賈宏信,蘇米亞,陳文亮,郭艷紅,齊曉彥
(光明乳業(yè)股份有限公司研究院,乳業(yè)生物技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200436)
母乳微生物的研究進(jìn)展
賈宏信,蘇米亞,陳文亮,郭艷紅,齊曉彥
(光明乳業(yè)股份有限公司研究院,乳業(yè)生物技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200436)
傳統(tǒng)培養(yǎng)技術(shù)和現(xiàn)代分子學(xué)技術(shù)已證明母乳內(nèi)具有多種微生物,包含葡萄球菌屬、鏈球菌屬、腸球菌屬、乳桿菌屬和雙歧桿菌屬等。最新研究也證明母乳內(nèi)的微生物,有些具有特殊的功能如抗HIV、治療乳腺炎及通過孕產(chǎn)婦腸道到達(dá)乳腺等。本文就母乳內(nèi)微生物的來源、種類、鑒定方法、特殊功能及應(yīng)用的研究進(jìn)行了綜述,并展望了母乳微生物的研究方向,以期能為母乳微生物的進(jìn)一步研究和利用提供指導(dǎo)。
母乳,母乳微生物,益生菌,乳腺炎,HIV
母乳是嬰兒最健康的食物,母乳不但能為嬰兒生長提供足夠的營養(yǎng)物質(zhì),還能為嬰兒提供腸道生長因子和生物活性物質(zhì),提高嬰兒的耐受能力[1]。經(jīng)母乳喂養(yǎng)的嬰兒其呼吸道和胃腸道抗感染的能力較強(qiáng)[2],哮喘和過敏性疾病的發(fā)病率較低[3],疾病持續(xù)時間較短[4]。這也許與初乳和母乳內(nèi)所包含的抗體、細(xì)胞因子、免疫活性細(xì)胞、多胺、低聚糖、乳鐵蛋白和溶菌酶等的作用相關(guān)[4-5]。另外母乳內(nèi)的微生物可以傳遞給嬰兒,對嬰兒腸道內(nèi)的微生物群系產(chǎn)生一定的影響,某些微生物還具有抑制病原微生物在嬰兒腸道內(nèi)生長定殖的作用,如雙歧桿菌,乳桿菌等[6-9]。母乳內(nèi)微生物的特點(diǎn)有:來源安全(具有幾千年被食用歷史);種類繁多(包含葡萄球菌、鏈球菌、乳桿菌、雙歧桿菌、腸球菌、不動桿菌屬等);具有傳遞性(能夠通過母乳傳遞給嬰兒,并在嬰兒腸道內(nèi)定殖);重要的益生菌菌庫(含乳桿菌屬和雙歧桿菌屬兩大益生菌屬);不同個體的母乳微生物種類存在差異,且同一產(chǎn)婦其母乳微生物組成和數(shù)量具有動態(tài)性;另外部分菌株具有抑菌、從產(chǎn)婦腸道通過乳腺進(jìn)入母乳并傳遞給嬰兒、治療乳腺炎和抗HIV等作用。本文著重介紹研究者所關(guān)注的初乳和母乳內(nèi)微生物的種類,來源和母嬰間微生物的傳遞方式及母乳源益生菌的應(yīng)用等,以期為母乳內(nèi)微生物的進(jìn)一步研究提供參考。
母乳內(nèi)是否具有微生物一直備受爭議,傳統(tǒng)理論認(rèn)為母乳由于受到污染才具有的微生物,這些污染源包括孕產(chǎn)婦皮膚和嬰兒口腔內(nèi)的微生物(主要發(fā)生在嬰兒吮吸母乳時),孕產(chǎn)婦的腸道和陰道內(nèi)微生物(主要發(fā)生在孕產(chǎn)婦生嬰兒的過程中)。但是這一理論很難解釋為什么嚴(yán)格厭氧菌雙歧桿菌能在母乳內(nèi)分離得到(表1),以及初乳內(nèi)能分離得到多種細(xì)菌的問題[10]。因此越來越多的研究者相信母乳內(nèi)的微生物來源存在其他路徑,Perez等[11]2007年證明細(xì)菌可通過內(nèi)生的路徑到達(dá)孕產(chǎn)婦的乳腺,而樹突狀細(xì)胞(DCs)和巨噬細(xì)胞在這一通路的實(shí)現(xiàn)上起著重要作用。DCs能打開上皮細(xì)胞的緊密連接,把樹突伸向上皮細(xì)胞外直接抓取細(xì)菌,而無需破壞上皮細(xì)胞的完整性[12]。另外DCs還能維持少量的共生細(xì)菌在腸系膜淋巴結(jié)存活幾天[13]以及受抗原刺激的細(xì)胞能從腸粘膜移動到粘膜表面定殖,例如到呼吸道、泌尿生殖道、唾液腺、淚腺、特別是乳腺進(jìn)行定殖,這些都為細(xì)菌伴隨淋巴系統(tǒng)的循環(huán)到達(dá)人體的其他部位提供了條件。