王旭煒 付杰 王青 陳鴻宇 曾其偉 何寧佳
(家蠶基因組生物學(xué)國家重點實驗室,西南大學(xué)蠶學(xué)與系統(tǒng)生物學(xué)研究所,重慶 400716)
噻二唑苯基脲(N-phenyl-N-1,2,3-thiadiazol-5-ylurea,TDZ)是人工合成的苯基脲衍生物之一,微溶于水,易溶于DMSO(二甲基亞砜)和DMF(二甲基甲酰胺)。TDZ作為一種新型的植物生長調(diào)節(jié)劑,具有類似腺嘌呤類細胞分裂素的活性,最初被用作棉花脫葉劑[1]。TDZ不僅刺激腋芽,也能夠刺激外植體形成愈傷、誘導(dǎo)器官形成和芽的再生,因此TDZ具有較強的刺激芽擴繁的能力,能夠克服其他細胞分裂素遇到的擴繁難題。特別是TDZ濃度的變化能夠有效影響外植體的發(fā)育形式,如楊樹[2]、草莓[3]、巨尾桉[4]等。
桑樹(Morus spp.)為多年生木本植物,桑葉是家蠶主要的天然飼料,具有較高的經(jīng)濟價值。近年來,桑樹在石漠化、礦山修改、脆弱生態(tài)環(huán)境修復(fù)等生態(tài)治理中的功能也引起了越來越多的重視和關(guān)注[5-7]。桑樹基因組測序的完成[8],為研究桑樹基因功能,闡明桑樹耐逆境、富含活性次生物質(zhì)等優(yōu)勢性狀提供了良好的平臺。眾所周知,基于遺傳再生體系的插入突變體技術(shù)[9]、超量表達[10]、RNAi干擾[11]以及最近熱門的鋅指核酸酶[12]、Talen[13]、Cas9[14]等基因編輯技術(shù)是研究基因功能最有利的工具,上述基因功能研究的方法都建立在成熟的轉(zhuǎn)基因技術(shù)基礎(chǔ)之上。雖然早在1990年就開始了桑樹轉(zhuǎn)基因探索[15],在20世紀90年代也做了大量工作[16-19],但是目前世界上有顯著表型變化的桑樹轉(zhuǎn)基因研究報道數(shù)量極少[17,20-23]。究其原因,桑樹不成熟的遺傳再生體系可能是一個重要的因素,因此建立成熟、穩(wěn)定的桑樹遺傳再生體系是進行桑樹基因功能研究的重要基礎(chǔ)和前提。
TDZ具有生長素和細胞分裂素的雙重功能,許多難以再生的物種采用TDZ能達到高頻分化。近年來,TDZ在許多物種的再生中得到了廣泛的應(yīng)用[24-27],獲得了重要的研究進展,本文在綜述TDZ在再生體系功能的基礎(chǔ)上,展望了TDZ在桑樹再生體系的功能,為建立成熟穩(wěn)定的桑樹遺傳再生體系奠定基礎(chǔ)。
TDZ具有生長素和細胞分裂素的雙重功能,能誘導(dǎo)許多植物外植體不定芽的形成(表1)。0.05mg/L的TDZ并添加其它激素培養(yǎng)四周后,能100%誘導(dǎo)坪山柚上胚軸產(chǎn)生不定芽,平均不定芽數(shù)為8.35個[24]。與CPPU相比,TDZ更有助于維持虎杖愈傷組織較好的生長活力,在適宜的分化培養(yǎng)基上能夠迅速形成不定芽[25]。表1的結(jié)果表明,芽的再生主要用下胚軸、幼嫩葉片和子葉等外植體,在含有0.2~2μmol/L TDZ或者同時添加一定量的6BA和生長素類激素的培養(yǎng)基上誘導(dǎo)獲得。
表1 芽的形成
