng)計分析表征遺傳多樣性和種群遺傳結(jié)構(gòu)的參數(shù):平均每個位點的觀察等位基因數(shù)(Na,Observed number of alleles)、平均每個位點的有效等位基因有效數(shù)目(Ne,Effective number of alleles)、多態(tài)位點百分率(PPB,Percentage of polymorphic bands)、Shannon多樣性指數(shù)(I)、Nei基因多樣性指數(shù)(h) 及基因流(Nm)。并運用MEAG4軟件進(jìn)[13]行UPGMA聚類分析種群間的遺傳關(guān)系;使用WINAMOVA(version 1.55)[14]進(jìn)行分子方差分析,計算遺傳變異在居群間和居群內(nèi)的分布及顯著水平及種群間的遺傳分化和種群間的遺傳距離;應(yīng)用SPSS17.0軟件對五角楓遺傳多樣性指數(shù)與地理梯度進(jìn)行相關(guān)性分析。
2.1SRAP標(biāo)記多態(tài)性及五角楓種群遺傳多樣性
11對引物共擴(kuò)增產(chǎn)生擴(kuò)增條帶88條,其中多態(tài)性條帶86.8條,多態(tài)性條帶比率為98.6% 。從SRAP擴(kuò)增條帶的數(shù)量來看, 每對引物組合擴(kuò)增出的總帶數(shù)在3~13之間,平均7.8條。各引物組合獲得的總帶數(shù)見表3,由表可以看出引物組合Me2/Em7擴(kuò)增的條帶數(shù)最多,上游引物Me2最多,下游引物Em8最多(圖1和表3)。
圖1 引物Me2/Em7的SRAP-PCR部分?jǐn)U增電泳圖
應(yīng)用POPGENE(version 1.31)[12]軟件統(tǒng)計分析表征遺傳多樣性和種群遺傳結(jié)構(gòu)的參數(shù),各項多樣性指數(shù)(表4)表明:觀察等位基因總數(shù)(Na)變動范圍為1.5568~1.8636,有效等位基因數(shù)(Ne)介于1.3387~1.5448之間;Nei基因多樣性指數(shù)(h)在0.1996~0.3163之間,平均為0.2373;Shannon多樣性指數(shù)(I)范圍為0.2995~0.4693,平均為0.3535五角楓種群多態(tài)位點百分率(PPB)在55.68%~86.36%之間波動,在物種水平上為98.86%,表明霍山五角楓種群具有較高的遺傳多樣性。
在遺傳多樣性的各項指標(biāo)中,均以種群4為最高(Na=1.8636、Ne=1.5448、h=0.3163、I=0.4693、PPB=86.36%),種群5為最低(Na=1.5568、Ne=1.3387、h=0.2008、I=0.3000、PPB=55.65%),五角楓種群的遺傳多樣性從低到高依次為:5<2<1<3<4。
通過與土壤因子的相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn)(表5),五角楓的各個遺傳多樣性指數(shù)與土壤因子之間及海拔因子均無顯著或極顯著相關(guān),說明五角楓的遺傳多樣性及其遺傳結(jié)夠主要受自身遺傳因素或是其它環(huán)境因子的影響。
ANOVA分析表明(表6):種群間的遺傳變異占總遺傳的21%,種群內(nèi)的占總遺傳變異的79%,說明五角楓的遺傳變異主要來源是種群內(nèi)。
各種群間的遺傳距離從0.0588到0.5027;遺傳一致度從0.6049到0.9429(表7)。種群3和5之間的親緣關(guān)系最近,遺傳一致度最高;種群1和5之間的親緣關(guān)系最遠(yuǎn),遺傳一致度最低。根據(jù)種群間的遺傳距離進(jìn)行UPGMA聚類分析(圖2),5個種群形成明顯的2支:種群1、2和4聚為一支,種群3和5聚為一支。
表3 SRAP引物組合及其擴(kuò)增的多態(tài)性條帶數(shù)
表4 五角楓種群的遺傳多樣性指數(shù)
Na—等位基因總數(shù);Ne—有效等位基因數(shù);h—Nei基因多樣性指數(shù);I—Shannon多樣性指數(shù);PPB—多態(tài)位點百分率。