最新研究也證明母乳內(nèi)微生物的來源存在一個內(nèi)生的路徑,Jiménez等[14]發(fā)現(xiàn)口服乳桿菌(唾液乳桿菌CECT5713和格氏乳桿菌CECT5714)膠囊制劑的乳腺炎患者,30d后乳桿菌能在60%的產(chǎn)婦母乳內(nèi)分離得到;另外Arroyo等[15]也發(fā)現(xiàn),口服發(fā)酵乳桿菌CECT5716的124位乳腺炎患者有67位的母乳內(nèi)有發(fā)酵乳桿菌CECT5716檢出,口服唾液乳桿菌CECT5713的127位乳腺炎患者有68位的母乳內(nèi)有唾液乳桿菌CECT5713檢出;Makino等[9]2011年研究8對母嬰之間的雙歧桿菌是否存在關(guān)聯(lián)時發(fā)現(xiàn),兩株Bifidobacterium longum subsp.Longum分別專屬于兩對母嬰,這兩株菌分別都能從產(chǎn)婦的糞便和乳液,嬰兒的糞便內(nèi)分離得到。
2.1 母乳微生物的鑒定
母乳微生物的傳統(tǒng)分離法為培養(yǎng)基篩選法,該法首先把母乳內(nèi)的微生物通過一定的選擇性培養(yǎng)基篩選出來,再對菌株進(jìn)行鑒定。這一方法的優(yōu)點(diǎn)在于可以得到分離的菌株,可以實(shí)現(xiàn)計(jì)數(shù),但是該法操作復(fù)雜繁瑣,耗時。用于母乳內(nèi)微生物分離的培養(yǎng)基有:培養(yǎng)非難養(yǎng)細(xì)菌、酵母和霉菌的腦心浸液(BHI),培養(yǎng)腸道菌的結(jié)晶紫中性紅膽鹽瓊脂(VRBA),培養(yǎng)難養(yǎng)菌的哥倫比亞萘啶酸瓊脂(CNA),培養(yǎng)乳酸菌的卡那霉素七葉苷疊氮瓊脂(KAA),培養(yǎng)厭氧菌的Wilkinse-Chalgren(WCh),培養(yǎng)乳酸菌和雙歧桿菌的MRS,培養(yǎng)葡萄狀球菌的Baird-Parker氏培養(yǎng)基(BP)以及培養(yǎng)總細(xì)菌的營養(yǎng)瓊脂[10,16-18]。通過這些培養(yǎng)基的培養(yǎng)與篩選已分離出大量的母乳細(xì)菌(表1)。
母乳微生物的現(xiàn)代分析法為非培養(yǎng)依賴法,即分子學(xué)分析法,該法操作簡單,直接進(jìn)行母乳微生物DNA的多樣性分析就可以得出微生物的種類與構(gòu)成,但是該法無法分離得到菌株。目前應(yīng)用于母乳內(nèi)微生物組成分析的分子學(xué)方法有PCR-DGGE/TGGE,實(shí)時定量PCR(qRTi-PCR)和454焦磷酸測序等。PCR-DGGE/TGGE分析后可以根據(jù)數(shù)據(jù)庫的比對分析出母乳微生物的種甚至亞種,如Martín等[19]用PCR-DGGE分析母乳細(xì)菌多樣性時4個樣品共分析出20多種細(xì)菌,包含人葡萄球菌、表皮葡萄球菌、唾液鏈球菌、輕型鏈球菌、乳酸乳球菌、植物乳桿菌以及不動桿菌屬和韋永氏球菌屬等。而qRTi-PCR卻僅能分析出復(fù)雜樣品內(nèi)某一類群微生物及數(shù)量,如Martín等用qRTi-PCR評價母乳內(nèi)總細(xì)菌和雙歧桿菌的數(shù)量[17],比較母乳和嬰兒糞便細(xì)菌組成的差異性[16];Collado等[20]用qRTi-PCR分析母乳內(nèi)細(xì)菌群落的多樣性。qRTi-PCR分析常用的引物[16-17,20],見表2。454焦磷酸測序因其高通量、快速、準(zhǔn)確和靈敏度高等特點(diǎn)已應(yīng)用于多種微生物區(qū)系的分析,Hunt等[21]2011年用454焦磷酸測序首次分析出母乳內(nèi)存在沙雷氏菌屬(Serratia)、羅爾斯通菌屬(Ralstonia)和鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas)。這些事例說明兩種母乳菌相構(gòu)成的分析方法,都存在各自的優(yōu)越性,分子學(xué)可以快速和簡便,而培養(yǎng)基篩選可以分離得到相應(yīng)的菌株以便對菌株作進(jìn)一步的研究。
表1 母乳內(nèi)檢測出的主要細(xì)菌菌屬和菌種類別Table.1 Main bacterial genera and species detected in human milk