在多種植物培養(yǎng)體系中添加TDZ都能誘導(dǎo)愈傷組織形成,且愈傷細胞增殖速率大大高于其他植物生長調(diào)節(jié)劑(表2)。TDZ誘導(dǎo)文冠果幼嫩葉片的愈傷組織產(chǎn)生于葉片的邊緣及切口處,30d左右葉片全部形成愈傷組織[26]。在含TDZ培養(yǎng)基中,香椿的葉柄、莖段和葉片3種外植體均形成愈傷組織,愈傷組織的鮮重顯著提高[28]。表2結(jié)果表明,0.1~1mg/L的TDZ能夠有效的誘導(dǎo)植物外植體產(chǎn)生愈傷組織。隨著濃度升高,TDZ依次誘導(dǎo)了葉柄、莖段和葉片等外植體都形成愈傷組織。外植體在愈傷組織誘導(dǎo)過程中吸收TDZ含量比其他植物生長調(diào)節(jié)劑低,因而有人認為培養(yǎng)的植物體內(nèi)有相當(dāng)高的內(nèi)源TDZ活性物質(zhì)[39-40]。
植物體細胞胚胎發(fā)生是植物再生的重要途徑之一,也是植物發(fā)育早期階段研究的有效研究模式。TDZ對大多數(shù)植物的體細胞胚胎發(fā)生有促進作用[39],其中研究最多的是花生、蘭花和天竺葵等植物如表3。TDZ對體細胞胚胎發(fā)生的促進作用可能與處理濃度和時間有關(guān)。體細胞胚胎發(fā)生和芽再生相比,所需的TDZ濃度相對較高,范圍是10~30μmol/L。有報道認為,在植物體細胞胚胎發(fā)生過程中,TDZ能夠調(diào)節(jié)內(nèi)源植物激素或者相關(guān)的酶活性,或者通過脅迫誘導(dǎo)改變植物生理狀態(tài)[39]。
表2 愈傷組織誘導(dǎo)
在原生質(zhì)體細胞壁形成初始階段和細胞分裂期間,添加的TDZ(與生物素類物質(zhì)NAA、2,4-D配合使用)濃度在0.001~20μmol/L能夠完成原生質(zhì)體愈傷組織的植株再生(表3)。草莓的原生質(zhì)體培養(yǎng)過程中,TDZ能夠有效地提高原生質(zhì)體的存活能力同時也提高再生頻率[45]。TDZ對誘導(dǎo)原生質(zhì)體愈傷組織植株再生的作用似乎強于細胞分裂素類物質(zhì)反應(yīng),但是這種效應(yīng)的真正機理仍不清楚[39-40]。
表3 體細胞胚胎發(fā)生和原生質(zhì)體培養(yǎng)
TDZ在桑樹組織培養(yǎng)中也得到了大量應(yīng)用。在國內(nèi),TDZ可顯著提高桑樹葉片愈傷組織和再生芽的誘導(dǎo)率,通過優(yōu)化愈傷組織誘導(dǎo)及不定芽分化條件,獲得了93.9%的愈傷組織誘導(dǎo)率和100%的不定芽分化率[42,48-49]。桑樹的冬芽在添加生長激素TDZ的培養(yǎng)基上也能較好地誘導(dǎo)和促進愈傷組織的形成與生長,但會抑制生長芽的再生長[50]。
國外對TDZ在桑樹上的研究主要集中在誘導(dǎo)種子萌發(fā)、促進叢生芽、誘導(dǎo)愈傷組織或者直接誘導(dǎo)不定芽等方面。早在1994年就報道了TDZ誘導(dǎo)桑樹葉片形成再生芽[51]。S.Bhatnagar等用不同濃度(1、2.5、5、10μmol/L)處理印度桑K2和DD的下胚軸、子葉和葉片,結(jié)果發(fā)現(xiàn)5μmol/L TDZ能夠誘導(dǎo)下胚軸的不定芽再生能夠達到50%,子葉的誘導(dǎo)率能夠達到70%,而葉片在含有2.5μmol/L TDZ培養(yǎng)基培養(yǎng)30d后也能夠生產(chǎn)出不定芽,同時也發(fā)現(xiàn)用來源于體外培養(yǎng)的腋芽上的7d的葉片外植體再生效率要好于來源于幼苗和大田的葉片[38]。TDZ也能夠促進印度桑C176和C776的叢生芽生長[53]。