表5 各遺傳多樣性指數(shù)與地理因子間的相關(guān)系數(shù)
“*”表示在0.05水平上相關(guān)達(dá)到顯著;“**”表示在0.01水平上相關(guān)達(dá)到顯著。
表6 五角楓種群的遺傳結(jié)構(gòu)(ANOVA分析)
表7 五角楓種群基于Nei 指數(shù)的遺傳距離(對角線下方)和遺傳一致度(對角線上方)
圖2五角楓種群間的遺傳距離聚類圖
Fig 2 Dendrogram ofAcermonomaxim
populations based on genetic distance
五角楓種群存在著較高的遺傳多樣性,其多態(tài)位點百分率為98.86%,低于用ISSR茶條槭種群的多態(tài)位點百分率(100%)[15],但高于用RAPD標(biāo)記檢測該屬其他植物(廟臺槭:53.13%;金錢槭:92.97%)[16-17]的多態(tài)位點百分率。
物種的遺傳多樣性不僅是長期進(jìn)化的結(jié)果,也是各種生境因子綜合作用的結(jié)果。植物類群的分類地位、分布范圍、生活史特征、繁育系統(tǒng)、種子擴(kuò)散機(jī)制、分布地區(qū)和演替階段對種群遺傳分化都有明顯影響,而其中的繁育系統(tǒng)、分布范圍和生活史特征對種群遺傳多樣性的影響最大[18]。五角楓為廣泛分布、異交且種子隨風(fēng)傳播或鳥獸取食的木本植物,其種群內(nèi)的遺傳多樣性比種群間的更豐富[19]。
在以往的研究中發(fā)現(xiàn),不同植物的遺傳多樣性與海拔之間均有一定的相關(guān)性[20]。本文中,雖然遺傳多樣性指數(shù)與海拔沒有顯著或極顯著相關(guān),但其遺傳多樣性指數(shù)與海拔呈現(xiàn)出一定的正相關(guān),隨著海拔的升高,五角楓的遺傳多樣性隨之加大,但海拔升高到一定程度(2000 m),其遺傳多樣性開始下降。這是因為,隨著海拔的升高,生存環(huán)境惡劣、基因流動困難,而且海拔升高后,溫度也隨之下降,影響到植物的生活史,從而影響植物的花期、傳粉等可引起遺傳多樣性變化的因素[21]。因而,五角楓的遺傳多樣性在海拔2000 m以下時不斷隨海拔的升高而增加,而到海拔2200 m時又開始下降。同時,野外調(diào)查發(fā)現(xiàn),由于低海拔地區(qū)受人為因素影響,植被被砍伐等致使其種群變小,隨之其遺傳多樣性降低。
AMOVA分子變異分析表明,在五角楓種群總的遺傳變異中,有21%來自于種群間,大于瀕危植物翅果油樹的種群間分化(16.79%)[21],小于同屬植物茶條槭的種間分化(36%)[15],小于三葉懸鉤子的種間分化(33.03%)[22]。
植物種群的遺傳結(jié)構(gòu)不僅決定于自身遺傳基礎(chǔ)、繁育系統(tǒng)及其起源進(jìn)化進(jìn)程,而且還受到自然選擇、遺傳漂變和基因流等因素的影響[18]。雖然五角楓種群群的遺傳變異主要存在于種群內(nèi),但種群群間仍然產(chǎn)生了一定的遺傳分化(21%)(表6,圖2)。五角楓表現(xiàn)這樣的遺傳結(jié)構(gòu)主要原因是:隨著海拔的升高,氣候和植被等也呈現(xiàn)明顯的垂直變化,不同海拔居群所處生境的溫度、光照等生態(tài)因子存在顯著差異,致使不同海拔種群微生境存在差異,最終導(dǎo)致種群間發(fā)生遺傳分化[20]。
另一個影響種群遺傳結(jié)構(gòu)的主要因素是基因流。 五角楓的基因流(Nm)為0.8094,這個數(shù)值低于一般廣泛分布植物的基因流(Nm=1.881)[23], 揭示出五角楓不同海拔之間有限的基因流。高水平的、穩(wěn)定的基因流可以防止種群間的遺傳分化[22],不同種群微生境的差異阻礙了花粉和種子的有效傳播,從而導(dǎo)致五角楓種群間的基因交流受限,產(chǎn)生分化。
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