續(xù)表
2.2 母乳微生物的種類
初乳和母乳內(nèi)都有復(fù)雜的微生物區(qū)系存在[10,20],研究者通過微生物的分離鑒定證明母乳含有的微生物主要為葡萄球菌屬(Staphylococcus)、鏈球菌屬(Streptococcus)、腸球菌屬(Enterorococcus)、乳桿菌屬(Lactobacillus)、雙歧桿菌屬(Bifidobacterium)和明串珠菌屬(Leuconostoc)等,而通過現(xiàn)代分子學(xué)技術(shù)進(jìn)一步確定了母乳內(nèi)存在復(fù)雜的微生物區(qū)系(表1)[8-11,16-34]。如Albesharat等[28]分析的15份母乳樣品內(nèi)主要細(xì)菌為溶血葡萄球菌(Staph.Haemolyticus)、解沒食子酸鏈球菌(Streptococcus gallolyticus)、前庭鏈球菌(Str.vestibularis)、耐久腸球菌(Enterococcus durans)、海氏腸球菌(E.hirae)、蒙氏腸球菌(E.mundtii)、短乳桿菌(Lactobacillus brevis)、口乳桿菌(L.oris)、動物乳桿菌(L.animalis)等;Collado等[20]用qRTi-PCR分析50份母乳細(xì)菌群落多樣性發(fā)現(xiàn),50份母乳都能檢出葡萄球菌、鏈球菌、乳酸桿菌和雙歧桿菌,96%的母乳內(nèi)能檢出梭狀芽胞桿菌XIVa-XIVb,76%的母乳能檢出腸球菌。母乳內(nèi)微生物得到分離并鑒定的菌株出現(xiàn)頻率較高的為:表皮葡萄球菌、里昂葡萄球菌、人葡萄球菌、金黃葡萄球菌、唾液鏈球菌、輕型鏈球菌、糞腸球菌、發(fā)酵乳桿菌、格氏乳桿菌、長雙歧桿菌、短雙歧桿菌(表1)。Jiménez等[10]2008年通過菌株的分離鑒定分析出36個初乳樣品內(nèi)有30個樣品能檢出表皮葡萄球菌(Staph.epidermidis),8個樣檢出里昂葡萄球菌(Staph.lugdunensis),4個樣檢出人葡萄球菌(Staph.hominis),15個樣檢出糞腸球菌(E.faecalis),9個樣檢出輕型鏈球菌(Str.mitis)和4個樣檢出腸膜明串珠菌(leuconostoc mesenteroides)等。不同的研究者所分析出來的母乳菌相構(gòu)成有所差別可能與母乳樣品的采集時間和采集個體有關(guān)[21,27,35]。Solís等[27]跟蹤分析了20個母乳樣在不同時間內(nèi)(泌乳1、10、30和60d)乳酸菌和雙歧桿菌的數(shù)量變化,發(fā)現(xiàn)母乳菌相構(gòu)成為:1d時鏈球菌65%,葡萄球菌29%,腸球菌和雙歧桿菌各3%;10d時鏈球菌38%,葡萄球菌50%,腸球菌8%,乳酸桿菌4%;30d時鏈球菌36%,葡萄球菌43%,雙歧桿菌11%,乳酸桿菌7%,其他厭氧菌3%;60d時鏈球菌50%,葡萄球菌31%,雙歧桿菌4%,乳酸桿菌11%,其他厭氧菌4%。另外魏斯氏菌屬(Weissella)、沙雷氏菌屬和羅爾斯通菌屬、韋榮球菌屬(Veillonella)、假單胞菌屬(Pseudomonas)和鞘氨醇單胞菌屬僅通過分子學(xué)技術(shù)得到了鑒定(表1),這可能說明這些菌株很難通過現(xiàn)有的選擇性培養(yǎng)基培養(yǎng)分離得到,也進(jìn)一步說明分子學(xué)技術(shù)在分析母乳菌相構(gòu)成時可能更加客觀。
表2qRTi-PCR引物Table.2 qRTi-PCR primers
母乳微生物具有抑制病原微生物生長[24,36]、調(diào)節(jié)免疫[37-39]、調(diào)節(jié)腸道健康[40-41]、增強(qiáng)流感疫苗的效果[42],治療乳腺炎[14-15]、減少嬰兒胃腸道和上呼吸道感染[43],產(chǎn)生抑菌物質(zhì)[24,30,44]以及抗HIV[45-46]等作用。
3.1 母乳微生物的抑菌作用