來自14d胚的外植體被放置于添加了7μmol/L TDZ的培養(yǎng)基培養(yǎng)45d后,每個外植體能夠得到20.3個再生芽,而在選用的3個品種發(fā)現(xiàn),S-36的再生效率高于K2和S-1[37],而S-36的愈傷組織在含有1μmol/L的TDZ培養(yǎng)基上,能夠誘導(dǎo)形成最多數(shù)量的再生芽[37]。將無菌桑樹苗的葉片先放置在含有18.17μmol/L TDZ培養(yǎng)基上8~10d,然后轉(zhuǎn)移入含8.88μmol/L BA的MS培養(yǎng)基上不定芽誘導(dǎo)率達到77.6%~89.2%[53]。Umate等人發(fā)現(xiàn),印度桑原生質(zhì)體培養(yǎng)的微愈傷能夠在TDZ 4.5μmol/L培養(yǎng)基上能夠誘導(dǎo)形成完整的植株[32]。而印度桑品種V1的葉片,在添加TDZ 1.0mg/L培養(yǎng)基中能獲得63%的叢生芽和68%再生率[54]。2008年和2011年,印度桑通過TDZ誘導(dǎo)產(chǎn)生的再生植株的轉(zhuǎn)基因文獻相繼報道[20,26,55],為研究者進一步研究桑樹基因功能和遺傳育種打開窗戶,同時也為其他桑樹的再生提供了參考。
研究表明TDZ對不定芽的誘導(dǎo)增殖和對愈傷組織的誘導(dǎo)具有顯著的輔助作用[38,41,56-58]。細胞分裂素的活性研究表明,TDZ具有相當(dāng)廣泛的細胞分裂素活性,可能了刺激內(nèi)源細胞分裂素的生物合成或改變內(nèi)源細胞分裂素的代謝,從而導(dǎo)致天然細胞分裂素的增加[1,59]。此外,TDZ能刺激生長素的從頭合成,如培養(yǎng)在TDZ培養(yǎng)基中的花生幼苗的吲哚基乙胺和色氨酸含量增加[59]。
TDZ處理花生幼苗,花生體內(nèi)的礦質(zhì)元素錳、鐵、銅、鈣、鎂、鉀和ATP、ADP、AMP積累[24,59-60];TDZ處理后天竺葵根中的蛋白質(zhì)、脫落酸和4-氨基丁酸等與脅迫相關(guān)的代謝物含量增加[60]??梢?,TDZ誘導(dǎo)體細胞胚發(fā)生和再生可能是植物克服脅迫的外在表現(xiàn)。TDZ提高葉片外植體的再生效率還表現(xiàn)在其能保護葉片細胞膜結(jié)構(gòu)的完整性,抑制脂質(zhì)過氧化,抑制氧化物酶的活性,阻止葉片葉綠素的降解,延緩離體葉片的衰老[63]。
TDZ對不定芽的誘導(dǎo)增殖和對愈傷組織的誘導(dǎo)具有最適作用濃度,含量過低時效果不明顯,濃度過高對愈傷組織及不定芽的生長表現(xiàn)出明顯的毒害作用[28]。TDZ誘導(dǎo)芽再生的適宜濃度為0.01~2mg/L,高于此值則有利于愈傷組織和體細胞胚形成。0.01~0.1mg/L TDZ在含有低濃度的0.1~0.5mg/L BA和NAA的培養(yǎng)基中,能夠直接誘導(dǎo)幼嫩葉片和下胚軸產(chǎn)生芽[24,40];若缺乏BA,TDZ能夠誘導(dǎo)芽形成的適宜濃度需提高到為0.5~2.0mg/L,其原因可能在于BA和TDZ能有效協(xié)同刺激芽的誘導(dǎo)。TDZ誘導(dǎo)愈傷組織的適宜濃度與誘導(dǎo)芽相近或者稍高的原因是,大多數(shù)植物芽的誘導(dǎo)可能先形成愈傷組織,進而植物感受到細胞外環(huán)境的脅迫,進一步誘導(dǎo)芽的形成。TDZ誘導(dǎo)體細胞胚和原生質(zhì)體報道相對較少,單獨添加高于2.0mg/L的TDZ就能夠誘導(dǎo)體細胞胚的發(fā)生,原生質(zhì)體培養(yǎng)的TDZ的適宜濃度為0.001~20μmol/L如(表3)。