Heikkil?等[24]研究母乳內(nèi)微生物對一株金黃色葡萄球菌(能引起乳腺炎感染)的抑制時發(fā)現(xiàn),分離得到的所有腸球菌、鼠李糖乳桿菌和彎曲乳桿菌都具有抑制葡萄球菌生長的作用,另外41%唾液鏈球菌及23%的表皮葡萄球菌也具有抑制金黃色葡萄球菌生長的作用。Olivares等[36]發(fā)現(xiàn)四株源自母乳的乳桿菌(唾液乳桿菌CECT5713,格氏乳桿菌CECT5714/CECT5715和發(fā)酵乳桿菌CECT5716)都能抑制豬霍亂沙門菌和金黃色葡萄球菌,以及部分菌株能抑制埃希氏大腸桿菌,李氏特菌和梭狀芽孢桿菌的作用。Jara等[40]研究來自母乳的乳桿菌對12種胃腸道病原體(4株大腸桿菌,4株志賀氏菌,3株腸炎沙門氏菌和一株假單胞菌)的抑制作用發(fā)現(xiàn),有4株乳桿菌對部分病原菌有抑制作用,2株乳桿菌能抑制這12種致病菌。這說明母乳內(nèi)的乳桿菌具有較寬的抑菌譜。母乳內(nèi)的某些菌株能產(chǎn)生抑菌物質(zhì),如Shea研究表明30%的母乳含有能產(chǎn)生乳酸鏈球菌肽的乳酸乳球菌[30],而一株來自母乳的糞腸球菌C901被證明能產(chǎn)生腸道菌素C[44]。母乳微生物的葡萄球菌、鏈球菌、片球菌、乳酸乳球菌特別是乳桿菌還具有抗HIV的作用,如彎曲乳桿菌VM25致死菌體對R5 HIV-1感染的抑制率高達(dá)55.5%,格氏乳桿菌VM22的致死菌體對X4 HIV-1感染的抑制率高達(dá)81.5%,唾液鏈球菌VM18的致死菌體對X4 HIV-1和R5/X4 HIV-1感染的抑制率分別為81%和64%[45-46](表3)。
表3 母乳乳酸菌對R5-、X4-和R5/X4-HIV-1的抑制作用Table.3 Inhibition of R5-,X4-and R5/X4-Tropic HIV-1 by LAB from Human Breast milk
3.2 母乳微生物的益生作用
菌株的腸道定殖能力以及食用安全是菌株成為益生菌的重要條件。2007年Villoslada等[47]用50只健康的BALB/c小鼠對唾液乳桿菌CECT5713的口服毒性進(jìn)行了評估,結(jié)果表明即使小鼠食用CECT5713的劑量高于人體正常食用的10000倍也是安全的,作者初步得出食用CECT5713是安全的。2010年Maldonado等[48]研究嬰兒食用益生菌食品(含CECT5713)對嬰兒健康的影響時發(fā)現(xiàn),食用CECT5713的嬰兒和對照組嬰兒在臨床和體格檢查上無顯著性差異,而且還證明了食用CECT5713的嬰兒其腹瀉發(fā)生率和呼吸道感染率明顯低于對照組。Gil-Campos等[49]的研究表明食用益生菌食品(含CECT5716)的嬰兒和對照組相比嬰兒(4-6mon)的體重和身高無顯著差異,但是對照組嬰兒的胃腸道感染發(fā)生率卻是實(shí)驗(yàn)組的3倍。以上說明,CECT5713和CECT5716不但可以作為益生菌被人食用,同時也說明這兩株菌能夠調(diào)節(jié)人體腸道健康。CECT5713和CECT5716還具有提高人體免疫力的益生作用。Pérez-Cano等[38]2010年發(fā)現(xiàn)唾液乳桿菌CECT5713和發(fā)酵乳桿菌CECT5716具有加強(qiáng)人體先天性免疫和獲得性免疫的能力,兩株乳桿菌都能激活先天免疫的NK細(xì)胞,使CD8+NK亞群大量表達(dá)CD69;另外兩株乳桿菌大約能激活9%的與獲得性免疫有關(guān)的CD8+T細(xì)胞。這兩株乳桿菌在體外還能誘導(dǎo)外周單個核細(xì)胞產(chǎn)生細(xì)胞因子和趨化因子,包含TNFα、IL-1β、IL-8、MIP-1α、MIP-1β和GM-CSF。
目前母乳來源的益生菌有唾液乳桿菌CECT5713、格氏乳桿菌CECT5714和發(fā)酵乳桿菌CECT5716[7]。這些菌株的益生特性表現(xiàn)為:唾液乳桿菌CECT5713具有腸道定殖和產(chǎn)抑菌物質(zhì)[32]、抑菌[36]、免疫調(diào)節(jié)[37-38]、抗炎[50]、食用安全[47-48]、抗HIV(表3)[46]、改善成人腸道微生物[41]、治療感染性乳腺炎[14-15]等作用。格氏乳桿菌CECT5714具有腸道定殖和產(chǎn)抑菌物質(zhì)[31]、抑菌[36]、改善腸道功能[51]、提高人體免疫[39]、治療感染性乳腺炎[14]等作用。發(fā)酵乳桿菌CECT5716具有腸道定殖和產(chǎn)抑菌物質(zhì)[31]、抑菌[36]、減輕腸道炎癥[52]、免疫調(diào)節(jié)[38]、治療感染性乳腺炎[15]、增強(qiáng)流感疫苗效果[42]、嬰兒食用安全[49]、減少嬰兒胃腸道和上呼吸道感染的發(fā)病率[43]等作用。
3.3 母乳微生物的生物治療作用
分離自母乳的益生菌(CECT5713、CECT5714和CECT5716)具有作為生物治療劑的潛力。乳腺炎是產(chǎn)婦哺乳期常見的疾病,一般認(rèn)為金黃色葡萄球菌是引起急性乳腺炎的病原體,而表皮葡萄球菌與慢性或亞急性乳腺炎有關(guān)。上面提到來自母乳的微生物大多有抑制金黃色葡萄球菌的能力,而Jiménez等[14]和Arroyo等[15]的實(shí)驗(yàn)證明哺乳期產(chǎn)婦口服CECT5713、CECT5714和CECT5716能治療乳腺炎。Jiménez把20位患有乳腺炎的患者隨機(jī)均分為兩組,實(shí)驗(yàn)組每天口服含有益生菌CECT5713和CECT5714的甲基纖維素膠囊,對照組僅服用無益生菌的膠囊。實(shí)驗(yàn)開始前兩組患者母乳內(nèi)葡萄球菌的數(shù)量無顯著差異,母乳都無乳桿菌的檢出。14d后實(shí)驗(yàn)組的患者已無乳腺炎的臨床癥狀,30d后實(shí)驗(yàn)組患者母乳內(nèi)葡萄球菌的數(shù)量為2.96lg CFU/mL,遠(yuǎn)低于對照組(4.97lg CFU/mL),而且有6位患者的母乳內(nèi)分離得到了CECT5713和CECT5714。Arroyo卻以患者分別服用CECT5713和CECT5716治療乳腺炎的實(shí)驗(yàn)組(兩組:A,n=124;B,n=127)和一組進(jìn)行抗生素治療的對照組(C=101)相比證明這兩株益生菌都能治療乳腺炎。0d時3組患者的母乳內(nèi)葡萄球菌的數(shù)量無顯著差異,并且無乳桿菌的檢出。21d時實(shí)驗(yàn)組患者母乳內(nèi)葡萄球菌的數(shù)量為2.61和2.33lg CFU/mL,對照組為3.28lg CFU/mL,并且能在服用益生菌的對應(yīng)母乳內(nèi)分離得到CECT5713或CECT5716。該實(shí)驗(yàn)也證明了益生菌治療康復(fù)的乳腺炎患者,乳腺炎的復(fù)發(fā)率遠(yuǎn)低于抗生素治療的患者。Jiménez和Arroyo的實(shí)驗(yàn)提醒我們,母乳分離得到的菌株可開發(fā)為具有特殊功能作用的生物治療劑,同時鑒于母乳內(nèi)有些微生物還具有抑制HIV的能力,因此母乳可以作為一個篩選益生菌的重要菌庫,有待于進(jìn)一步的開發(fā)利用。
健康產(chǎn)婦母乳內(nèi)微生物的研究現(xiàn)在還處于起步階段,僅僅有十來年的歷史。現(xiàn)已研究發(fā)現(xiàn)健康產(chǎn)婦的母乳內(nèi)含有多種微生物,包含葡萄球菌屬、鏈球菌屬、乳桿菌屬、雙歧桿菌屬和腸球菌屬等。雖說隨著科學(xué)技術(shù)的進(jìn)步和現(xiàn)代分子學(xué)的發(fā)展,母乳內(nèi)的微生物被發(fā)現(xiàn)的越來越多,但是母乳內(nèi)微生物的具體種類還不完全清楚,特別是有些菌株還不能由培養(yǎng)基分離得到,僅能由分子學(xué)方法鑒定得出,因此對母乳內(nèi)微生物種類還需要更進(jìn)一步的分析研究。母乳內(nèi)分離得到的微生物被證明具有特殊的功能特性,如抑菌,可由腸道到達(dá)乳腺,抗HIV,治療乳腺炎等,說明母乳可以作為篩選具有特殊功能益生菌的菌庫。因此篩選具有特殊益生特性的菌株應(yīng)該是研究工作者重點(diǎn)關(guān)注的一個研究方向,同時有關(guān)菌株由腸道遷移至乳腺的機(jī)制也是不容忽視的研究課題。
[1]Verhasselt V.Neonatal tolerance under breastfeeding influence [J].Current opinion in immunology,2010,22(5):623-630.