TDZ同時具有細胞分裂素和生長素活性,能夠直接誘導(dǎo)葉片、子葉和下胚軸形成再生芽,因而相較于其它細胞分裂素具有獨特的優(yōu)勢。TDZ的這種再生優(yōu)勢在桑樹組織培養(yǎng)中也得到較好應(yīng)用,其最適的濃度為0.5~4mg/L[20-23]。當(dāng)然,TDZ誘導(dǎo)桑樹再生所需時間存在差異,子葉和下胚軸5~10d就能誘導(dǎo)出再生芽,而葉片需要30~40d[38]。此外,采用TDZ先誘導(dǎo)愈傷組織進而誘導(dǎo)芽則需要更長的時間才能獲得再生,在此過程中還需要其它細胞分裂素及生長素的參與[42]。
TDZ誘導(dǎo)桑樹再生除了時間上存在差異外,在組織來源上也存在差異,來源于腋芽的葉片的再生率高于直接來源于野外的葉片或幼苗葉片[38]。這是因為腋芽的葉片適應(yīng)了組培環(huán)境,對TDZ引發(fā)脅迫的耐受性更高,使TDZ能夠持續(xù)作用于葉片。外植體的成熟度也是影響再生的關(guān)鍵因素,擴繁后5~10d的桑樹外植體(子葉和下胚軸)再生率要高于其他時間[38]。
由此可見,TDZ是誘導(dǎo)植物再生的有效激素,可應(yīng)用于桑樹再生體系的建立,前人所做的有益探索,為我們奠定了堅定的基礎(chǔ)。以TDZ為主要激素源,桑樹再生體系探索可以圍繞以下幾個方面進行:①建立高效的桑樹無菌繁殖體系是基礎(chǔ);②篩選適合的桑樹組織外植體;③根據(jù)再生途徑篩選適宜的TDZ作用濃度;④混合使用其它細胞分裂素、生長素以及AgNO3等提高桑樹再生頻率。目前桑樹學(xué)科已經(jīng)進入基因組時代,高效穩(wěn)定的遺傳再生體系將是研究桑樹基因功能最有效的方法,本文將為桑樹再生體系的建立提供有益的借鑒。
[1]Mok M C,Mok D,Turner J,et al.Biological and biochemical effects of cytokinin-active phenylurea derivatives in tissue culture systems[J].HortScience,1987,22:1194-1197.
[2]Wang H M,Liu H M,Wang W J,et al.Effects of Thidiazuron,basal medium and light quality on adventitious shoot regeneration from in vitro cultured stem of Populus alba×P.berolinensis[J].Journal of Forestry Research,2008,19(3):257-259.
[3]尹淑萍,金萬梅,王萍,等.Thidiazuron對草莓外植體再生不定芽的影響[J].農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報,2003,(04):379-382.
[4]裘珍飛,曾炳山,李湘陽,等.TDZ對巨尾桉(GL9)胚性愈傷組織誘導(dǎo)和再生的影響[J].林業(yè)科學(xué)研究,2009,22(5):740-743.
[5]劉蕓.桑樹在三峽庫區(qū)植被恢復(fù)中的應(yīng)用前景[J].蠶業(yè)科學(xué),2011,37(1):93-97.
[6]談承隴,馮永德,龍惠.桑樹在我國低碳與生態(tài)經(jīng)濟中重要作用的思考[J].四川蠶業(yè),2010,38(1):12-15.