[2]Duijts L,Jaddoe V W,Hofman A,et al.Prolonged and exclusive breastfeeding reduces the risk of infectious diseases in infancy [J].Pediatrics,2010,126(1):e18-e25.
[3]Loss G,Apprich S,Waser M,et al.The protective effect of farm milk consumption on childhood asthma and atopy:the GABRIELA study[J].Journal of Allergy and Clinical Immunology,2011,128(4):766-773.
[4]L?nnerdal B.Breast Milk:A Truly Functional Food[J]. Nutrition,2000,16(7-8):509-511.
[5]Newburg D S.Innate immunity and human milk[J].Journal of Nutrition,2005,143:1308-1312.
[6]Martín R,Langa S,Rviriego C,et al.The commensal microflora of human milk:new perspectives for food bacteriotherapy and probiotics[J].Trends in Food Science&Technology,2004,15(3-4):121-127.
[7]Lara-Villoslada F,Olivares M,Sierra S,et al.Beneficial effects of probiotic bacteria isolated from breast milk[J].British Journal of Nutrition,2007,98 Suppl 1:S96-S100.
[8]Martín R,Heilig G H J,Zoetendal E G,et al.Diversity of the Lactobacillus group in breast milk and vagina of healthy women and potential role in the colonization of the infant gut[J].Journal of Applied Microbiology,2007,103(6):2638-2644.
[9]Makino H,Kushiro A,Ishikawa E,et al.Transmission of intestinal Bifidobacterium longum subsp.longum strains from mother to infant,determined by multilocus sequencing typing and amplified fragment length polymorphism[J].Applied Environmental Microbiology,2011,77(19):6788-6793.
[10]Jimenez E,Delgado S,F(xiàn)ernandez L,et al.Assessment of the bacterialdiversity ofhuman colostrum and screening of staphylococcal and enterococcal populations for potential virulence factors[J].Research in microbiology,2008,159(9-10):595-601.
[11]Perez P F,Dore J,Leclerc M,et al.Bacterial imprinting of the neonatal immune system:lessons from maternal cells?[J]. Pediatrics,2007,119(3):e724-e732.
[12]Rescigno M,Urbano M,Valzasina,et al.Dendritic cells express tight junction proteins and penetrate gut epithelial monolayers to sample bacteria[J].Nature immunology,2001,2(4):361-367.
[13]Macpherson A J,Uhr T.Induction of protective IgA by intestinal dendritic cells carrying commensal bacteria[J].Science,2004,303(5664):1662-1665.
[14]Jiménez E,F(xiàn)ernández L,Maldonado A,et al.Oral administration of Lactobacillus strains isolated from breast milk as an alternative for the treatment of infectious mastitis during lactation[J].Applied and environmental microbiology,2008,74(15):4650-4655.
[15]Arroyo R,Martín V,Maldonado A,et al.Treatment of infectious mastitis during lactation:antibiotics versus oral administration of Lactobacilli isolated from breast milk[J].Clinical Infectious Diseases,2010,50(12):1551-1558.
[16]Martín V,Maldonado-Barragán A,Moles L,et al.Sharing of bacterial strains between breast milk and infant feces[J].Journal of Human Lactation,2012,28(1):36-44.
[17]Martín R,Jiménez E,Heilig H,et al.Isolation of bifidobacteria from breast milk and assessment of the bifidobacterial population by PCR-denaturing gradient gel electrophoresis and quantitative real-time PCR[J].Applied and Environmental Microbiology,2009,75(4):965-969.
[18]Martín R,Langa S,Reviriego C,et al.Human milk was a source of lactic acid bacteria for the infant gut[J].The Journal ofPediatrics,2003,143(6):754-758.
[19]Martín R,Heilig H G H J,Zoetendal E G,et al.Cultivationindependent assessment of the bacterial diversity of breast milk among healthy women[J].Research in Microbiology,2007,158(1):31-37.
[20]Collado M C,Delgado S,Maldonado A,et al.Assessment of the bacterial diversity of breast milk of healthy women by quantitative real-time PCR[J].Letters in Applied Microbiology,2009,48(5):523-528.
[21]Hunt K M,F(xiàn)oster J A,F(xiàn)orney L J,et al.Characterization of the diversity and temporal stability of bacterial communities in human milk[J].PLoS One,2011,6(6):e21313.
[22]Gavin A,Ostovar K.Microbiological characterization of human milk[J].Journal of Food Protection,1977,40(9):614-616.
[23]West P A,Hewitt J H,Murphy O M.The Influenceof Methods of Collection and Storage on the Bacteriology of Human Milk[J].Journal of Applied Bacteriology,1979,46:269-277.
[24]Heikkil? M P,Saris P E J.Inhibition of Staphylococcus aureus by the commensal bacteria of human milk[J].Journal of Applied Microbiology,2003,95(3):471-478.
[25]Jiménez E,Delgado S,Maldonado A,et al.Staphylococcus epidermidis:a differential trait of the fecal microbiota of breastfed infants[J].BMC Microbiology,2008(8):143.
[26]Delgado S,Arroyo R,Jiménez E,et al.Staphylococcus epidermidis strains isolated from breast milk of women suffering infectious mastitis:potential virulence traits and resistance to antibiotics[J].BMC Microbiology,2009,9:82.
[27]Solís G,De Los Reyes-Gavilan C G,F(xiàn)ernández N,et al. Establishment and development of lactic acid bacteria and bifidobacteria microbiota in breast-milk and the infant gut[J]. Anaerobe,2010,16(3):307-310.
[28]Albesharat R,Ehrmann M A,Korakli M,et al.Phenotypic and genotypic analyses of lactic acid bacteria in local fermented food,breast milk and faeces of mothers and their babies[J]. Systematic and Applied Microbiology,2011,34(2):148-155.
[29]Martín V,Ma?es-Lázaro R,Rodríguez J M,et al. Streptococcus lactarius sp.nov.,isolated from breast milk of healthy women[J].InternationalJournalofSystematic and Evolutionary Microbiology,2011,61:1048-1052.
[30]Beasley S S,Saris P E J.Nisin-producing Lactococcus lactis strains isolated from human milk[J].Applied and environmental microbiology,2004,70(8):5051-5053.
[31]Martín R,Olivares M,Marín M L,et al.Probiotic potential of 3 Lactobacilli strains isolated from breast milk[J].Journal of Human Lactation,2005,21(1):8-17.
[32]Martín R,Jiménez E,Olivares M,et al.Lactobacillus salivarius CECT 5713,a potential probiotic strain isolated from infant feces and breast milk of a mother-child pair[J].International Journal of Food Microbiology,2006,112(1):35-43.
[33]Sinkiewicz G,Ljunggren L.Occurrence of Lactobacillus reuteri in human breast milk[J].Microbial Ecology in Health and Disease,2008,20(3):122-126.
[34]Gueimonde M,Laitinen K,Salminen S,et al.Breast milk:a source ofbifidobacteria for infantgutdevelopmentand maturation?[J].Neonatology,2007,92(1):64-66.
[35]Cabrera-Rubio R,Collado M C,Laitinen K,et al.The human milk microbiome changes over lactation and is shaped by maternal weight and mode of delivery[J].The American journal of clinical nutrition,2012,96(3):544-551.
[36]Olivares M,Díaz-Ropero M P,Martín R,et al.Antimicrobial potential of four Lactobacillus strains isolated from breast milk [J].Journal of Applied Microbiology,2006,101(1):72-79.
[37]Díaz-Ropero M P,Martín R,Sierra S,et al.Two Lactobacillus strains,isolated from breast milk,differently modulate the immune response[J].Journal of Applied Microbiology,2007,102(2):337-343.
[38]Pérez-Cano F J,Dong H,Yaqoob P.In vitro immunomodulatory activity of Lactobacillus fermentum CECT5716 and Lactobacillus salivarius CECT5713:two probiotic strains isolated from human breast milk[J].Immunobiology,2010,215(12):996-1004.
[39]Olivares M,Díaz-Ropero M P,Gómez N,et al.The consumption of two new probiotic strains,Lactobacillus gasseri CECT5714 and Lactobacillus coryniformis CECT 5711,boosts the immune system of healthy human[J].International Microbiology,2006,9:47-52.