[7]蘇超,薛忠民,焦鋒.陜北黃土高原適生桑樹種質(zhì)資源及栽培特點和生態(tài)防護作用[J].蠶業(yè)科學(xué),2012,38(1):146-151.
[8]He N,Zhang C,Qi X,et al.Draft genome sequence of the mulberry tree Morus notabilis[J].Nature communications,2013,4:2445doi:10.1038/ncomms3445.
[9]Kobayashi K,Nakahori Y,Miyake M,et al.An ancient retrotransposal insertion causes Fukuyama-type congenital muscular dystrophy[J].Nature,1998,394(6691):388-392.
[10]Roxas V P,Smith R K,Allen E R,et al.Overexpression of glutathione S-transferase/glutathioneperoxidase enhances the growth of transgenic tobacco seedlings during stress[J].Nature biotechnology,1997,15(10):988-991.
[11]Jackson A L,Bartz S R,Schelter J,et al.Expression profiling reveals off-target gene regulation by RNAi[J].Nature biotechnology,2003,21(6):635-637.
[12]肖安,胡瑩瑩,王唯曄,等.人工鋅指核酸酶介導(dǎo)的基因組定點修飾技術(shù)[J].遺傳,2011,33(7):665-683.
[13]Li T,Liu B,Spalding M H,et al.High-efficiency TALEN-based gene editing produces disease-resistant rice[J].Nature biotechnology,2012,33(5):390-392.
[14]Cho S W,Kim S,Kim J M,et al.Targeted genome engineering in human cells with the Cas9RNA-guided endonuclease[J].Nature biotechnology,2013,31(3):230-232.
[15]Machii H.Leaf disc transformation of mulberry plant(Morus alba L.)by Agrobacterium Ti plasmid[J].Journal of Sericultural Science of Japan,1990,59.
[16]談建中,樓程富,鐘名其,等.大豆球蛋白基因表達載體的構(gòu)建及對桑樹的遺傳轉(zhuǎn)化[J].蠶業(yè)科學(xué),1999,25(1):5-9.
[17]王勇,賈士榮.抗菌肽基因?qū)肷浍@得抗病轉(zhuǎn)基因植株[J].蠶業(yè)科學(xué),1998,24(3):136-140.
[18]樓程富,談建中.植物轉(zhuǎn)基因技術(shù)及其在桑樹上的應(yīng)用[J].中國蠶業(yè),1997,2(014):26-27.
[19]藍玲,曹陽,葉可可,等.廣東桑葉盤和種子萌發(fā)苗莖段的轉(zhuǎn)基因技術(shù)研究[J].廣東蠶業(yè),1996,30(4):18-26.
[20]Das M,Chauhan H,Chhibbar A,et al.High-efficiency transformation and selective tolerance against biotic and abiotic stress in mulberry,Morus indica cv.K2,by constitutive and inducible expression of tobacco osmotin[J].Transgenic research,2011,20(2):231-246.
[21]Bhatnagar S,Kapur A,Khurana P.Evaluation of parameters for high efficiency gene transfer via Agrobacterium tumefaciens and production of transformants in Indian mulberry,Morus indica cv.K2[J].Plant Biotechnology,2004,21(1):1-8.
[22]Lal S,Gulyani V,Khurana P.Overexpression of HVA1gene from barley generates tolerance to salinity and water stress in transgenic mulberry(Morus indica)[J].Transgenic research,2008,17(4):651-663.
[23]Bhatnagar S,Khurana P.Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of Indian mulberry,Morus indica cv.K2:a time-phased screening strategy[J].Plant cell reports,2003,21(7):669-675.
[24]曾艷,鄒利娟,蘇智先,等.坪山柚上胚軸離體再生體系的建立[J].熱帶亞熱帶植物學(xué)報,2010,18(3):298-303.
[25]于樹宏,張嫡群,楊雙革.TDZ和CPPU在虎杖組織培養(yǎng)中的應(yīng)用[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報,2006 12(1):13-17.