[40]Jara S,Sánchez M,Vera R,et al.The inhibitory activity of Lactobacillus spp.isolated from breast milk on gastrointestinal pathogenic bacteria of nosocomial origin[J].Anaerobe,2011,17(6):474-477.
[41]Sierra S,Lara-Villoslada F,Sempere L,et al.Intestinal and immunological effects of daily oral administration of Lactobacillus salivarius CECT5713 to healthy adults[J].Anaerobe,2010,16(3):195-200.
[42]Olivares M,Díaz-Ropero M P,Sierra S,et al.Oral intake of Lactobacillus fermentum CECT5716 enhances the effects of influenza vaccination[J].Nutrition,2007,23(3):254-260.
[43]Maldonado J,Ca?abate F,Sempere L,et al.Human milk probiotic Lactobacillus fermentum CECT5716 reduces the incidence of gastrointestinal and upper respiratory tract infections in infants[J].Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition,2012,54(1):55-61.
[44]Maldonado-Barragán A,Caballero-Guerrero B,Jiménez E,et al.Enterocin C,a class IIb bacteriocin produced by E.faecalis C901,a strain isolated from human colostrum[J].International Journal of Food Microbiology,2009,133(1-2):105-112.
[45]Martín V,Maldonado A,F(xiàn)ernández L,et al.Inhibition of Human Immunodeficiency Virus Type 1 by Lactic Acid Bacteria from Human Breastmilk[J].Breastfeeding Medicine,2010,5(4):153-158.
[46]Langa S,Maldonado-Barragan A,Delgado S,et al. Characterization of Lactobacillus salivarius CECT 5713,a strain isolated from human milk:from genotype to phenotype[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2012,94(5):1279-1287.
[47]Lara-Villoslada F,Sierra S,Díaz-Ropero M P,et al.Safety assessment of the human milk-isolated probiotic Lactobacillus salivarius CECT5713[J].Journal of Dairy Science,2007,90(8):3583-3589.
[48]Maldonado J,Lara-Villoslada F,Sierra S,et al.Safety and tolerance of the human milk probiotic strain Lactobacillus salivarius CECT5713 in 6-month-old children[J].Nutrition,2010,26(11-12):1082-1087.
[49]Gil-Campos M,López M á,Rodriguez-Benítez M V,et al. Lactobacillus fermentum CECT 5716 is safe and well tolerated in infants of 1-6 months of age:a randomized controlled trial[J]. Pharmacological Research,2012,65(2):231-238.
[50]Peran L,Camuesco D,Comalada M,et al.Preventative effects of a probiotic,Lactobacillus salivarius ssp.salivarius,in the TNBS model of rat colitis[J].World Journal of Gastroenterology,2005,11(33):5185-5192.
[51]Olivares M,Díaz-Ropero M A,Gómez N,et al.Oral administration of two probioticstrains,Lactobacillusgasseri CECT5714 and Lactobacillus coryniformis CECT5711,enhances the intestinal function of healthy adults[J].International Journal of Food Microbiology,2006,107(2):104-111.
[52]Peran L,Sierra S,Comalada M,et al.A comparative study of the preventative effects exerted by two probiotics,Lactobacillus reuteri and Lactobacillus fermentum,in the trinitrobenzenesulfonic acid model of rat colitis[J].British Journal of Nutrition,2007,97(1):96-103.
Research progress in the microorganism in breast milk
JIA Hong-xin,SU Mi-Ya,CHEN Wen-Liang,GUO Yan-Hong,QI Xiao-Yan
(State Key Laboratory of Dairy Biotechnology,Technology Center of Bright Dairy and Food Co.,Ltd.,Shanghai 200436,China)
Traditional culture techniques and modern molecular techniques have showed many microorganisms are in the breast milk including Staphylococcus,Streptococcus,Enterococcus,Lactobacillus and Bifidobacterium,etc.Recent studies have demonstrated that some microorganisms in breast milk have special function such as anti-HIV,curing mastitis,getting into breast through the intestinal and so on.It was reviewed that the source,type,identification methods,special function and application of the breast milk microorganisms.This paper also provided an outlook of the research direction for microorganisms in breast milk and provided some guides for the further research and utilization of microorganisms in breast milk.
breast milk;breast milk microorganisms;probiotics;mastitis;HIV
TS201.3
A
1002-0306(2014)04-0350-08
2013-08-02
賈宏信(1985-),男,碩士研究生,研究方向:乳品科學(xué)。
科技部農(nóng)業(yè)科技成果轉(zhuǎn)化資金(2012GB2CO00141);上海市科委國際合作項(xiàng)目(11290704400)。