[26]任如意,王書臻,司徒琳莉,等.噻重氮苯基脲對文冠果愈傷組織誘導(dǎo)與分化的影響[J].北方園藝,2011,(6)127-129.
[27]王港,李周岐,劉曉敏,等.花椒組織培養(yǎng)再生體系的建立[J].西北林學(xué)院學(xué)報,2008,23(3):117-119.
[28]張小紅,張紅燕,武軍,等.TDZ對香椿愈傷組織誘導(dǎo)及芽增殖生長等的影響[J].西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2002,30(5):35-39.
[29]王洋,崔繼哲,李翠玲.大白菜高頻再生體系的建立及策略[J].園藝學(xué)報,2005,32(4):701-703.
[30]盧永恩,李漢霞,葉志彪.激素TDZ對促進白菜下胚軸不定芽再生的效應(yīng)分析[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2003,22(6):591-594.
[31]Kumar N,Reddy M P.Thidiazuron(TDZ)induced plant regeneration from cotyledonary petiole explants of elite genotypes of Jatropha curcas:A candidate biodiesel plant[J].Industrial Crops and Products,2012,39:62-68.
[32]Umate P,Rao K V,Kiranmayee K,et al.Plant regeneration of mulberry(Morus indica)from mesophyll-derived protoplasts[J].Plant cell,tissue and organ culture,2005,82(3):289-293.
[33]Ismail N,Rani U,Batra A.Crucial role of TDZ in the quick regeneration of multiple shoots of Clitoria ternatea L[J].Int J Pharma Sci Rev Res,2011,6(2):23-26.
[34]Lata H,Chandra S,Wang Y H,et al.TDZ-Induced High Frequency Plant Regeneration through Direct Shoot Organogenesis in Stevia rebaudiana Bertoni:An Important Medicinal Plant and a Natural Sweetener[J].American Journal of Plant Sciences,2013,4:117-128.
[35]Parveen S,Shahzad A.TDZ-induced high frequency shoot regeneration in Cassia sophera Linn.via cotyledonary node explants[J].Physiology and Molecular Biology of Plants,2010,16(2):201-206.
[36]Basalma D,Uranbey S,Mirici S,et al.TDZ x IBA induced shoot regeneration from cotyledonary leaves and in vitro multiplication in safflower(Carthamus tinctorius L.)[J].African Journal of Biotechnology,2008,7(8):960-966.
[37]Thomas T D.Thidiazuron induced multiple shoot induction and plant regeneration from cotyledonary explants of mulberry[J].Biologia plantarum,2003,46(4):529-533.
[38]Bhatnagar S,Kapur A,Khurana P.TDZ-mediated differentiation in commercially valuable Indian mulberry,Morus indica cultivars K2and DD[J].Plant Biotechnology,2001,18(1):61-65.
[39]陳云鳳,張春榮,黃霞,等.TDZ對植物體細胞胚胎發(fā)生的作用[J].植物生理學(xué)通訊,2006,42(1):127-133.
[40]徐曉峰,黃學(xué)林.TDZ:一種有效的植物生長調(diào)節(jié)劑[J].植物學(xué)通報,2003,20(2):227-237.
[41]曾宋君,陳之林,吳坤林,等.兜蘭無菌播種和組織培養(yǎng)研究進展[J].園藝學(xué)報,2007,34(3):793-796.
[42]王彥文,黃艷紅,路國兵,等.桑樹葉片愈傷組織的誘導(dǎo)及不定芽分化影響因素的研究[J].蠶業(yè)科學(xué),2006,32(2):157-160.
[43]張前勇,蔡慧敏,周毅峰.TDZ在天師栗愈傷組織誘導(dǎo)中的應(yīng)用[J].浙江林業(yè)科技,2007,27(5):54-57.
[44]薛寒青,王艦,周淑蘭.TDZ對誘導(dǎo)大蒜愈傷組織形成的影響[J].長江蔬菜,2009,14):19-20.
[45]Murthy B,Murch S,Saxena P K.Thidiazuron:A potent regulator ofin vitro plant morphogenesis[J].In Vitro Cellular &Developmental Biology-Plant,1998,34(4):267-275.
[46]林榮雙,王慶華,梁麗琨,等.TDZ誘導(dǎo)花生幼葉的不定芽和體細胞胚發(fā)生的組織學(xué)觀察[J].植物研究,2003,23(2):169-172.
[47]Tegeder M,Gebhardt D,Schieder O,et al.Thidiazuron-induced plant regeneration from protoplasts of Vicia faba cv.Mythos[J].Plant Cell Reports,1995,15(3-4):164-169.
[48]黃艷紅.桑樹高頻再生體系建立與遺傳轉(zhuǎn)化體系研究[D];山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2007.
[49]黃艷紅,牟志美,樊金會,等.噻二唑苯基脲對桑樹愈傷組織誘導(dǎo)的影響[J].蠶業(yè)科學(xué),2006,32(1):103-105.
[50]王茜齡,余亞圣,李軍,等.利用桑樹特異種質(zhì)資源的冬芽組織培養(yǎng)再生植株的試驗[J].蠶業(yè)科學(xué),2012,05):924-929.
[51]Thinh N T,片桐幸逸.Induction of adventitious buds in mulberry leaves by Thidiazuron[J].日本蠶糸學(xué)雑誌,1994,63(6):514-516.
[52]Bhatnagar S,Das M,Khurana P.TDZ-mediated micropropagation of Indian mulberry cultivars C176and C776[J].Indian J Sericult,2002,41 80-83.
[53]Chitra D,Padmaja G.Shoot regeneration via direct organogenesis from in vitro derived leaves of mulberry using thidiazuron and 6-benzylaminopurine[J].Scientia horticulturae,2005,106(4):593-602.
[54]Melur K R,Karaba N N,Jyothi S M,et al.In Vitro Plant Regeneration of Morus indica L.cv.V1Using Leaf Explant[J].American Journal of Plant Sciences,2013,4:2001..
[55]Checker V G,Chhibbar A K,Khurana P.Stress-inducible expression of barley Hva1 gene in transgenic mulberry displays enhanced tolerance against drought,salinity and cold stress[J].Transgenic research,2012,21(5):939-957.
[56]Mok M,Mok D,Armstrong D,et al.Cytokinin activity of N-phenyl-N′-1,2,3-thiadiazol-5-ylurea(thidiazuron)[J].Phytochemistry,1982,21(7):1509-1511.
[57]陳肖英,葉慶生,劉偉.TDZ研究進展(綜述)[J].亞熱帶植物科學(xué),2003,32(3):59-63.
[58]Ahmed M R,Anis M.Role of TDZ in the Quick Regeneration of Multiple Shoots from Nodal Explant of Vitex trifolia L.-an Important Medicinal Plant[J].Applied biochemistry and biotechnology,2012,168(5):957-966.
[59]Murthy B,Murch S J,Saxena P K.Thidiazuron-induced somatic embryogenesis in intact seedlings of peanut(Arachis hypogaea):Endogenous growth regulator levels and significance of cotyledons[J].Physiologia plantarum,1995,94(2):268-276.
[60]Murch S J,Krishnaraj S,Saxena P K.Thidiazuron-induced morphogenesis of Regal geranium(Pelargonium domesticum):A potential stress response[J].Physiologia Plantarum,1997,101(1):183-191.
[61]Murch S,Saxena P.Modulation of mineral and free fatty acid profiles during thidiazuron mediated somatic embryogenesis in peanuts(Arachis hypogea L.)[J].Journal of plant physiology,1997,151(3):358-361.
[62]Kiyosue T,Takano K,Kamada H,et al.Induction of somatic embryogenesis in carrot by heavy metal ions[J].Canadian journal of botany,1990,68(10):2301-2303.
[63]吳緒東,謝清忠,王彥文,等.噻二唑苯基脲(TDZ)對離體培養(yǎng)桑樹葉片的抗老化能力影響[J].蠶業(yè)科學(xué),2010,(04):667-670.